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Vol. 15. Issue 3.
Pages 177-183 (September 2011)
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Vol. 15. Issue 3.
Pages 177-183 (September 2011)
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Diagnosis of pulmonary and extrapulmonary tuberculosis using an in-house PCR method in clinical samples from a middle-income resource setting
Diagnóstico de tuberculosis pulmonar y extrapulmonar mediante un método de PCR casera en muestras clínicas de una región de desarrollo intermedio
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1927
Sandra Coronado-Ríos1,2, Nelson E. Arenas-Suárez1,3, Jorge E. Gómez-Marín1,
Corresponding author
gepamol2@uniquindio.edu.co

Correspondencia: GEPAMOL, Centro de Investigaciones Biomédicas, Universidad del Quindío, Avenida Bolívar 12N, Armenia, Colombia.
1 GEPAMOL, Centro de Investigaciones Biomédicas, Universidad del Quindío, Armenia, Colombia
2 Maestría en Microbiología, Universidad de Cartagena, Cartagena de Indias, Colombia
3 Secretaría de Salud, Armenia, Colombia
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Article information
Abstract
Introduction

PCR detection offers a good opportunity to obtain fast results which is a priority in tuberculosis control programs.

Objectives

We assayed an in-house PCR method based on the detection of mycobaterial IS6110 gene in clinical samples of patients with pulmonary and extrapulmonary tuberculosis to demonstrate its usefulness and reliability in the setting of a middle-resource region with high tuberculosis prevalence.

Materials and methods

Pulmonary (n=317) and extrapulmonary (n=41) samples were collected from 358 patients with clinical suspicion of tuberculosis. All samples were processed to detect acid-fast bacilli by microscopy, culture on solid media and PCR. To remove PCR inhibitors, three washing steps of the decontaminated pellet were included before mycobacterial cell lysis.

Results

The overall sensitivity was 96% in clinical samples, and specificity was 100% for our in-house method in pulmonary and extrapulmonary samples. No inhibition was found among samples that were PCR negative, but culture positive for Mycobacterium tuberculosis. No false positives were found.

Conclusions

In-house PCR in a middle-income setting region, with simple and strictly controlled methods, could efficiently complement conventional bacteriological tools for the rapid diagnosis of tuberculosis, especially in paucibacillary and extrapulmonary samples.

Key words:
Tuberculosis
Polymerase Chain Reaction
pulmonary tuberculosis
Mycobacterium tuberculosis
Keywords:
tuberculosis
reacción en cadena de la polimerasa
tuberculosis pulmonar
Mycobacterium tuberculosis
Resumen
Introducción

La prueba de PCR ofrece la posibilidad de obtener resultados rápidos, una prioridad para los programas de control de la tuberculosis. Objetivos.Evaluar el método de PCR basado en la detección del gen IS6110 de las micobacterias en muestras clínicas de pacientes con tuberculosis pulmonar y extrapulmonar, para demostrar su utilidad y confiabilidad en un sitio de desarrollo medio con alta prevalencia de tuberculosis.

Materiales y métodos

Se recolectaron 317 muestras pulmonares y 41 de origen extrapulmonar, de 358 pacientes con sospecha clínica de tuberculosis. Todas las muestras se procesaron para detectar bacilos ácido-alcohol resistentes por microscopía, cultivo en medio sólido y PCR. Para eliminar los inhibidores de la PCR se lavaron tres veces antes de realizar la lisis de la pared de la micobacteria.

Resultados

La sensibilidad total fue de 96% y la especificidad de 100% para este método “casero” en muestras pulmonares y extrapulmonares. No se encontró inhibición entre las muestras que fueron negativas por PCR pero con cultivo positivo para Mycobacterium tuberculosis. No se hallaron falsos positivos.

Conclusiones

La implementación de la PCR “casera” en regiones de desarrollo intermedio como método simple y estrictamente controlado, podría complementar eficientemente las herramientas bacteriológicas tradicionales para el diagnóstico rápido de la tuberculosis, especialmente en muestras paucibacilares y de origen extrapulmonar.

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References
[1.]
WHO.
Global tuberculosis control: WHO report 2010.
World Health Organization, (2010), pp. 204
[2.]
Secretaría de Salud Municipal de Armenia.
Situación de salud en Armenia, indicadores básicos, 2007-2008. Informe anual del Programa de Control de la Tuberculosis, 2010.
Alcaldía de Armenia, (2008), pp. 22
[3.]
Secretaría de Salud Municipal de Armenia, Boletín Epidemiológico Armenia 2008.
Informe de Gestión de la Alcaldía de Armenia (Quindío).
Alcaldía de Armenia, (2009), pp. 19
[4.]
K. Liu, W. Su, R. Perng.
Clinical utility of polymerase chain reaction for diagnosis of smear-negative pleural tuberculosis.
Journal Chinese Medical Association, 70 (2007), pp. 148
[5.]
D. Tzoanopoulos, K. Mimidis, S. Giaglis, K. Ritis, G. Kartalis.
The usefulness of PCR amplification of the IS6110 insertion element of M. tuberculosis complex in ascitic fluid of patients with peritoneal tuberculosis.
Eur J Intern Med, 14 (2003), pp. 367-371
[6.]
M. Blanie, J.L. Pellegrin, J. Maugein.
Apport de la PCR dans le diagnostic des tuberculoses extrapulmonaires.
Med Mal Infect, 35 (2005), pp. 17-22
[7.]
O.L. Sarmiento, K.A. Weigle, J. Alexander, D.J. Weber, W.C. Miller.
Assessment by meta-analysis of PCR for diagnosis of smear-negative pulmonary tuberculosis.
J Clin Microbiol, 41 (2003), pp. 3233
[8.]
M. Pai, A. Ramsay, R. O’Brien.
Evidence-based tuberculosis diagnosis.
PLoS Med, 7 (2008), pp. e156
[9.]
Organización Panamericana de la Salud.
Manual para el diagnóstico bacteriológico de la tuberculosis. Normas y guía técnica. Parte I. Baciloscopia.
Panamerican Health Organization, (2008), pp. 64
[10.]
Ministerio de la Protección Social.
Guía de atención de la tuberculosis pulmonar y extrapulmonar. Guías de promoción de la salud y prevención de enfermedades en la salud pública.
Ministerio de la Protección Social, (2007), pp. 105
[11.]
Instituto Nacional de Salud.
Tuberculosis. Técnicas y procedimientos de laboratorio.
Instituto Nacional de Salud, (2001), pp. 51
[12.]
Organización Panamericana de la Salud. Manual para el diagnóstico bacteriológico de la tuberculosis.
Normas y guía técnica. Parte II. Cultivo, Panamerican Health Organization, (2008), pp. 107
[13.]
K.D. Eisenach, M.D. Sifford, M.D. Cave, J.H. Bates, J.T. Crawford.
Detection of Mycobacterium tuberculosis in sputum samples using a polymerase chain reaction.
Am Rev Respir Dise, 144 (1991), pp. 1160
[14.]
G. Puerto, C.M. Castro, W. Ribón.
Polymerase chain reaction (PCR): a contribution for diagnosis of extrapulmonary tuberculosis and micobacteriosis.
Infectio, 11 (2007), pp. 97-100
[15.]
M. Kunakorn, K. Raksakai, R. Pracharktam, C. Sattaudom.
Overcoming the errors of in-house PCR used in the clinical laboratory for the diagnosis of extrapulmonary tuberculosis.
Southeast Asian J Ttrop Med Public Health, 1 (1999), pp. 84-90
[16.]
W. Arciniegas, D.L. Orjuela.
Tuberculosis extrapulmonar: revisión de 102 casos en el Hospital Universitario San Jorge de Pereira, 2000-2004.
Biomédica, 26 (2006), pp. 1
[17.]
W.J. Burman, B.L. Stone, R.R. Reves, M.L. Wilson, Z. Yang, H. El-Hajj, et al.
The incidence of false-positive cultures for Mycobacterium tuberculosis.
Am J Respir Critical Care Med, 155 (1997), pp. 321
[18.]
A.P. Davies, L.E. Newport, O.J. Billington, S.H. Gillespie.
Length of time to laboratory diagnosis of Mycobacterium tuberculosis infection: comparison of in-house methods with reference laboratory results.
J Infect, 39 (1999), pp. 205-208
[19.]
K.L. Kaul.
Molecular detection of Mycobacterium tuberculosis: impact on patient care.
Clin Chem, 47 (2001), pp. 1553
[20.]
L.L. Flores, M. Pai, J.M. Colford Jr., L.W. Riley.
In-house nucleic acid amplification tests for the detection of Mycobacterium tuberculosis in sputum specimens: meta-analysis and meta-regression.
BMC Microbiol, 5 (2005), pp. 55
[21.]
P. Gunisha, H.N. Madhavan, U. Jayanthi, K.L. Therese.
Polymerase chain reaction using IS6110 primer to detect Mycobacterium tuberculosis in clinical samples.
Indian J Pathol Microbiol, 43 (2001), pp. 395
[22.]
D. Verettas, C. Kazakos, C. Tilkeridis, A. Dermon, H. Petrou, V. Galanis.
Polymerase chain reaction for the detection of Mycobacterium tuberculosis in synovial fluid, tissue samples, bone marrow aspirate and peripheral blood.
Acta Orthop Belg, 69 (2003), pp. 396-399
[23.]
R. Balamurugan, S. Venkataraman, K.R. John, B.S. Ramakrishna.
PCR amplification of the IS6110 insertion element of Mycobacterium tuberculosis in fecal samples from patients with intestinal tuberculosis.
J Clin Microbiol, 5 (2006), pp. 1884
[24.]
J.E. Gómez-Marin, C.I. Leon Franco, M. Inirida Guerrero, L. Rigouts, F. Portaels.
IS6110 fingerprinting of sensitive and resistant strains (1991-1992) of Mycobacterium tuberculosis in Colombia.
Mem Inst Oswaldo Cruz, 97 (2002), pp. 1005-1008
[25.]
J.E. Gómez Marín, L. Rigouts, L.E. Villegas Londoño, F. Portaels.
Restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis and tuberculosis epidemiology.
Epidemiol Bull, 29 (1995), pp. 226
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