Autor para correspondencia: Av. IPN 2508, Col. San Pedro Zacatenco, C.P. 07360, México DF, México. Teléfono: +55 5747 3800 Ext. 5215; fax: +55 5747 339.
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El ácido araquidónico es transformado por la Cox a un substrato de la prostaciclina sintetasa para formar prostaciclina en la célula endotelial. En la CML la prostaciclina liga a un receptor de membrana (R) que estimula a la adenilato ciclasa para producir AMPc y a través de esta, en la CML, promover relajación, además de tener efectos antiproliferadores. La prostaciclina inhibe la agregación plaquetaria. En la HAP los niveles de prostaciclina y de la sintetasa de prostaciclina están disminuidos. Fármacos prostanoides y no prostanoides pueden restaurar estos niveles parcialmente si actúan a nivel del receptor. Otras sustancias pueden activar a la adenilato ciclasa si ligan a la proteína G, como sucede con la ADM y el VIP. ADM: adrenomodulina; AMPc: adenosín-monofosfato-cíclico; ATP: trifosfato de adenosina; CML: célula de músculo liso; Cox: ciclooxigenasa; G: proteína G; HAP: hipertensión arterial pulmonar; R: receptor de prostaciclina; VIP: péptido intestinal vasoactivo. Figura modificada de Vachiéry<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0120"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a>.</p>" ] ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "autoresLista" => "Luis Efren Santos-Martínez, Luis Antonio Moreno-Ruiz, Moisés Jiménez-Santos, Sergio Gabriel Olmos-Temois, Luis Armando Bojorquez-Guerrero, Francisco Martín Baranda-Tovar" "autores" => array:6 [ 0 => array:2 [ "nombre" => "Luis Efren" "apellidos" => "Santos-Martínez" ] 1 => array:2 [ "nombre" => "Luis Antonio" "apellidos" => "Moreno-Ruiz" ] 2 => array:2 [ "nombre" => "Moisés" "apellidos" => "Jiménez-Santos" ] 3 => array:2 [ "nombre" => "Sergio Gabriel" "apellidos" => "Olmos-Temois" ] 4 => array:2 [ "nombre" => "Luis Armando" "apellidos" => "Bojorquez-Guerrero" ] 5 => array:2 [ "nombre" => "Francisco Martín" "apellidos" => "Baranda-Tovar" ] ] ] ] ] "idiomaDefecto" => "es" "EPUB" => "https://multimedia.elsevier.es/PublicationsMultimediaV1/item/epub/S1405994014000664?idApp=UINPBA00004N" "url" => "/14059940/0000008400000003/v1_201408290019/S1405994014000664/v1_201408290019/es/main.assets" ] "itemAnterior" => array:19 [ "pii" => "S1405994014001116" "issn" => "14059940" "doi" => "10.1016/j.acmx.2013.11.008" "estado" => "S300" "fechaPublicacion" => "2014-07-01" "aid" => "144" "copyright" => "Instituto Nacional de Cardiología Ignacio Chávez" "documento" => "article" "crossmark" => 0 "licencia" => "http://www.elsevier.com/open-access/userlicense/1.0/" "subdocumento" => "fla" "cita" => "Arch Cardiol Mex. 2014;84:183-90" "abierto" => array:3 [ "ES" => true "ES2" => true "LATM" => true ] "gratuito" => true "lecturas" => array:2 [ "total" => 2336 "formatos" => array:3 [ "EPUB" => 55 "HTML" => 1350 "PDF" => 931 ] ] "es" => array:12 [ "idiomaDefecto" => true "cabecera" => "<span class="elsevierStyleTextfn">Investigación clínica</span>" "titulo" => "La estimulación septal del ventrículo derecho generaría igual disincronía biventricular que la estimulación apical en pacientes con fracción de eyección conservada" "tienePdf" => "es" "tieneTextoCompleto" => "es" "tieneResumen" => array:2 [ 0 => "es" 1 => "en" ] "paginas" => array:1 [ 0 => array:2 [ "paginaInicial" => "183" "paginaFinal" => "190" ] ] "titulosAlternativos" => array:1 [ "en" => array:1 [ "titulo" => "Right ventricular septal stimulation would produce similar bi-ventricular dyssynchrony as does apical stimulation in patients with normal ejection fraction" ] ] "contieneResumen" => array:2 [ "es" => true "en" => true ] "contieneTextoCompleto" => array:1 [ "es" => true ] "contienePdf" => array:1 [ "es" => true ] "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "autoresLista" => "Juan Manuel Lange, Hector Manzolillo, Jorge Parras, Domingo Pozzer, Ignacio Reyes, Rolando Pantich" "autores" => array:6 [ 0 => array:2 [ "nombre" => "Juan Manuel" "apellidos" => "Lange" ] 1 => array:2 [ "nombre" => "Hector" "apellidos" => "Manzolillo" ] 2 => array:2 [ "nombre" => "Jorge" "apellidos" => "Parras" ] 3 => array:2 [ "nombre" => "Domingo" "apellidos" => "Pozzer" ] 4 => array:2 [ "nombre" => "Ignacio" "apellidos" => "Reyes" ] 5 => array:2 [ "nombre" => "Rolando" "apellidos" => "Pantich" ] ] ] ] ] "idiomaDefecto" => "es" "EPUB" => "https://multimedia.elsevier.es/PublicationsMultimediaV1/item/epub/S1405994014001116?idApp=UINPBA00004N" "url" => "/14059940/0000008400000003/v1_201408290019/S1405994014001116/v1_201408290019/es/main.assets" ] "es" => array:19 [ "idiomaDefecto" => true "cabecera" => "<span class="elsevierStyleTextfn">Artículo de revisión</span>" "titulo" => "Receptor de rianodina, fuga de calcio y arritmias" "tieneTextoCompleto" => true "paginas" => array:1 [ 0 => array:2 [ "paginaInicial" => "191" "paginaFinal" => "201" ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:4 [ "autoresLista" => "Angélica Rueda, David R. de Alba-Aguayo, Héctor H. 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Imágenes representativas de los aumentos transitorios de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> producidos por estimulación eléctrica (0.5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz, líneas verticales verdes) en cardiomiocitos control (A, control) y con fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> anormal durante la diástole (B, actividad automática). Las células cargadas con el indicador Fluo-3 se escanearon en la modalidad de line-scan en el microscopio confocal (línea negra), lo que permite generar las imágenes bidimensionales donde el eje<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>X representa el tiempo en segundos y el eje<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Y representa la longitud de la célula en micrómetros. La amplitud del transitorio de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> intracelular (F/F<span class="elsevierStyleInf">0</span>) producido por el estímulo eléctrico se muestra debajo de cada imagen. Las flechas rojas en las imágenes bidimensionales indican la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> durante la diástole en forma de chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>.</p>" ] ] ] "textoCompleto" => "<span class="elsevierStyleSections"><span id="sec0005" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0025">Introducción</span><p id="par0005" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El ion calcio (Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>) es el mensajero más importante en el músculo cardiaco, ya que participa activamente en diversos procesos celulares tales como la expresión génica, la diferenciación y la apoptosis, además de ser componente indispensable del proceso de contracción, tal como lo mostró Sidney Ringer<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0005"><span class="elsevierStyleSup">1</span></a>. Las fluctuaciones periódicas en la concentración intracelular de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> ([Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span>) de los cardiomiocitos determinan en gran medida la magnitud y la duración de la fuerza contráctil. La serie de eventos exquisitamente coordinados mediante los cuales el potencial de acción cardiaco genera un aumento global y transitorio en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> que alcanza niveles de entre 0.6 a 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μM en la sístole y que permite la contracción subsecuente de los miocitos cardiacos se engloban en lo que conocemos como acoplamiento excitación-contracción (AEC), visualizado inicialmente por A. J. Brady<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0010"><span class="elsevierStyleSup">2</span></a> y descrito con mucha más precisión por Fabiato<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0015"><span class="elsevierStyleSup">3,4</span></a>.</p></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0030">Participación del receptor de rianodina en el acoplamiento excitación-contracción</span><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Durante el AEC cardiaco la activación en el cardiomiocito de los canales de Na<span class="elsevierStyleSup">+</span> dependientes de voltaje <span class="elsevierStyleItalic">(I</span><span class="elsevierStyleInf"><span class="elsevierStyleItalic">Na</span></span><span class="elsevierStyleItalic">)</span> activa a su vez los canales de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> dependientes de voltaje tipo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>L o receptores a dihidropiridinas (DHPR, por sus siglas en inglés) localizados en una región muy especializada de la membrana plasmática conocida como túbulo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>T (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">fig. 1</a>), lo que genera una corriente entrante de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span><span class="elsevierStyleItalic">(I</span><span class="elsevierStyleInf"><span class="elsevierStyleItalic">Ca</span></span><span class="elsevierStyleItalic">)</span> que por sí sola es insuficiente para inducir la activación de la maquinaria contráctil pero es necesaria para activar al receptor de rianodina (RyR), que en realidad es un canal liberador de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del retículo sarcoplásmico de unión (RSU). Este proceso se conoce como <span class="elsevierStyleItalic">liberación de Ca</span><span class="elsevierStyleSup"><span class="elsevierStyleItalic">2+</span></span><span class="elsevierStyleItalic">inducida por Ca</span><span class="elsevierStyleSup"><span class="elsevierStyleItalic">2+</span></span> (CICR), y fue descrito por Fabiato<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0020"><span class="elsevierStyleSup">4</span></a> para el músculo cardiaco, pero definido inicialmente por Endo et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0025"><span class="elsevierStyleSup">5</span></a> en el músculo esquelético.</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> liberado vía el RyR se une a la troponina<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>C de los miofilamentos, lo que genera un cambio conformacional en el complejo de la troponina que libera el sitio de interacción miosina-actina y con gasto de ATP se activa la maquinaria contráctil. Para que la relajación ocurra durante el ciclo cardiaco y la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> disminuya a su nivel diastólico (∼<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nM), se requiere re-secuestrar el Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> liberado por el RyR mediante la activación de la bomba ATPasa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del retículo sarco/endoplásmico (SERCA), mientras que el Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que entró como <span class="elsevierStyleItalic">I</span><span class="elsevierStyleInf"><span class="elsevierStyleItalic">Ca</span></span> debe ser extruido por el intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de la membrana plasmática. Ambas actividades combinadas remueven hasta el 98% del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> citoplasmático. La contribución de la bomba ATPasa de la membrana plasmática y del uniportador de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mitocondrial en la remoción del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> citoplasmático es minoritaria (solo ∼<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1% del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> total)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>.</p><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Siendo el Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> el agonista fisiológico del RyR, la salida masiva de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>de los reservorios intracelulares durante el proceso de CICR implicaría la existencia de un mecanismo de retroalimentación positiva que mantendría activado al RyR de forma permanente (presencia de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>activación del RyR). Sin embargo, la fase de diástole del ciclo cardiaco depende de la regulación precisa del RyR y de su inactivación aun en presencia de niveles elevados de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en el citoplasma para permitir la recuperación de la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> al nivel nanomolar (∼<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nM). Las alteraciones en el manejo de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> sistólico<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0035"><span class="elsevierStyleSup">7,8</span></a> y diastólico<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9,10</span></a> del cardiomiocito pueden participar en la disfunción contráctil y en la generación de algunas arritmias. De ahí la importancia de estudiar los mecanismos que participan en la regulación del RyR.</p><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Debido a que la activación del RyR cardiaco es en esencia autorregenerativa<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0055"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a>, esta requiere de uno o varios mecanismos de inactivación que dependen en gran medida de la presencia de iones y metabolitos citoplasmáticos<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12,13</span></a> (como Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, Mg<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y ATP), de proteínas reguladoras (calmodulina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a>, sorcina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0075"><span class="elsevierStyleSup">15</span></a>, FKBP12.6<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0080"><span class="elsevierStyleSup">16,17</span></a>, S100A, junctina, triadina y calsecuestrina<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0090"><span class="elsevierStyleSup">18,19</span></a>, entre muchas otras), de modificaciones postraduccionales (como fosforilación<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0080"><span class="elsevierStyleSup">16,20-22</span></a>, oxidorreducción<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0115"><span class="elsevierStyleSup">23</span></a>, S-nitrosilación<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0120"><span class="elsevierStyleSup">24</span></a> y carbonilación<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0125"><span class="elsevierStyleSup">25</span></a>), así como de la distribución y localización espacial de los RyR en el cardiomiocito<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0130"><span class="elsevierStyleSup">26,27</span></a>. Los mecanismos moleculares de regulación endógena del RyR cardiaco han sido sujeto de numerosas y excelentes revisiones<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0140"><span class="elsevierStyleSup">28-33</span></a>.</p><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Dentro de los procesos que pueden participar en la terminación de la liberación de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía el RyR se han postulado a: 1)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la inactivación/adaptación del RyR dependiente de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, que involucra al Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> tanto de lado del citoplasma como de la región luminal del RS<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">34</span></a> y a proteínas cuya actividad sobre el RyR depende de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, como sorcina<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0175"><span class="elsevierStyleSup">35,36</span></a>, calmodulina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070"><span class="elsevierStyleSup">14</span></a> y calsecuestrina<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0090"><span class="elsevierStyleSup">18,19</span></a>; 2)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>el decaimiento espontáneo de la actividad de los RyR debido al cerrado estocástico del canal <span class="elsevierStyleItalic">(stochastic attrition)</span><a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0185"><span class="elsevierStyleSup">37</span></a>; 3)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>el agotamiento de las reservas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal del RS que induce la desactivación del RyR<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0055"><span class="elsevierStyleSup">11,19</span></a>, y por último 4)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>el «decaimiento inducido» de la actividad de los RyR, una propiedad intrínseca a la microdistribución y activación estocástica de los RyR que permite el aumento y la disolución casi instantánea de los gradientes de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> nanoscópicos dentro de una región local<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0135"><span class="elsevierStyleSup">27</span></a>. Esta última propuesta viene a formar parte de las teorías de control local de la liberación de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> durante el AEC cardiaco<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0190"><span class="elsevierStyleSup">38</span></a> que han ayudado a explicar cómo un fenómeno en esencia autorregenerativo como el de CICR puede ser limitado espacial y temporalmente para permitir una liberación gradual del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS durante la sístole. Actualmente no se ha encontrado un mecanismo de terminación de la liberación de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía el RyR lo suficientemente eficiente que permita explicar el cerrado preciso del canal durante el AEC cardiaco<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0055"><span class="elsevierStyleSup">11,27</span></a>. Aunque es posible que varios de los mecanismos mencionados funcionen en unísono, se ha propuesto que la inactivación de los RyR dependiente de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal juega un papel preponderante como mecanismo para detener la naturaleza autorregenerativa inherente al fenómeno de CICR<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">34</span></a>.</p></span><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0035">Distribución espacial y regulación in situ de los receptores de rianodina cardiacos</span><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Algunas de las teorías actuales para explicar la terminación de la salida de Ca<span class="elsevierStyleSup">+</span> de los reservorios intracelulares —como la del «decaimiento inducido» de la actividad del RyR<span class="elsevierStyleSup">27</span>— requieren como premisa una distribución precisa de estos canales iónicos; de ahí la importancia de estudiar la microarquitectura de las diadas, o regiones de acoplamiento entre los RyR que se encuentran en el RSU y los DHPR del túbulo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>T (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">fig. 1</a>).</p><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El RyR cardiaco es el canal iónico más grande conocido hasta el momento. El canal funcional es un tetrámero, cada monómero está constituido por 4,967 residuos de aminoácidos (RyR2-human entry: Q92736, <a id="intr0005" class="elsevierStyleInterRef" href="http://www.uniprot.org/">http://www.uniprot.org</a>) y aparece como una banda prominente, con un peso molecular (Mr) en geles desnaturalizantes (SDS-PAGE) de 340,000 y en ocasiones acompañada de una banda de menor tamaño (Mr de 300,000)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">39</span></a>, aunque esto último varía dependiendo de las condiciones en que se preparan las vesículas enriquecidas de RS que contienen mayoritariamente al RyR, o bien de las condiciones del SDS-PAGE. Aunque es un solo gen el que codifica a la isoforma cardiaca del RyR (RYR2, localizado en el cromosoma<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 del humano, locus 1q43)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0200"><span class="elsevierStyleSup">40</span></a>, este cuenta con 105 exones que por procesamiento alternativo del mRNA pueden generar por lo menos 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>variantes del RyR2. Estas variantes tienen capacidades diferentes en la regulación del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> intracelular y de la apoptosis<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0205"><span class="elsevierStyleSup">41</span></a>. Gracias al alcaloide rianodina (proveniente de la planta <span class="elsevierStyleItalic">Ryania speciosa</span>) se pudo purificar<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">39,42</span></a> y determinar la localización subcelular del receptor, el cual se encuentra principalmente en la región del RSU (o cisternas terminales), precisamente donde se encontraban las estructuras conocidas como «pies», que por su tamaño relativamente grande (210-220<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Å por lado) podían ser visualizadas por microscopia electrónica, lo que permitió determinar la identidad molecular de estas estructuras<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0195"><span class="elsevierStyleSup">39,42-44</span></a>.</p><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Datos recientes de microscopia óptica de alta resolución muestran que los RyRs cardiacos del RSU se encuentran formando grupos («racimos» o clústers) dentro de las unidades de liberación de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (o CRU, de <span class="elsevierStyleItalic">calcium release units</span>)<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0130"><span class="elsevierStyleSup">26,45</span></a>. Los RyR agrupados presentan un arreglo cuasi-cristalino en la región del RSU y se distribuyen de forma regular formando filas dobles con un ancho aproximado de 700<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm con muy pocos RyR en las regiones intermedias. Dentro de la CRU hay una distancia de 10 a 15<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm entre los RyR y los DHPR, lo que permite su interacción cercana<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0130"><span class="elsevierStyleSup">26</span></a>. Interesantemente, los clústers de RyR varían en forma y tamaño, existiendo en arreglos de entre 14 hasta 22<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>RyR dentro de cada uno. Un pequeño porcentaje de clústers cuenta con 100 RyR (es posible determinar el número de RyR asumiendo un área de 900<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm<span class="elsevierStyleSup">2</span> por canal para dividir el área de cada grupo). Esta organización sigue una distribución que se ajusta a un decaimiento monoexponencial, sugiriendo que la formación del clústers es un proceso estocástico y no altamente regulado, como se creía anteriormente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0130"><span class="elsevierStyleSup">26</span></a>. La distancia entre los RyR dentro del clúster ha sido calculada en 30<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm a partir del centro del poro, sugiriendo que se encuentran interactuando físicamente, mientras que entre grupos adyacentes de RyR la distancia de borde a borde es de entre 50 a 100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm, lo que sugiere que la comunicación intragrupo está más favorecida<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0130"><span class="elsevierStyleSup">26</span></a>. Por otra parte, en 2006 Sobie et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0230"><span class="elsevierStyleSup">46</span></a> postularon la existencia de RyR que se encuentran fuera de los clústers, conocidos también como «RyRs rebeldes» <span class="elsevierStyleItalic">(rogue RyRs)</span>, cuya presencia ha sido confirmada con la microscopia óptica de alta resolución<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0130"><span class="elsevierStyleSup">26</span></a> en zonas del RS clásicamente conocidas como RS corbular<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0220"><span class="elsevierStyleSup">44</span></a>, y que son regiones del RSU que contienen RyR pero que no están asociadas al túbulo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>T o a la membrana plasmática.</p><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Dentro de las CRU, los RyR y los canales de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> dependientes de voltaje se distribuyen en regiones de ∼<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm de diámetro. La organización de los RyR y los canales de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> dependientes de voltaje en las CRU tiene implicaciones biofísicas importantes en cuanto a su funcionalidad en la señalización de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, y en principio un solo canal de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> dependiente de voltaje puede activar hasta 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>RyR<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0235"><span class="elsevierStyleSup">47-49</span></a>. Recientemente se propuso un modelo donde cada CRU contiene un clúster principal de RyR, que se puede dividir en subdominios funcionales, rodeado por RyR rebeldes, con acceso compartido a un mismo reservorio de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal; este modelo puede ayudar a explicar la existencia de las diferentes modalidades de liberación espontánea de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS en condiciones pasivas, como las chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y las ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, que forman parte de lo que conocemos como «fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica»<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0230"><span class="elsevierStyleSup">46</span></a>.</p></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0040">Participación del receptor de rianodina en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica</span><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Bajo condiciones fisiológicas, la activación del RyR durante el AEC cardiaco genera un incremento del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, homogéneo y transitorio, en el citoplasma del cardiomiocito<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0030"><span class="elsevierStyleSup">6,50</span></a>. Sin embargo, en la diástole, al contrario de lo que se pensaba, el RyR no permanece completamente cerrado, sino que puede participar en la liberación de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS conocida como fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0230"><span class="elsevierStyleSup">46</span></a>, la cual está presente en condiciones fisiológicas normales y sufre alteraciones que promueven actividad arrítmica en ciertas afecciones cardiacas.</p><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica se puede clasificar en: 1)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la mediada por la activación de los RyR dentro de una CRU y que se manifiesta en forma de chispa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>); la corriente de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de un solo canal de RyR oscila entre 0.35 y 0.6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>pA (con una [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>=<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM), y esto implica que para la generación de un evento elemental de liberación de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> dentro de una CRU (chispa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> o <span class="elsevierStyleItalic">Ca</span><span class="elsevierStyleSup"><span class="elsevierStyleItalic">2+</span></span><span class="elsevierStyleItalic">spark</span>) es necesaria la apertura sincronizada de por lo menos 6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>RyR, aunque el número real es difícil de calcular<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0235"><span class="elsevierStyleSup">47-49</span></a>; 2)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la que permite el reclutamiento secuencial de CRU adyacentes generando ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> autopropagadas (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>); si las ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> activan una corriente transitoria entrante vía el intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span><span class="elsevierStyleItalic">(Iti)</span>, pueden alcanzan el umbral de disparo de un potencial de acción generando actividad automática<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0250"><span class="elsevierStyleSup">50,51</span></a>. La actividad automática participa en la generación de arritmias por medio de posdespolarizaciones, que pueden ocurrir dentro (posdespolarizaciones tempranas, o <span class="elsevierStyleItalic">early after depolarizations</span> [EAD]) o después de completar la fase de repolarización del potencial de acción (posdespolarizaciones tardías o <span class="elsevierStyleItalic">delayed after depolarizations</span> [DAD]), generando contracciones fuera de ritmo (poscontracciones o <span class="elsevierStyleItalic">after contractions</span>); 3)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la que no se puede detectar experimentalmente con los microscopios actuales y que está mediada por los RyR rebeldes, conocida como fuga invisible, y por último 4)<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>la mediada por otros canales de la membrana del RS diferentes al RyR (p.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ej., el receptor de 1,4,5-trifosfato de inositol) y que son responsables de la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica aun en presencia de altas concentraciones de rojo de rutenio, un inhibidor de los RyR<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">34,52</span></a>.</p><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica que no involucra a los RyR es insensible a las variaciones en la concentración de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal ([Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span>), mientras que la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mediada por los RyR (localizados dentro o fuera de los clústers) es regulada por la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span>, por la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> pero no necesariamente por el nivel de fosforilación de los RyR<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0260"><span class="elsevierStyleSup">52,53</span></a>. En condiciones fisiológicas normales, cuando la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> es relativamente baja (<<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>400<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μM), la cantidad de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> liberada por un RyR es insuficiente para generar una chispa, dando lugar a la fuga invisible. Al incrementarse la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> (><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>600<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μM), el flujo de salida de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de un RyR es suficiente para que el Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> alcance los sitios de activación por Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de RyR vecinos, propagándose la activación dentro del clúster, y por tanto la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> se presenta en forma de chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>). Finalmente, en situaciones donde la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> se incrementa a niveles que alcanzan la sobrecarga del RS, la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mediada por uno o varios clústers puede reclutar clústers adyacentes promoviendo la aparición de ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span></span><a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0260"><span class="elsevierStyleSup">52</span></a>.</p><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En ciertos procesos patológicos donde la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica está alterada, la actividad anormal del RyR genera ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que pueden activar al intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de la membrana plasmática. Debido a que el intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> es electrogénico, genera una corriente entrante que si alcanza el umbral de activación de los DHPR promueve DAD, trastorna la función contráctil (al generar extrasístoles) y se manifiesta en arritmias (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">fig. 3</a>)<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">34,52–54</span></a>. Así, la actividad anormal del RyR en la diástole promueve la arritmogénesis vía la generación de ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> autopropagadas, la activación del intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y la aparición de DAD<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0275"><span class="elsevierStyleSup">55–58</span></a>. Es importante mencionar que la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica en forma de chispas que no se propagan a ondas o la mediada por RyR no acoplados (fuga invisible) difícilmente podría promover DAD y, por lo tanto, actividad arritmogénica. El estudio de las propiedades espaciotemporales de las chipas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que se producen de forma espontánea en cardiomiocitos que se encuentran en condiciones en reposo (equivalentes a la diástole) permite conocer cómo los RyR participan en la generación de DAD.</p><elsevierMultimedia ident="fig0015"></elsevierMultimedia><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se ha propuesto que el aumento en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> diastólica y/o en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> disminuyen el umbral de activación del RyR, favoreciendo la propagación de ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> espontáneas mediante el proceso de activación-difusión-activación<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">34,52,55</span></a>. Incluso se ha considerado que algunos parámetros de las ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, tales como la frecuencia, la amplitud y la velocidad de propagación, son predictivos de su potencial arritmogénico<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0170"><span class="elsevierStyleSup">34,55,56</span></a>. Sin embargo, paradójicamente existen enfermedades donde la actividad diastólica del RyR está aumentada aun en presencia de una [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> disminuida y que se explican por una mayor sensibilidad del RyR al Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal y/o citoplasmático, que favorecen su activación exacerbada<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9,57</span></a>. En un estado de alteración crónica el incremento anormal de la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> no puede durar por siempre, ya que las células contienen poderosos mecanismos de autorregulación para controlar la actividad anormal de los RyR a largo plazo<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0290"><span class="elsevierStyleSup">58</span></a>. Desafortunadamente, los mecanismos moleculares específicos que participan en modificar la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica en ciertas enfermedades cardiacas aún no han sido completamente aclarados.</p></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0045">Función fisiológica de la fuga diastólica de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mediada por el receptor de rianodina</span><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La participación del RyR en inducir una fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS se evidenció en un trabajo del grupo de Lakatta, en el que se observó que la incubación de cardiomiocitos intactos y en reposo con rianodina a concentraciones nanomolares vaciaba los reservorios intracelulares de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> localizados en el RS, lo cual se explica por la propiedad de este alcaloide de unirse únicamente a la conformación abierta del canal y de mantenerlo subconductante<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0295"><span class="elsevierStyleSup">59</span></a>. Posteriormente, Urthaler et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0300"><span class="elsevierStyleSup">60</span></a> reforzaron la idea de que el RyR fugaba Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en la diástole al mostrar que la RyR aumentaba esta fuga por inhibir el cerrado de los canales de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS. Más tarde, Yamazawa et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0305"><span class="elsevierStyleSup">61</span></a> mostraron que la expresión de RyR2 en cultivos primarios de músculo esquelético de ratones dispédicos (es decir, que no expresan al RyR tipo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 o esquelético) inducía chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> evocadas y ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> espontáneas a [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> basales, sugiriendo que la isoforma cardiaca del RyR se activa a [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> diastólica y puede mediar la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>. En 1998, Takeshima et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0310"><span class="elsevierStyleSup">62</span></a> proponen que durante el desarrollo embrionario los RyR2 se activan en la diástole en respuesta a elevaciones en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span>, comportándose como válvulas de seguridad para prevenir la sobrecarga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS. Esta hipótesis la plantean al observar que en cardiomiocitos de embriones que carecen del RyR2 el Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> se acumulaba gradualmente dentro de los reservorios del RS induciendo la formación de vacuolas a partir del RS, anormalidades en las mitocondrias y desregulación de la homeostasis del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, lo que conduce a una disfunción general del cardiomiocito<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0310"><span class="elsevierStyleSup">62</span></a>. Sin embargo, la función fisiológica de la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mediada por el RyR no está restringida al corazón en desarrollo, también está presente en el corazón adulto y permite mantener la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> dentro de un rango normal, como un mecanismo de balance a la actividad de recaptura de la bomba SERCA, permitiendo la estabilización de la actividad del RyR entre latido y latido<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0315"><span class="elsevierStyleSup">63,64</span></a>. En cardiomiocitos normales el incremento en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> aumenta la frecuencia de las chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> espontáneas, permitiendo que el RyR2 regule el contenido de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS a través de la fuga mediada por chispas<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0325"><span class="elsevierStyleSup">65</span></a>.</p></span><span id="sec0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0050">Arritmias relacionadas con alteraciones en la fuga diastólica de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span></span><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las arritmias cardiacas asociadas a enfermedades hereditarias o adquiridas son causantes de la morbimortalidad de un gran porcentaje de la población de los países industrializados, como Estados Unidos y México. De las 590,693 defunciones registradas en México en 2011, el 23.8% (140,595) corresponden a muertes relacionadas con enfermedades cardiovasculares (fuente INEGI), y entre ellas deben estar algunas arritmias, como la fibrilación ventricular.</p><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En ciertas enfermedades cardiacas la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> está alterada y participa en la generación de arritmias adquiridas (como las que se presentan en la insuficiencia cardiaca, la miocardiopatía diabética y la fibrilación auricular) o hereditarias (como la taquicardia ventricular polimórfica y catecolaminérgica [TVPC] y la displasia arritmogénica del ventrículo derecho tipo 2 [DAVD2])<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0330"><span class="elsevierStyleSup">66</span></a>. En 2001, 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>grupos de investigadores identificaron un total de 11<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mutaciones puntuales en el gen que codifica para el RyR cardiaco, el RYR2, asociadas con la presencia de TVPC en 7<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>familias diferentes<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0335"><span class="elsevierStyleSup">67,68</span></a> y a DAVD2 en 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>familias independientes<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0345"><span class="elsevierStyleSup">69</span></a>. Hasta la fecha se han identificado 128<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>variantes del hRYR2 y 12<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>variantes de la calsecuestrina<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 que están asociadas a estas arritmias (http://www.fsm.it/cardmoc/)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0350"><span class="elsevierStyleSup">70</span></a>, lo que ha abierto un nuevo panorama al evidenciar que las alteraciones en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía el RyR2 pueden ser parte de las bases moleculares de la arritmogénesis cardiaca.</p></span><span id="sec0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0055">Mutaciones del receptor de rianodina asociadas a taquicardia ventricular polimórfica y catecolaminérgica</span><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La TVPC es una arritmia hereditaria que se caracteriza por la aparición de una taquicardia ventricular que puede ser bidireccional o polimórfica inducida por estrés o ejercicio sin presentar alteraciones estructurales del corazón<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0335"><span class="elsevierStyleSup">67,68,71</span></a>. En la mayoría de los casos la taquicardia ventricular conduce a fibrilación ventricular y síncope o muerte súbita. Debido a que el electrocardiograma de los pacientes con TVPC no presenta anormalidades en condiciones de reposo, el diagnóstico implica la detección de la arritmia inducida por estrés durante una prueba de ejercicio o Holter. Esta arritmia hereditaria se presenta en 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>formas: dominante y recesiva. La forma dominante de esta arritmia está asociada a mutaciones en el gen <span class="elsevierStyleItalic">RYR2</span> que codifica al RyR cardiaco o tipo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 (RyR2), mientras que la forma recesiva está asociada alteraciones en el gen de la calsecuestrina<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 <span class="elsevierStyleItalic">(CSQ2)</span>, proteína que se encuentra en la luz del RS, que tiene una gran capacidad para unir Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y que participa junto con triadina y junctina en modular la respuesta del RyR al Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0360"><span class="elsevierStyleSup">72</span></a>.</p><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Debido a la importancia que tiene el determinar las bases moleculares de las arritmias, se han generado ratones transgénicos que expresan al RyR2 con alguna de las mutaciones puntuales encontradas en TVPC. El ratón <span class="elsevierStyleItalic">knock in</span> heterocigoto para la variante RyR2<span class="elsevierStyleSup">R4497C</span> recapitula muchas de las características fenotípicas de los pacientes con TVPC, bajo estimulación β-adrenérgica<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0365"><span class="elsevierStyleSup">73</span></a>. Los cardiomiocitos ventriculares del ratón heterocigoto presentan DAD y actividad automática en presencia de isoproterenol<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>. En condiciones de reposo existe un aumento en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica en forma de mayor frecuencia de chispas, el cual se ve exacerbado en presencia de isoproterenol, aun en ausencia de una sobrecarga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>. La actividad anormal del RyR<span class="elsevierStyleSup">R4497C</span> se ha explicado por un incremento exclusivo en su sensibilidad al Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal; sin embargo, esta idea es controversial, debido a que también existe evidencia de que su sensibilidad al Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del citoplasma esta aumentada, lo que le permite activarse más aun en condiciones de baja [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span><a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a>. Es posible, entonces, que las mutaciones del RyR2 asociadas con TVPC den lugar a <span class="elsevierStyleItalic">varios</span> fenotipos moleculares arritmogénicos, en lugar de un solo fenotipo (p.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>ej., incremento a sensibilidad a Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal). En apoyo a esta hipótesis, una mutación altamente arritmogénica del RyR2 asociada con TVPC, la RyR2<span class="elsevierStyleSup">V2475F</span>, presenta una mayor sensibilidad al Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> citoplasmático y luminal y también respuesta exacerbada a la fosforilación por la cinasa de proteínas dependiente de AMPc (PKA)<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0370"><span class="elsevierStyleSup">74</span></a>.</p></span><span id="sec0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0060">Fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en la insuficiencia cardiaca</span><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La insuficiencia cardiaca (IC) continúa siendo un problema serio de salud en los países industrializados, como México. Las causas de la IC son muy heterogéneas, pero destacan las asociadas a la presencia de cardiomiopatías congénitas, hipertensión arterial, nefropatías, obesidad y diabetes mellitus, entre otras. Las consecuencias funcionales de la IC en la actividad del corazón se manifiestan como disfunción contráctil, actividad arritmogénica y remodelamiento estructural patológico. Parte de la disfunción del corazón en la IC se podría explicar por un aumento de la estimulación simpática y la concomitante liberación de catecolaminas que induce la activación de los receptores β-adrenérgicos; sin embargo, en los pacientes con IC crónica la respuesta β-adrenérgica se encuentra abatida. Una observación consistente es que los RyR2 aislados de corazones insuficientes, tanto de humanos como de modelos experimentales, presentan alteraciones en su actividad a [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">i</span> en reposo, lo cual se refleja en un aumento de la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0270"><span class="elsevierStyleSup">54,75</span></a>, aunque estas alteraciones no necesariamente se reflejan en cambios consistentes en la actividad del RyR en forma de chispas. Por el contrario, cardiomiocitos aislados de diversos modelos experimentales de IC muestran aumento<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0375"><span class="elsevierStyleSup">75,76</span></a>, disminución<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0385"><span class="elsevierStyleSup">77</span></a> o ningún cambio evidente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0035"><span class="elsevierStyleSup">7</span></a> en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en forma de chispas. Las posibles explicaciones a estas discrepancias pueden encontrarse en diferencias específicas de cada modelo experimental de IC principalmente relacionadas con la modulación in situ del RyR. En estas diferencias encontramos modificaciones postraduccionales (como fosforilación, oxidorreducción y S-nitrosilación), aunado al remodelamiento estructural que altera la distribución de los RyR dentro de las unidades de liberación y que podría favorecer la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía ondas u oscilaciones de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">fig. 2</a>), o vía los RyR «rebeldes»<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0230"><span class="elsevierStyleSup">46,54</span></a>. En el año 2000 el grupo de A. Marks<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0080"><span class="elsevierStyleSup">16</span></a> propuso que el aumento de los niveles de catecolaminas en los pacientes con IC activa a la PKA vía los receptores β-adrenérgicos, lo que induce la «hiperfosforilación» del RyR2 en la Ser2808 y la concomitante disociación de la FKBP12.6. En este esquema, estas modificaciones provocan la actividad descontrolada del RyR, lo que incrementa la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica y la propensión a eventos arrítmicos<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0080"><span class="elsevierStyleSup">16,66</span></a>. Sin embargo, diversos grupos de investigación han aportado evidencias que no permiten apoyar esta hipótesis<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">32</span></a>. Por ejemplo, el AMPc incrementa la frecuencia de chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en cardiomiocitos permeabilizados con estreptolisina-O, pero esto se debe a un aumento en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span> (por el incremento en la actividad de la bomba SERCA) y no a un efecto directo sobre el RyR y su estado de fosforilación<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0390"><span class="elsevierStyleSup">78</span></a>. De hecho, la fosforilación del RyR en la Ser2808 no disocia a la FKBP12.6 ni modifica sustancialmente su actividad<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">32</span></a>; por el contrario, este sitio se ha encontrado constitutivamente fosforilado, independientemente de la presencia o no de IC. Además, estudios recientes en el modelo murino que expresa al RyR<span class="elsevierStyleSup">S2808A</span> en tejido cardiaco —lo que evita la fosforilación de este residuo y por lo tanto, teóricamente, estabiliza la interacción RyR-FKBP12.6— muestran que los ratones RyR<span class="elsevierStyleSup">S2808A</span> presentan una respuesta normal a la estimulación β-adrenérgica y una progresión similar a la IC comparado con los ratones que expresan al RyR2 normal<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0395"><span class="elsevierStyleSup">79,80</span></a>. Estos hallazgos controversiales requieren mucho trabajo adicional para aclarar la participación de la fosforilación del residuo Ser2808 en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica durante la IC.</p><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Adicionalmente, la activación de los receptores β-adrenérgicos también induce la fosforilación del RyR vía la cinasa de proteínas dependiente de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y calmodulina tipo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 (CaMKII). Hasta el momento se han identificado 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>sitios de fosforilación en el RyR2 con relevancia fisiológica: la Ser2808, que puede ser fosforilada por PKA o CaMKII; la Ser2814, al parecer exclusivamente fosforilada por CaMKII, y la Ser2030, únicamente fosforilada por PKA<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0160"><span class="elsevierStyleSup">32</span></a>, y no se tiene un consenso sobre cuál de estos sitios promueve el fenotipo que participa en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> alterada. Trabajos muy recientes proponen que la fosforilación del residuo Ser2814 vía CaMKII es fundamental para inducir la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> alterada y la actividad arritmogénica en la IC<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0405"><span class="elsevierStyleSup">81,82</span></a>, por lo que se están acumulando más evidencias que muestran que es la actividad de la CaMKII y no la de la PKA la que favorece la actividad exacerbada del RyR durante la diástole y promueve la arritmogénesis en la IC.</p></span><span id="sec0045" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0065">Estrategias farmacológicas para el control de arritmias que involucran al receptor de rianodina</span><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Debido a las evidencias que muestran que la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica vía los RyR está asociada a la generación de actividad arrítmica, diversos grupos de investigación han dedicado sus esfuerzos al desarrollo de estrategias terapéuticas para reducir la actividad anormal de los RyR<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0415"><span class="elsevierStyleSup">83</span></a>. Dentro de los fármacos utilizados encontramos inhibidores de los receptores β-adrenérgicos como el metoprolol y el carvediol<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0420"><span class="elsevierStyleSup">84,85</span></a>, derivados de hidantoínas como el dantroleno<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0430"><span class="elsevierStyleSup">86-88</span></a>, derivados del diltiazem como el JTV519 (o K201) y el S107<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0445"><span class="elsevierStyleSup">89-92</span></a>, agentes antiarrítmicos de la clase Ic, como la flecainida<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0465"><span class="elsevierStyleSup">93-95</span></a>, y glucósidos de resveratrol como la polidatina<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0480"><span class="elsevierStyleSup">96</span></a>; muchos de estos fármacos aún están en fase experimental debido a que existen diversas controversias sobre sus mecanismos de acción, como es el caso del JTV519, por lo que no han sido aprobados para el uso clínico.</p><p id="par0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los bloqueadores de los receptores β-adrenérgicos disminuyen la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía el RyR2 al reducir la fosforilación del canal independientemente de si es mediada por PKA o CaMKII<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0420"><span class="elsevierStyleSup">84</span></a>, o bien por cambiar el estado redox del RyR2 al disminuir la oxidación de grupos tiol<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0425"><span class="elsevierStyleSup">85</span></a>.</p><p id="par0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El dantroleno es un relajante muscular utilizado como agente terapéutico en pacientes que padecen hipertermia maligna. El dantroleno se une en la región que corresponde a los aminoácidos 601 a 620 del RyR2 y que conecta los dominios N-terminal y central del canal, y se ha demostrado que corrige la actividad anómala del RyR2 en un modelo de IC en perro<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0430"><span class="elsevierStyleSup">86</span></a>. Adicionalmente el dantroleno disminuye la frecuencia de las chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> espontáneas en cardiomiocitos del ratón que expresan el RyR<span class="elsevierStyleSup">R2474S87</span>, así como en cardiomiocitos de conejo con IC, aunque en este último caso el dantroleno también indujo un aumento en la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span>, lo que podría favorecer una sobrecarga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0440"><span class="elsevierStyleSup">88</span></a>.</p><p id="par0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El JTV519, también llamado K201, es un derivado de la 1-4 benzotiazepina que ha sido propuesto como un posible agente terapéutico para disminuir la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica vía el RyR2 en la IC y en la TVPC al reducir la disociación de la proteína FKPB12.6<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0445"><span class="elsevierStyleSup">89,90,97</span></a>. Sin embargo, existen trabajos que muestran que el JTV519 no disminuye la aparición de DAD en un modelo murino de TVPC<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0490"><span class="elsevierStyleSup">98</span></a>, además de que su mecanismo de acción es independiente del nivel de fosforilación del RyR o de la cantidad de FKBP12.6 que tenga asociada<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0455"><span class="elsevierStyleSup">91,92</span></a>. Adicionalmente, el JTV519 inhibe otros canales iónicos que se expresan en el tejido cardiaco<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0495"><span class="elsevierStyleSup">99,100</span></a>, por lo que al tener efectos pleotrópicos su uso como agente antiarrítmico es cuestionable.</p><p id="par0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La flecainida es un agente antiarrítmico del tipo Ic debido a que su mecanismo de acción involucra la inactivación de los canales de Na<span class="elsevierStyleSup">+</span> dependientes de voltaje <span class="elsevierStyleItalic">(I</span><span class="elsevierStyleInf"><span class="elsevierStyleItalic">Na</span></span><span class="elsevierStyleItalic">).</span> Recientemente se encontró que la flecainida también reduce la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica en un modelo murino de TVPC<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0470"><span class="elsevierStyleSup">94</span></a>, aunque existen opiniones divergentes acerca de si el fármaco actúa directamente en el RyR o bien modula su actividad de forma indirecta al inhibir la <span class="elsevierStyleItalic">I</span><span class="elsevierStyleInf"><span class="elsevierStyleItalic">Na</span></span><a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0475"><span class="elsevierStyleSup">95</span></a>. Incluso existen evidencias de que la flecainida reduce la masa de la chispa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> pero a la vez incrementa su frecuencia, por lo que el efecto neto en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mediada por chispas sería nulo<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0465"><span class="elsevierStyleSup">93</span></a>.</p><p id="par0145" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Recientemente se introdujo la polidatina como un posible agente cardioprotector. La polidatina es un glucósido del resveratrol aislado de la planta <span class="elsevierStyleItalic">Polygonum cuspidatum</span> con potentes efectos antioxidantes. Se ha demostrado que disminuye la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> mediada por chispas al reducir los niveles de especies reactivas de oxígeno y restaurar los grupos tioles del RyR2 en cardiomiocitos de animales lesionados por quemaduras<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0480"><span class="elsevierStyleSup">96</span></a>. Sin embargo su introducción es muy reciente, por lo que se requieren más estudios para evaluar posibles efectos inespecíficos.</p><p id="par0150" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Es importante aclarar que no toda la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> diastólica ocurre vía los RyR, ya que existen evidencias de que puede haber otros canales iónicos involucrados. Como ejemplo, recientemente se encontró que la proteína PLB en su forma fosforilada puede aumentar la fuga pasiva de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS, la cual es resistente al efecto del rojo de rutenio<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0505"><span class="elsevierStyleSup">101</span></a>.</p><p id="par0155" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Por último, las estrategias terapéuticas futuras deberán evaluar que los posibles fármacos antiarrítmicos no interfieran con la liberación sistólica de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en condiciones fisiológicas y que, a su vez, la fuga diastólica no sea completamente suprimida debido a su participación tan importante en la regulación de la [Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>]<span class="elsevierStyleInf">RS</span>.</p></span><span id="sec0050" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0070">Financiación</span><p id="par0160" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Este trabajo fue apoyado por el Instituto de Ciencia y Tecnología del Distrito Federal (ICyTDF, proyecto No.331/2010) para A. R. y el Instituto Nacional de Salud de EE.<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UU. (NIH, donativos HL055438 y HL094291) para H.H.V.</p></span><span id="sec0055" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0075">Conflicto de intereses</span><p id="par0165" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:16 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "xres365886" "titulo" => "Resumen" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec345515" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "xres365887" "titulo" => "Abstract" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec345514" "titulo" => "Keywords" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0005" "titulo" => "Introducción" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "sec0010" "titulo" => "Participación del receptor de rianodina en el acoplamiento excitación-contracción" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "sec0015" "titulo" => "Distribución espacial y regulación in situ de los receptores de rianodina cardiacos" ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0020" "titulo" => "Participación del receptor de rianodina en la fuga de Ca diastólica" ] 8 => array:2 [ "identificador" => "sec0025" "titulo" => "Función fisiológica de la fuga diastólica de Ca mediada por el receptor de rianodina" ] 9 => array:2 [ "identificador" => "sec0030" "titulo" => "Arritmias relacionadas con alteraciones en la fuga diastólica de Ca" ] 10 => array:2 [ "identificador" => "sec0035" "titulo" => "Mutaciones del receptor de rianodina asociadas a taquicardia ventricular polimórfica y catecolaminérgica" ] 11 => array:2 [ "identificador" => "sec0040" "titulo" => "Fuga de Ca en la insuficiencia cardiaca" ] 12 => array:2 [ "identificador" => "sec0045" "titulo" => "Estrategias farmacológicas para el control de arritmias que involucran al receptor de rianodina" ] 13 => array:2 [ "identificador" => "sec0050" "titulo" => "Financiación" ] 14 => array:2 [ "identificador" => "sec0055" "titulo" => "Conflicto de intereses" ] 15 => array:1 [ "titulo" => "Bibliografía" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaRecibido" => "2013-07-30" "fechaAceptado" => "2013-12-02" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec345515" "palabras" => array:6 [ 0 => "Receptor de rianodina" 1 => "Corazón" 2 => "Arritmias" 3 => "Fuga de calcio" 4 => "Chispas de calcio" 5 => "México" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec345514" "palabras" => array:6 [ 0 => "Ryanodine receptor" 1 => "Heart" 2 => "Arrhythmia" 3 => "Calcium leak" 4 => "Calcium sparks" 5 => "Mexico" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:2 [ "titulo" => "Resumen" "resumen" => "<p id="spar0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">La participación del canal de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>/receptor de rianodina en el acoplamiento excitación-contracción cardiaco se conoce desde finales de los años ochenta, cuando en varios trabajos trascendentales se comunicó por primera vez su purificación y se encontró que correspondía a las estructuras conocidas como «pies» localizadas en las cisternas terminales del retículo sarcoplásmico. Adicionalmente a su papel como canal responsable del aumento global y transitorio de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que activa a la maquinaria contráctil durante el ciclo cardiaco, el receptor de rianodina también libera Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> durante la fase de relajación, dando lugar a la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en la diástole que en condiciones fisiológicas regula el nivel de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> luminal, pero cuando se encuentra alterada participa en la generación de arritmias adquiridas o hereditarias. Recientemente, el esfuerzo de diversos grupos de investigación se ha enfocado en el desarrollo de herramientas farmacológicas para controlar la fuga diastólica de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que se presenta alterada en algunas enfermedades cardiacas. En esta revisión nos enfocamos en describir la participación del receptor de rianodina cardiaco en la fuga diastólica de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> así como los diversos enfoques terapéuticos que se han implementado para controlar su actividad exacerbada en la diástole.</p>" ] "en" => array:2 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "<p id="spar0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">The participation of the ionic Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> release channel/ryanodine receptor in cardiac excitation-contraction coupling is well known since the late ’80s, when various seminal papers communicated its purification for the first time and its identity with the “foot” structures located at the terminal cisternae of the sarcoplasmic reticulum. In addition to its main role as the Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> channel responsible for the transient Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> increase that activates the contractile machinery of the cardiomyocytes, the ryanodine receptor releases Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> during the relaxation phase of the cardiac cycle, giving rise to a diastolic Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> leak. In normal physiological conditions, diastolic Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> leak regulates the proper level of luminal Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>, but in pathological conditions it participates in the generation of both, acquired and hereditary arrhythmias. Very recently, several groups have focused their efforts into the development of pharmacological tools to control the altered diastolic Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> leak via ryanodine receptors. In this review, we focus our interest on describing the participation of cardiac ryanodine receptor in the diastolic Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> leak under physiological or pathological conditions and also on the therapeutic approaches to control its undesired exacerbated activity during diastole.</p>" ] ] "multimedia" => array:3 [ 0 => array:7 [ "identificador" => "fig0005" "etiqueta" => "Figura 1" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr1.jpeg" "Alto" => 1572 "Ancho" => 2167 "Tamanyo" => 267857 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0015" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Participación del receptor de rianodina en el acople excitación-contracción cardiaco. El influjo de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía los canales de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> dependientes de voltaje tipo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>L o receptores a dihidropiridinas (DHPR, localizados principalmente en los túbulos<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>T) activa a los receptores de rianodina (RyR) localizados en el RSU, lo que induce la liberación de cantidades mayores de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de los reservorios intracelulares aumentando rápidamente la concentración citoplasmática de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>. Esto permite que se active la maquinaria contráctil. Durante la relajación se promueve el cerrado del RyR y la remoción de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> se lleva a cabo principalmente por la bomba ATPasa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> del RS (SERCA), cuya función está regulada por fosfolamban (PLB) y que se encarga de recuperar los reservorios para el siguiente ciclo del AEC; el intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (Na-CaX) remueve parte del Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> hacia al exterior de la célula, y de forma minoritaria la bomba de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> de la membrana plasmática (Ca-ATPase). Las flechas indican la dirección de los flujos de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> vía los canales iónicos (DHPR, RyR), intercambiadores (Na-CaX) y bombas (SERCA, Ca-ATPase). Na-K ATPase, bomba ATPasa de Na<span class="elsevierStyleSup">+</span> y K<span class="elsevierStyleSup">+</span>; Na-HX, intercambiador Na<span class="elsevierStyleSup">+</span>/H<span class="elsevierStyleSup">+</span>.</p>" ] ] 1 => array:7 [ "identificador" => "fig0010" "etiqueta" => "Figura 2" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr2.jpeg" "Alto" => 1599 "Ancho" => 2214 "Tamanyo" => 388619 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0020" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Participación del receptor de rianodina en la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en la diástole. Imágenes bidimensionales obtenidas por microscopia confocal en donde se observa una chispa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (A) y una onda de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>espontánea (B). En la parte inferior de cada imagen se esquematizan 4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>unidades de clústers de RyR con 13<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>canales iónicos en promedio (tetrámeros en gris claro y centro blanco). La generación de una chispa de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> (A) requiere la activación cuasisimultánea de al menos 6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>RyR (tetrámeros en rojo) dentro de un clúster que generan una señal local de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que no propaga a los clústers adyacentes. Por otra parte, las ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> espontáneas (B) implican la propagación de la señal de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> a clústers de RyR adyacentes mediante el mecanismo de activación-difusión-activación que pueden generar contracciones fuera del ritmo. Por último, la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> que no se puede observar por microscopia confocal (fuga invisible) involucra la apertura de un número reducido (tal vez solo uno) de RyR que pueden localizarse principalmente fuera de los clústers.</p>" ] ] 2 => array:7 [ "identificador" => "fig0015" "etiqueta" => "Figura 3" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr3.jpeg" "Alto" => 1040 "Ancho" => 2199 "Tamanyo" => 195272 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0025" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Participación de la fuga diastólica de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> en la generación de actividad automática. Imágenes representativas de los aumentos transitorios de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> producidos por estimulación eléctrica (0.5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz, líneas verticales verdes) en cardiomiocitos control (A, control) y con fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> anormal durante la diástole (B, actividad automática). Las células cargadas con el indicador Fluo-3 se escanearon en la modalidad de line-scan en el microscopio confocal (línea negra), lo que permite generar las imágenes bidimensionales donde el eje<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>X representa el tiempo en segundos y el eje<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Y representa la longitud de la célula en micrómetros. La amplitud del transitorio de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> intracelular (F/F<span class="elsevierStyleInf">0</span>) producido por el estímulo eléctrico se muestra debajo de cada imagen. Las flechas rojas en las imágenes bidimensionales indican la fuga de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> durante la diástole en forma de chispas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span> y ondas de Ca<span class="elsevierStyleSup">2+</span>.</p>" ] ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "bibs0005" "bibliografiaReferencia" => array:101 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib0005" "etiqueta" => "1" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "contribucion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "titulo" => "A further contribution regarding the influence of the different constituents of the blood on the contraction of the heart" "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "etal" => false "autores" => array:1 [ …1] ] ] ] ] "host" => array:1 [ 0 => array:1 [ "Revista" => array:6 [ "tituloSerie" => "J Physiol" "fecha" => "1883" "volumen" => "4" "paginaInicial" => "29" "paginaFinal" => "42" "link" => array:1 [ 0 => array:2 [ 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2024 Octubre | 1001 | 48 | 1049 |
2024 Septiembre | 1517 | 30 | 1547 |
2024 Agosto | 960 | 18 | 978 |
2024 Julio | 694 | 24 | 718 |
2024 Junio | 894 | 38 | 932 |
2024 Mayo | 1042 | 38 | 1080 |
2024 Abril | 1098 | 32 | 1130 |
2024 Marzo | 973 | 31 | 1004 |
2024 Febrero | 808 | 36 | 844 |
2024 Enero | 954 | 22 | 976 |
2023 Diciembre | 762 | 47 | 809 |
2023 Noviembre | 1211 | 60 | 1271 |
2023 Octubre | 1411 | 97 | 1508 |
2023 Septiembre | 1222 | 30 | 1252 |
2023 Agosto | 772 | 28 | 800 |
2023 Julio | 772 | 34 | 806 |
2023 Junio | 965 | 42 | 1007 |
2023 Mayo | 1440 | 73 | 1513 |
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2023 Marzo | 1174 | 46 | 1220 |
2023 Febrero | 825 | 33 | 858 |
2023 Enero | 461 | 45 | 506 |
2022 Diciembre | 409 | 22 | 431 |
2022 Noviembre | 889 | 54 | 943 |
2022 Octubre | 795 | 31 | 826 |
2022 Septiembre | 1051 | 39 | 1090 |
2022 Agosto | 1054 | 47 | 1101 |
2022 Julio | 475 | 32 | 507 |
2022 Junio | 668 | 71 | 739 |
2022 Mayo | 699 | 48 | 747 |
2022 Abril | 779 | 28 | 807 |
2022 Marzo | 852 | 25 | 877 |
2022 Febrero | 729 | 45 | 774 |
2022 Enero | 662 | 44 | 706 |
2021 Diciembre | 530 | 41 | 571 |
2021 Noviembre | 785 | 66 | 851 |
2021 Octubre | 772 | 54 | 826 |
2021 Septiembre | 812 | 38 | 850 |
2021 Agosto | 611 | 40 | 651 |
2021 Julio | 552 | 19 | 571 |
2021 Junio | 605 | 49 | 654 |
2021 Mayo | 843 | 49 | 892 |
2021 Abril | 2106 | 132 | 2238 |
2021 Marzo | 1095 | 114 | 1209 |
2021 Febrero | 725 | 104 | 829 |
2021 Enero | 663 | 131 | 794 |
2020 Diciembre | 737 | 127 | 864 |
2020 Noviembre | 890 | 123 | 1013 |
2020 Octubre | 896 | 155 | 1051 |
2020 Septiembre | 1205 | 129 | 1334 |
2020 Agosto | 708 | 98 | 806 |
2020 Julio | 918 | 148 | 1066 |
2020 Junio | 924 | 115 | 1039 |
2020 Mayo | 1478 | 184 | 1662 |
2020 Abril | 1411 | 226 | 1637 |
2020 Marzo | 1028 | 172 | 1200 |
2020 Febrero | 907 | 44 | 951 |
2020 Enero | 698 | 28 | 726 |
2019 Diciembre | 610 | 38 | 648 |
2019 Noviembre | 856 | 52 | 908 |
2019 Octubre | 1167 | 120 | 1287 |
2019 Septiembre | 1121 | 127 | 1248 |
2019 Agosto | 517 | 153 | 670 |
2019 Julio | 704 | 112 | 816 |
2019 Junio | 602 | 208 | 810 |
2019 Mayo | 822 | 246 | 1068 |
2019 Abril | 500 | 341 | 841 |
2019 Marzo | 196 | 223 | 419 |
2019 Febrero | 163 | 252 | 415 |
2019 Enero | 108 | 194 | 302 |
2018 Diciembre | 153 | 161 | 314 |
2018 Noviembre | 247 | 278 | 525 |
2018 Octubre | 332 | 182 | 514 |
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2018 Julio | 100 | 196 | 296 |
2018 Junio | 132 | 190 | 322 |
2018 Mayo | 161 | 308 | 469 |
2018 Abril | 244 | 672 | 916 |
2018 Marzo | 119 | 303 | 422 |
2018 Febrero | 82 | 208 | 290 |
2018 Enero | 86 | 139 | 225 |
2017 Diciembre | 71 | 146 | 217 |
2017 Noviembre | 104 | 261 | 365 |
2017 Octubre | 113 | 354 | 467 |
2017 Septiembre | 126 | 203 | 329 |
2017 Agosto | 81 | 238 | 319 |
2017 Julio | 73 | 176 | 249 |
2017 Junio | 135 | 192 | 327 |
2017 Mayo | 120 | 186 | 306 |
2017 Abril | 88 | 209 | 297 |
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2017 Febrero | 139 | 245 | 384 |
2017 Enero | 42 | 122 | 164 |
2016 Diciembre | 52 | 122 | 174 |
2016 Noviembre | 65 | 227 | 292 |
2016 Octubre | 81 | 340 | 421 |
2016 Septiembre | 82 | 286 | 368 |
2016 Agosto | 82 | 275 | 357 |
2016 Julio | 58 | 59 | 117 |
2016 Junio | 66 | 216 | 282 |
2016 Mayo | 59 | 350 | 409 |
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2016 Marzo | 68 | 298 | 366 |
2016 Febrero | 105 | 228 | 333 |
2016 Enero | 104 | 163 | 267 |
2015 Diciembre | 37 | 137 | 174 |
2015 Noviembre | 52 | 197 | 249 |
2015 Octubre | 57 | 209 | 266 |
2015 Septiembre | 69 | 229 | 298 |
2015 Agosto | 62 | 72 | 134 |
2015 Julio | 143 | 55 | 198 |
2015 Junio | 79 | 22 | 101 |
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2015 Abril | 73 | 31 | 104 |
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2015 Febrero | 33 | 21 | 54 |
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