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Su producción es el mecanismo más importante de resistencia a estos antibióticos, especialmente en bacterias gramnegativas. Las primeras betalactamasas mediadas por plásmidos en bacterias gramnegativas (TEM-1, SHV-1) se describieron en los años 60<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0005"><span class="elsevierStyleSup">1</span></a>. Las betalactamasas de espectro extendido (BLEE) son un grupo de estas enzimas, codificadas en plásmidos, que se caracterizan por tener capacidad hidrolítica frente a los antibióticos betalactámicos del grupo oximino. Confieren así resistencia frente a penicilinas, cefalosporinas de primera, segunda y tercera generación y aztreonam. Son inhibidas <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> por los inhibidores de betalactamasas, como el ácido clavulánico o el tazobactam. Con frecuencia se encuentran en enterobacterias, fundamentalmente <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> sp. y <span class="elsevierStyleItalic">Escherichia coli</span>. La presencia de BLEE se asocia también con alta proporción de resistencia a otros antibióticos no betalactámicos, como fluorquinolonas, aminoglucósidos o cotrimoxazol.</p><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La primera cepa productora de BLEE apareció en 1983 en Alemania<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0010"><span class="elsevierStyleSup">2,3</span></a>. Desde entonces diferentes brotes han sido publicados en Europa, Estados Unidos y Asia. Posiblemente la incidencia de cepas productoras de estas enzimas haya estado infravalorada en numerosos países. En España los primeros microorganismos productores de BLEE se describieron en 1988<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0020"><span class="elsevierStyleSup">4</span></a>. Al igual que en el resto de Europa, la incidencia de infecciones producidas por estos patógenos se ha incrementado en las últimas décadas y su epidemiología está cambiando. Hasta hace poco se consideraba que eran un problema exclusivamente nosocomial, con aparición de brotes epidémicos, pero en estudios clínicos recientes un porcentaje elevado de las bacteriemias por bacilos gramnegativos de la comunidad estaba producido por enterobacterias productoras de BLEE<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0025"><span class="elsevierStyleSup">5</span></a>.</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las infecciones del tracto urinario son una de las principales causas de infección por bacterias, tanto en pacientes hospitalizados como en la comunidad, y los antibióticos betalactámicos se han utilizado ampliamente para el tratamiento de estas infecciones. La aparición de bacterias gramnegativas productoras de betalactamasas de espectro extendido complica la terapia al limitar en gran medida las opciones de tratamiento. Además, los antibióticos se pautan habitualmente de forma empírica antes de obtener los resultados de laboratorio. Existen estudios que demuestran que un tratamiento antibiótico inadecuado supone un elemento predictivo de mortalidad en pacientes que presentan bacteriemia de origen urinario<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0030"><span class="elsevierStyleSup">6–8</span></a>. Por este motivo resulta de gran importancia iniciar una terapia apropiada a la mayor brevedad posible. Resulta fundamental conocer los microorganismos que producen con mayor frecuencia este tipo de infecciones en nuestro entorno y sus patrones de sensibilidad y resistencia antimicrobiana, para llevar a cabo un tratamiento adecuado.</p></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0080">Definición de betalactamasas de espectro extendido</span><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La continua descripción de nuevas betalactamasas ha creado problemas en su clasificación y nomenclatura. Actualmente se conocen más de 890 enzimas. Habitualmente se clasifican de acuerdo a 2 esquemas generales. La clasificación molecular de Ambler, propuesta en 1980<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>, divide las betalactamasas en 4 grupos principales (A, B, C y D) basándose en su homología proteica<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a>. La clasificación funcional fue propuesta por Bush en 1989 basándose en la afinidad de las enzimas por diferentes sustratos y su sensibilidad a la acción inhibidora por el ácido clavulánico. Esta clasificación fue revisada en 1995 por Bush et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0055"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a> y actualizada de nuevo en 2010. Describe 4 grupos principales y numerosos subgrupos. Por su interés e implicaciones clínicas cabe destacar las siguientes betalactamasas:<ul class="elsevierStyleList" id="lis0005"><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0005"><span class="elsevierStyleLabel">•</span><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Betalactamasas de espectro extendido (grupos 2be, 2ber y 2de de la clasificación de Bush y Jacoby): enzimas tipo TEM, SHV, CTX-M y OXA.</p></li><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0010"><span class="elsevierStyleLabel">•</span><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Betalactamasas resistentes a los inhibidores (grupo 2br): enzimas tipo TEM y SHV.</p></li><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0015"><span class="elsevierStyleLabel">•</span><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Betalactamasas tipo AmpC (grupo 1): enzimas tipo LAT, MIR, CMY y FOX.</p></li><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0020"><span class="elsevierStyleLabel">•</span><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Carbapenemasas (grupos 2f, 2df y 3): enzimas tipo VIM, IMP, IMI, KPC, NDM y OXA.</p></li></ul></p><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las betalactamasas de espectro extendido se definen como betalactamasas capaces de conferir resistencia bacteriana a penicilinas, cefalosporinas (incluidas las de amplio espectro) y monobactámicos (aztreonam) por hidrólisis de estos antibióticos y que son inhibidas por los inhibidores de betalactamasas tales como el ácido clavulánico o tazobactam. No pueden hidrolizar cefamicinas (cefoxitina) ni carbapenémicos (imipenem, meropenem, ertapenem). Los genes que las codifican se encuentran en elementos móviles que facilitan su diseminación y con frecuencia presentan corresistencia con otros antibacterianos como aminoglucósidos, cotrimoxazol y quinolonas.</p><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La mayoría pertenecen a la clase molecular A de Ambler. Entre ellas se encuentran TEM y SHV, derivadas de betalactamasas con menor espectro de hidrólisis, la familia CTX-M, procedente de betalactamasas cromosómicas del género <span class="elsevierStyleItalic">Kluyvera</span> y otras menos prevalentes como PER, VEB, BES, GES, TLA y SFO, incluidas todas ellas en el grupo funcional 2be de Bush y Jacoby. También pertenecen a la clase A, subgrupo 2ber, las betalactamasas <span class="elsevierStyleItalic">complex mutant</span> TEM (CMT). Algunas enzimas de la familia OXA (clase D de Ambler y grupo funcional 2de) también son betalactamasas de espectro extendido. Desde su descripción inicial se han identificado más de 300 BLEE diferentes, la mayoría pertenecientes a las familias TEM, SHV y CTX-M<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a>. Las BLEE predominantes en Europa fueron inicialmente las de tipo SHV, pero a partir del año 2000 el tipo CTX-M se ha convertido en el más prevalente en la mayor parte del mundo, especialmente en determinados países de Europa y América del Sur<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a>. Las enzimas de este grupo confieren una elevada actividad frente a cefotaxima y ceftazidima. No se limitan a infección nosocomial, sino que tienen importante potencial para extenderse fuera del ambiente hospitalario, por lo que representan un verdadero problema de salud pública. En España los tipos más frecuentes son CTX-M9 y CTX-M14<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a>.</p></span><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0085">Detección de betalactamasas de espectro extendido</span><p id="par0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El laboratorio de microbiología clínica es el primer escalón en el sistema de salud que debe alertar sobre la presencia de mecanismos de resistencia bacteriana de relevancia clínica. Los métodos de detección de BLEE se dividen en 2 grupos: métodos fenotípicos que usan técnicas no moleculares y detectan la capacidad de las enzimas BLEE de hidrolizar diferentes cefalosporinas y métodos genotípicos que utilizan técnicas moleculares para detectar los genes responsables de la producción de dichas BLEE. Los métodos fenotípicos son más ampliamente utilizados porque son más sencillos y posiblemente también más coste-efectivos, mientras que los genotípicos habitualmente se llevan a cabo en laboratorios especializados o de referencia. Los primeros son cruciales para un adecuado tratamiento de los pacientes, pero los segundos aportan información esencial de cara a la prevención y control de las enfermedades infecciosas.</p><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El <span class="elsevierStyleItalic">United States Clinical and Laboratory Standards Institute</span> (CLSI) y la <span class="elsevierStyleItalic">United Kingdom Health Protection Agency</span> (HPA) han publicado guías para la detección de producción de BLEE en enterobacterias, específicamente <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> sp. y <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> sp.; la guía del Reino Unido incluye otras especies como <span class="elsevierStyleItalic">Salmonella</span> sp.<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0075"><span class="elsevierStyleSup">15,16</span></a>. Ambas recomiendan realizar una prueba de cribado para la potencial producción de BLEE y una segunda prueba de confirmación si la primera resultase positiva. Cuando se utiliza la técnica de microdilución, el cribado se realiza con 8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/l (CLSI) o 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/l (HPA) de cefpodoxima o 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/l de cefotaxima, ceftazidima, ceftriaxona o aztreonam. Se sospecha la presencia de BLEE cuando se incrementa la concentración mínima inhibitoria (CMI) respecto a lo esperado. Cuando se emplea la técnica de difusión con disco se sospecha cuando disminuyen los halos de inhibición. La prueba de confirmación se hace con cefotaxima y ceftazidima en combinación con clavulánico en concentraciones de 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/l. En las muestras con BLEE la CMI de ceftazidima o cefotaxima debería reducirse en presencia de clavulánico. Una disminución mayor o igual a 8 veces la CMI de uno o los 2 antimicrobianos en presencia del inhibidor indica la presencia de BLEE. En los centros que utilizan la técnica de sinergia de doble disco una diferencia mayor o igual a 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mm en el diámetro del halo de inhibición entre los discos de cada agente antimicrobiano, con o sin clavulánico, se interpreta como prueba positiva (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">fig. 1</a>).Con una correcta aplicación de las recomendaciones de estas guías la sensibilidad y especificidad para detectar BLEE en <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> sp. y <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> sp. son muy altas, por encima del 94 y 98% respectivamente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0085"><span class="elsevierStyleSup">17</span></a>. La detección fenotípica en otras bacterias es controvertida, debido a que el efecto del clavulánico no está siempre presente en otras especies como <span class="elsevierStyleItalic">Enterobacter</span> o <span class="elsevierStyleItalic">Citrobacter</span>. La detección mediante técnicas genotípicas es bastante compleja, y se complica aún más debido al incremento en el número de subtipos en cada familia de BLEE. Por todo ello suele estar limitada a laboratorios de referencia y en el contexto de estudios de seguimiento molecular.</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0090">Factores de riesgo en la colonización e infección por productores de betalactamasas de espectro extendido</span><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se han llevado a cabo numerosos estudios de caso-control con la intención de determinar los factores de riesgo asociados a la colonización e infección por estos patógenos. Aunque el análisis de los resultados de estos estudios resulta en ocasiones conflictivo debido a las diferencias en las poblaciones de estudio, selección de los casos, selección de los controles y el tamaño muestral, sí pueden extraerse algunas conclusiones generales. Existe alto riesgo de infección o colonización por patógenos productores de BLEE en pacientes con estancia hospitalaria prolongada o que han precisado dispositivos invasivos durante largo periodo de tiempo (catéter urinario, tubo endotraqueal, vía central). Los días de estancia hospitalaria hasta la aparición de un aislado productor de BLEE varían desde 11 a 67 en función de las series<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12,18</span></a>. Otros factores que se han postulado en algunos estudios de forma aislada incluyen la presencia de sonda nasogástrica, gastrostomía o yeyunostomía, vías arteriales, administración de nutrición parenteral, cirugía reciente (especialmente si se trata de cirugía abdominal urgente), hemodiálisis, úlceras por decúbito o mal estado nutricional<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a>. La edad avanzada y el diagnóstico de diabetes mellitus también se han perfilado como potenciales factores<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0095"><span class="elsevierStyleSup">19</span></a>, al igual que viajar a áreas endémicas.</p><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El empleo de antibióticos en meses previos también se ha identificado como posible factor de riesgo, con amplia gama de variantes en función de los estudios: cefalosporinas de tercera generación, aztreonam, quinolonas, trimetroprim-sulfametoxazol, aminoglucósidos y metronidazol<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0090"><span class="elsevierStyleSup">18</span></a>. Existe evidencia a su vez sobre la asociación entre infecciones por aislados productores de BLEE y la estancia previa en residencias de cuidados<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0100"><span class="elsevierStyleSup">20</span></a>. En estos centros es habitual el uso frecuente de tratamientos antibióticos y los pacientes pueden presentar otros factores de riesgo asociados como úlceras, catéteres urinarios o ingresos hospitalarios recientes. Muchos de ellos presentan también incontinencia urinaria o fecal, lo que expone a otros residentes al riesgo de contaminación.</p></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0095">Estrategias de prevención</span><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La principal diana en la que deben centrarse los programas de prevención es la infección nosocomial, que puede ocurrir de manera epidémica o endémica. Cuando se trata de proliferación clonal de una misma cepa la transmisión se ha producido de manera horizontal, pero si no se trata del mismo clon puede significar que se haya producido una selección por el uso de antibióticos.</p><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Debe desinfectarse el ambiente y los posibles vectores para la infección, ya que se ha encontrado contaminación en geles para la realización de ecografía, broncoscopios, manguitos de presión, termómetros de cristal e incluso en jabones, cuñas y bañeras para bebés. Diversos estudios revelan que las manos del personal sanitario son un importante factor de transferencia en la contaminación horizontal<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0105"><span class="elsevierStyleSup">21</span></a>, de modo que una adecuada higiene de manos (lavado con clorhexidina o con soluciones de alcohol) es una medida sencilla pero muy eficaz a la hora de disminuir la transmisión.</p><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Muchos pacientes pueden actuar como reservorio, sobre todo aquellos que presentan colonización por organismos productores de BLEE sin manifestación clínica de infección. En determinados casos, especialmente cuando se produce un brote en un hospital o unidad, puede ser necesaria la identificación de estos pacientes y la descolonización. Se necesita la toma de muestras de la orofaringe y el recto con torunda para llevar a cabo el aislamiento de los pacientes portadores. También se han descrito casos de colonización en heridas o úlceras. Por último, para controlar la infección endémica es importante implantar una política restrictiva en el uso de antibióticos, basada fundamentalmente en evitar el empleo de cefalosporinas y quinolonas.</p></span><span id="sec0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0100">Recomendaciones de tratamiento</span><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La elección de un tratamiento adecuado se complica cuando nos enfrentamos a patógenos productores de BLEE, entre otros factores porque muchas de estas bacterias asocian resistencias a diferentes antibióticos, como ocurre con la resistencia a quinolonas en cepas productoras de CTX-M<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0110"><span class="elsevierStyleSup">22</span></a>. Además, los plásmidos que codifican la resistencia a betalactámicos con frecuencia portan genes de resistencia a cotrimoxazol y aminoglucósidos. En la mayoría de los casos el tratamiento debe iniciarse de manera empírica y suelen pasar unas 48<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>h hasta que se reciben los resultados de los cultivos y el antibiograma. El retraso o fallo en el inicio de una terapia adecuada repercute seriamente en un aumento de morbilidad e incluso mortalidad en casos de infección grave<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0030"><span class="elsevierStyleSup">6,7</span></a>. Resulta por ello fundamental individualizar el tratamiento de elección para cada caso concreto basándose en un conocimiento de los patrones de sensibilidad de cada país, de cada ciudad y de cada hospital.</p><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Existe otra peculiaridad que dificulta el tratamiento de estas infecciones: la eficacia clínica de un determinado antibiótico no siempre corresponde a lo esperado por su actividad <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span>. Este hecho se conoce como efecto inóculo, que implica que las CMI de los antimicrobianos pueden aumentar de 10 a 100 veces simplemente porque la carga bacteriana sea grande, y se ha descrito para cefalosporinas, piperacilina-tazobactam y algo menos en quinolonas<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0115"><span class="elsevierStyleSup">23</span></a>. Otros fármacos como las cefamicinas no se recomiendan por el riesgo de desarrollar resistencias durante el tratamiento, debido a la modificación de proteínas de la membrana (porinas) cuya consecuencia es la disminución de la permeabilidad<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0120"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a>.</p><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En resumen, debe evitarse el uso de cefalosporinas. En el caso de las de cuarta generación se desaconseja su empleo en infecciones graves, ya que son muy sensibles al efecto inóculo. En caso de emplearlas deberían administrarse a dosis altas y asociadas a otro agente antimicrobiano. La piperacilina-tazobactan no se recomienda por la elevada tasa de resistencias en muchas zonas geográficas y porque también es muy sensible al efecto inóculo. Las cefamicinas son una mala opción por lo mencionado anteriormente y los aminoglucósidos, el cotrimoxazol y las quinolonas deben restringirse por el alto índice de corresistencias. Sobre otros agentes como la temocilina y la tigeciclina todavía no existen demasiados datos disponibles.</p><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Así pues, en espera de mayor evidencia procedente de ensayos clínicos aleatorizados, el tratamiento de elección en infecciones graves por bacterias gramnegativas productoras de BLEE son los carbapenémicos. Con todo, debe evitarse su uso indiscriminado, ya que constituye casi la única terapia eficaz frente a este tipo de microorganismos. En los casos en que no puedan utilizarse por intolerancia o resistencias no existe una recomendación específica de tratamiento, aunque se aconseja asociar varios antimicrobianos. En la infección de tracto urinario bajo no complicada fosfomicina y nitrofurantoína parecen las mejores alternativas terapéuticas, porque ambas tienen buena actividad frente a BLEE. El uso de nitrofurantoína es controvertido porque precisa ciclos de tratamiento más largos, lo que dificulta la adherencia terapéutica y puede presentar efectos tóxicos.</p><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El fracaso del tratamiento empírico implica elevada morbimortalidad e incremento del gasto hospitalario, por lo que consideramos que las decisiones terapéuticas deberían estar basadas en el conocimiento de la distribución local de los patógenos y sus patrones de resistencia. En nuestro medio nos propusimos definir los patrones de sensibilidad y resistencia antimicrobiana para este tipo de infecciones, de cara a elaborar un protocolo de tratamiento. Se analizaron cultivos de orina positivos para enterobacterias productoras de BLEE de pacientes hospitalizados o que habían acudido al servicio de urgencias desde enero a diciembre de 2013. Se incluyó un único episodio por paciente, y en el caso de disponer de varios cultivos de orina se seleccionó el primero de ellos. Se detectaron 92 pacientes con cultivo de orina positivo para enterobacterias productoras de BLEE, 69 (75%) <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span>, 20 (21,7%) <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> sp., uno (1,1%) <span class="elsevierStyleItalic">Enterobacter</span> y 2 (2,2%) otros patógenos. Un total de 84,8% fueron resistentes a ciprofloxacino, 69,7% a cotrimoxazol, 62% a amoxicilina-clavulánico, 37% a gentamicina, 31,5% a fosfomicina y 10,9% a nitrofurantoína. La <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">tabla 1</a> muestra la distribución de resistencias en función del patógeno. Solo en el 33% de casos el tratamiento empírico fue adecuado, así considerada la administración de al menos un antimicrobiano con actividad <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> frente al microorganismo. Ningún paciente falleció a causa de la infección. Teniendo en cuenta estos datos se ha elaborado un protocolo de actuación para facilitar la elección del tratamiento en pacientes con sospecha de padecer infección por microorganismos productores de BLEE (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>).</p><elsevierMultimedia ident="tbl0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0105">Conclusiones</span><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las BLEE son enzimas con capacidad hidrolítica frente a los antibióticos betalactámicos, lo que les confiere resistencia frente a penicilinas, cefalosporinas y aztreonam. <span class="elsevierStyleItalic">In vitro</span> son inhibidas por los inhibidores de betalactamasas. Con frecuencia se encuentran en enterobacterias, fundamentalmente en <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> sp. y <span class="elsevierStyleItalic">Escherichia coli</span> y se asocian a una elevada proporción de resistencia a otros antibióticos como fluorquinolonas, aminoglucósidos o cotrimoxazol. Los métodos fenotípicos son los más extendidos para su detección, con elevada sensibilidad y especificidad si se siguen las recomendaciones de los expertos para su aplicación. Los métodos genotípicos se llevan a cabo en laboratorios especializados y aportan información esencial de cara a la prevención y control. Las estrategias de prevención deben centrarse en la infección nosocomial, pero no debe olvidarse que la epidemiología de estas infecciones está cambiando y cada vez es más frecuente la aparición de estos patógenos en infecciones comunitarias. El fracaso del tratamiento empírico implica elevada morbimortalidad, por lo que las decisiones terapéuticas deberían estar basadas en el conocimiento de la distribución local de los patógenos y sus patrones de resistencia. El tratamiento de elección en infecciones graves por bacterias gramnegativas productoras de BLEE son los carbapenémicos por lo que debe evitarse su uso indiscriminado.</p></span><span id="sec0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0110">Conflicto de intereses</span><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los autores declaran que no tienen ningún conflicto de intereses.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:13 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "xres385790" "titulo" => array:6 [ 0 => "Resumen" 1 => "Contexto" 2 => "Objetivo" 3 => "Adquisición de evidencia" 4 => "Síntesis de evidencia" 5 => "Conclusión" ] ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec364549" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "xres385789" "titulo" => array:6 [ 0 => "Abstract" 1 => "Context" 2 => "Objective" 3 => "Acquisition of evidence" 4 => "Summary of the evidence" 5 => "Conclusion" ] ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec364548" "titulo" => "Keywords" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0005" "titulo" => "Introducción" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "sec0010" "titulo" => "Definición de betalactamasas de espectro extendido" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "sec0015" "titulo" => "Detección de betalactamasas de espectro extendido" ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0020" "titulo" => "Factores de riesgo en la colonización e infección por productores de betalactamasas de espectro extendido" ] 8 => array:2 [ "identificador" => "sec0025" "titulo" => "Estrategias de prevención" ] 9 => array:2 [ "identificador" => "sec0030" "titulo" => "Recomendaciones de tratamiento" ] 10 => array:2 [ "identificador" => "sec0035" "titulo" => "Conclusiones" ] 11 => array:2 [ "identificador" => "sec0040" "titulo" => "Conflicto de intereses" ] 12 => array:1 [ "titulo" => "Bibliografía" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaRecibido" => "2014-05-09" "fechaAceptado" => "2014-05-21" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec364549" "palabras" => array:4 [ 0 => "Betalactamasas de espectro extendido" 1 => "Infección del tracto urinario" 2 => "Resistencia antibiótica" 3 => "Carbapenémicos" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec364548" "palabras" => array:4 [ 0 => "Extended-spectrum beta-lactamases" 1 => "Urinary tract infection" 2 => "Antibiotic resistance" 3 => "Carbapenems" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:2 [ "titulo" => "Resumen" "resumen" => "<span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0010">Contexto</span><p id="spar0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Las betalactamasas son enzimas bacterianas que protegen a los microorganismos de los efectos letales de los antibióticos β-lactámicos. Su producción es el mecanismo más importante de resistencia a estos antibióticos, especialmente en bacterias gramnegativas.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0015">Objetivo</span><p id="spar0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Revisar la magnitud del problema de las betalactamasas de espectro extendido (BLEE) en el ámbito urológico y presentar las pautas de actuación fundamentales al respecto, los principales factores de riesgo y las estrategias de prevención.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0020">Adquisición de evidencia</span><p id="spar0015" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Se lleva a cabo una estrategia de búsqueda estructurada tipo paciente, problema, intervención, comparación y resultado en PubMed-Medline identificando los estudios más relevantes relacionados con el manejo de pacientes con infección urinaria por microorganismos productores de BLEE. Se presenta también análisis de la casuística de nuestro centro en esta misma problemática.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0025">Síntesis de evidencia</span><p id="spar0020" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Las BLEE se encuentran en enterobacterias, fundamentalmente <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> sp. y <span class="elsevierStyleItalic">Escherichia coli</span> y se caracterizan por tener capacidad hidrolítica frente a los antibióticos betalactámicos, lo que implica resistencia frente a penicilinas, cefalosporinas y aztreonam. También se asocian a resistencia a otros antibióticos. Existe alto riesgo de infección o colonización por productores de BLEE en pacientes con estancia hospitalaria prolongada o que han precisado dispositivos invasivos. El uso previo de antibióticos y la estancia en residencia de cuidados son también elementos de riesgo. Los programas de prevención deben centrarse en evitar la infección nosocomial. Resulta fundamental implantar una política restrictiva en el uso de antibióticos. La terapia de elección en infecciones graves se centra en carbapenémicos, aunque debe evitarse su uso indiscriminado. En la infección de tracto urinario bajo no complicada fosfomicina y nitrofurantoína son las mejores alternativas terapéuticas.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0030">Conclusión</span><p id="spar0025" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Las cepas productoras de BLEE constituyen un verdadero problema de salud a nivel mundial. Las estrategias de prevención deben centrarse en la infección nosocomial, pero no debe olvidarse que cada vez es más frecuente la aparición de estos patógenos en infecciones comunitarias. Las decisiones terapéuticas deben basarse en el conocimiento de la distribución local de los microorganismos y sus patrones de resistencia.</p>" ] "en" => array:2 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "<span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0040">Context</span><p id="spar0030" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Beta-lactamases are bacterial enzymes that protect microorganisms from the lethal effects of β-lactam antibiotics. The production of beta-lactamases is the most important mechanism of resistance to these antibiotics, especially in Gram-negative bacteria.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0045">Objective</span><p id="spar0035" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Review the magnitude of the problem of extended-spectrum beta-lactamases (ESBL) in the urological setting and present the fundamental action guidelines on the issue, the main risk factors and the prevention strategies.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0050">Acquisition of evidence</span><p id="spar0040" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">A structured search strategy for patient, problem, intervention, comparison and result was conducted in the PubMed-Medline database to identify the most relevant studies related to the management of patients with urinary tract infection by ESBL-producing microorganisms. We also present a caseload analysis of our center on this issue.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0055">Summary of the evidence</span><p id="spar0045" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">ESBL are found in Enterobacteria, mainly Klebsiella sp. and Escherichia coli and are characterized by their hydrolytic ability compared with beta-lactam antibiotics, which entails resistance to penicillin, cephalosporin and aztreonam. They are also associated with resistance to other antibiotics. There is a high risk of infection and colonization by ESBL producers in patients with prolonged hospital stays or who required invasive devices. The prior use of antibiotics and stays in residential care are also risk factors. Prevention programs should focus on preventing nosocomial infection. It is essential that a restrictive policy on the use of antibiotics be implemented. The therapy of choice for severe infections is focused on carbapenems, although their indiscriminate use should be avoided. In uncomplicated lower urinary tract infections, fosfomycin and nitrofurantoin are the best treatment alternatives.</p> <span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0060">Conclusion</span><p id="spar0050" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">ESBL-producing strains constitute a true global health problem. Prevention strategies should focus on nosocomial infection. We should not forget, however, that the appearance of these pathogens in community-acquired infections is increasingly frequent. 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\t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Ciprofloxacino \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Gentamicina \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Amoxicilina-clavulánico \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Fosfomicina \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Nitrofurantoína \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Cotrimoxazol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">Escherichia coli</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">85,5% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">37,7% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">56,5% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">23,2% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1,4% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">73,9% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">Klebsiela</span> sp. \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">90% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">55% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">85% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">50% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td 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