se ha leído el artículo
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Cincuenta años más tarde (1985), Rall y Fahy<span class="elsevierStyleSup">11</span> describieron como una alternativa potencial la congelación lenta, que consiste en solidificar una solución por enfriamiento rápido, hasta formar un estado vidrioso por elevación extrema de su viscosidad. Trounson<span class="elsevierStyleSup">12</span> fue el primero en sumergir un ovocito directamente en nitrógeno líquido y notificó una supervivencia aceptable y fecundación, pero bajas tasas de clivaje para la vitrificación.</p><p class="elsevierStylePara">Los procedimientos actuales de vitrificación implican la exposición de la célula a un volumen reducido de crioprotectores a elevadas concentraciones, seguido de congelación rápida en nitrógeno líquido. La alta osmolaridad de la solución de vitrificación rápidamente deshidrata a la célula. Al sumergirla de forma súbita en nitrógeno líquido se solidifica, de tal manera que el agua intracelular no tiene tiempo para formar cristales y lesionar a los organelos intracelulares;<span class="elsevierStyleSup">13</span> esto incrementa su supervivencia. </p><p class="elsevierStylePara">Varios autores han referido otros daños atribuibles a la célula, consecutivos a las bajas temperaturas; uno de los más importantes es la alteración de la segregación de los cromosomas durante la meiosis II.<span class="elsevierStyleSup">14-16</span> A ese respecto, la evidencia es aún insuficiente y un tanto controversial, ya que de igual manera otros sugieren que el huso meiótico puede sobrevivir a procesos de congelación-descongelación sin consecuencias, o al menos sin incremento del número de aneuploidías en los embriones resultantes.<span class="elsevierStyleSup">17-20 </span></p><p class="elsevierStylePara">Un programa efectivo de criopreservación de ovocitos resulta de gran utilidad para mujeres que, por razones médicas o personales, necesiten diferir la posibilidad de embarazarse, ya sea por amenaza de pérdida de la función ovárica, afección oncológica que exige quimioterapia o radioterapia o restricciones éticas y religiosas que limiten la criopreservación de embriones. Entre sus beneficios pueden mencionarse la posibilidad de preservar los ovocitos excedentes de ciclos de hiperestimulación en técnicas de reproducción asistida y facilitar a los centros de reproducción la posibilidad de crear un banco de óvulos eficiente. </p><p class="elsevierStylePara">A pesar de los beneficios reconocidos de la técnica de vitrificación, los datos informados aún son insuficientes.<span class="elsevierStyleSup">21</span> Este estudio tiene por objetivo dar a conocer la evolución de más de 1000 ovocitos humanos vitrificados en <span class="elsevierStyleItalic">cryotop</span> en un centro de reproducción asistida.</p><p class="elsevierStylePara"> MATERIAL Y MÉTODOS</p><p class="elsevierStylePara">Éste es un estudio descriptivo y observacional realizado en el Instituto Mexicano de Infertilidad de Guadalajara entre julio de 2004 y diciembre de 2008. Se vitrificaron los ovocitos propios excedentes de 79 pacientes en 88 ciclos de hiperestimulación ovárica para fecundación <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> y 169 ciclos de donantes.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Hiperestimulación ovárica.</span> La estimulación del ovario se realizó con hormonas recombinantes (FSHr) o menotropinas, de forma inicial en los días segundo o tercero del ciclo menstrual, de acuerdo con cada caso. Se aplicó el antagonista del GnRh (GnRH)a cuando al menos dos folículos alcanzaron 14 mm de diámetro. Se administraron hCG (10,000 UI) cuando dos o más folículos alcanzaron los 18 mm de diámetro. Los ovocitos se aspiraron 36 h después y se colocaron en medio de cultivo <span class="elsevierStyleItalic">Upgraded B2 INRA</span> (CCD) previamente gasificado (durante 18 h en promedio a 37°C y 5% de CO<span class="elsevierStyleInf">2</span>). En éste permanecieron un promedio de dos horas y luego se separaron del cúmulo. Se identificaron los ovocitos en metafase II por la extrusión del primer cuerpo polar y se vitrificaron.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Técnica de vitrificación.</span> Una vez separados del cúmulo, los ovocitos en metafase II se depositaron en la primera gota de un plato de cultivo con tres gotas de solución de 30 µl cada una. La primera era de solución de lavado y las otras de solución de equilibrio (etilenglicol al 7.5% y dimetilsulfóxido al 7.5%), hasta crear puentes entre ellas con la pipeta Pasteur, en dos ocasiones cada tres minutos hasta completar un promedio de 10 minutos. A continuación se depositaron en la solución de vitrificación (etilenglicol al 15%, dimetilsulfóxido al 15% y sucrosa, 0.5 M). En ésta se aspiraron, se devolvieron tres o cuatro veces y depositaron sobre la superficie del <span class="elsevierStyleItalic">cryotop</span> (Kitazato Supply Co, Fujinomiya, Japan). </p><p class="elsevierStylePara"> El <span class="elsevierStyleItalic">cryotop</span> consiste en una lámina muy delgada de polipropileno de 0.4 mm de ancho por 20 mm de largo x 0.1 mm de espesor y una cubierta protectora, también plástica de 3 cm de longitud (<span class="elsevierStyleBold">Imagen 1</span>). El <span class="elsevierStyleItalic">cryotop</span> se sumergió de manera súbita y directa en un recipiente con nitrógeno líquido para la colocación de su cubierta protectora (<span class="elsevierStyleBold">Imagen 2</span>). Los dos últimos pasos deben realizarse en el lapso de un minuto. <span class="elsevierStyleBold">Descongelación</span>. Para esta fase se observaron los siguientes pasos: </p><p class="elsevierStylePara"><img src="305v08n05-13147937fig1.jpg" alt="Imagen 1. Cryotop."></img></p><p class="elsevierStylePara">Imagen 1. <span class="elsevierStyleItalic">Cryotop.</span></p><p class="elsevierStylePara"><img src="305v08n05-13147937fig2.jpg" alt="Imagen 2. Cryotop sumergido directamente en nitrógeno líquido."></img></p><p class="elsevierStylePara"> Imagen 2. <span class="elsevierStyleItalic">Cryotop</span> sumergido directamente en nitrógeno líquido.</p><p class="elsevierStylePara">1. Los ovocitos se depositaron en solución descongelante por un minuto. </p><p class="elsevierStylePara">2. Luego se aplicó una solución diluyente por tres minutos.</p><p class="elsevierStylePara"> 3. De ésta se trasladaron a la primera solución de lavado (5 min) y luego a la segunda (5 min).</p><p class="elsevierStylePara">4. Los ovocitos sobrevivientes se dejaron en medio de cultivo por dos a cuatro horas y posteriormente se microinyectaron mediante la técnica convencional de ICSI.</p><p class="elsevierStylePara">Las soluciones utilizadas son de Kitazato Supply Co.<span class="elsevierStyleItalic">, </span>Japón.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Transferencia embrionaria</span>, En todas las pacientes los embriones se transfirieron el segundo día del desarrollo, bajo guía ecográfica con equipo de ultrasonido marca Aloka SSD500. Para la preparación endometrial se usó agonista del GnRH en las mujeres con función ovárica y estradiol en dosis progresivas, al principio con 2 mg los primeros ocho días del ciclo de preparación, 2 mg cada 12 h los días noveno, décimo y undécimo y 2 mg cada ocho horas a partir del día duodécimo. Para el soporte lúteo se inició progesterona en perlas de 200 mg el día de la descongelación de los ovocitos en horas de la tarde y se mantuvo cada 12 h hasta el día de la transferencia de los embriones. En este último día se incrementó la dosis a 200 mg oral cada ocho horas, y se agregó progesterona en ampolletas de 50 mg, una dosis diaria por vía intramuscular. En promedio, estrógeno y progesterona se mantuvieron hasta la semana octava de gestación. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Análisis de los datos</span>. Se emplearon la estadística descriptiva, cuadros de frecuencia y porcentaje, medidas de tendencia central y dispersión.</p><p class="elsevierStylePara"> RESULTADOS</p><p class="elsevierStylePara">Se desvitrificaron 1319 ovocitos entre julio del 2004 y diciembre del 2008 con una supervivencia del 90.2% (1190). Hasta 65% de los óvulos descongelados pertenecía a ovodonadoras. Se consiguió la fecundación después de la microinyección por ICSI en el 90%. De esa proporción, el 91% se dividió a cuatro células en el segundo día de desarrollo (<span class="elsevierStyleBold">Tabla 1</span>).</p><p class="elsevierStylePara"><img src="305v08n05-13147937fig3.jpg" alt="Tabla 1. Evolución de los ovocitos vitrificados de acuerdo con su origen."></img></p><p class="elsevierStylePara">La edad promedio de las pacientes transferidas fue de 34 ± 3.8 años (ovocitos propios) y 40 ± 5.3 años (ovocitos donados). Se han logrado 73 embarazos en 199 pacientes (36.6%), 18 de ellas en el grupo de ovocitos propios y 55/120 en el grupo de ovocitos donados. Trece embarazos (17.8%) no llegaron al término, uno de ellos un embarazo ectópico cornual (<span class="elsevierStyleBold">Tabla 2</span>).</p><p class="elsevierStylePara"><img src="305v08n05-13147937fig4.jpg" alt="Tabla 2. Generalidades y proporción de embarazos en pacientes con transferencia de embriones a partir de ovocitos vitrificados."></img></p><p class="elsevierStylePara"> Han nacido 65 neonatos, producto de 36 gestaciones únicas, 10 gemelares dobles y dos triples. Entre los nacidos, conviene destacar el caso de una paciente nacida de la combinación de técnicas de maduración <span class="elsevierStyleItalic">in vitro </span>de ovocitos humanos (MIV) y vitrificación. Los ovocitos madurados <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> y descongelados se transfirieron también en el segundo día de desarrollo embrionario en un ciclo posterior de preparación endometrial. Los nacidos vivos han sido sanos con excepción de una niña, hija de madre diabética en la que se diagnosticó una comunicación interventricular (<span class="elsevierStyleBold">Tabla 3</span>).</p><p class="elsevierStylePara"><img src="305v08n05-13147937fig5.jpg" alt="Tabla 3. Nacidos vivos de acuerdo con el origen de los ovocitos."></img></p><p class="elsevierStylePara"> DISCUSIÓN</p><p class="elsevierStylePara">La vitrificación conjuga altas concentraciones de crioprotectores en un volumen mínimo y elevadas velocidades de congelación (15,000-30,000 °C/min),<span class="elsevierStyleSup">22 </span>lo que genera como consecuencia la ausencia de cristales de hielo durante los procesos de congelación-descongelación,<span class="elsevierStyleSup">23</span> una mejor conservación de la ultraestructura y menor lesión de la fisiología ovocitaria.<span class="elsevierStyleSup">24</span> Borini y colaboradores han señalado que protocolos subóptimos para criopreservación de ovocitos pueden causar daño subletal relacionado con habilidad limitada para la fecundación;<span class="elsevierStyleSup">25</span> en este estudio se observó que en forma proporcional la mejor supervivencia se corresponde con mejores tasas de fecundación y clivaje.</p><p class="elsevierStylePara">En este protocolo se informaron tasas de supervivencia, fecundación y clivaje comparables con las notificadas por otros autores para la vitrificación de ovocitos humanos, cualquiera que fuera el dispositivo utilizado para el depósito final de los ovocitos (<span class="elsevierStyleItalic">cryotop</span>, <span class="elsevierStyleItalic">cryotip</span>, <span class="elsevierStyleItalic">cryoloop</span>, <span class="elsevierStyleItalic">cryoleaf</span>, etc.).<span class="elsevierStyleSup">26-30</span></p><p class="elsevierStylePara">La proporción de embarazo es similar a la comunicada para ciclos en fresco, de forma indistinta respecto de cuando se transfirieron embriones obtenidos a partir de ovocitos propios o donados vitrificados. Hasta el momento, los nacidos informados para la vitrificación de ovocitos parece tener una incidencia de anomalías congénitas (2.5%) no mayor a la comunicada para los nacidos de embarazos espontáneos en mujeres fecundas o infundas en ciclos frescos de fecundación <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span>.<span class="elsevierStyleSup">31</span> En esta serie de nacidos vivos (<span class="elsevierStyleItalic">n</span>=65) se registró una comunicación inter-ventricular en una niña hija de madre diabética, dato que corresponde al 1.53% de los casos y que muy probablemente no tenga relación con la técnica. En particular, no se realizó ninguna prueba de salud cromosómica en los embriones, pero se consideró que la proporción de nacidos vivos sanos notificada sustenta de alguna manera la seguridad de la técnica.</p><p class="elsevierStylePara">CONCLUSIÓN</p><p class="elsevierStylePara">La vitrificación de ovocitos humanos en <span class="elsevierStyleItalic">cryotop</span> proporciona elevada supervivencia ovocitaria, fecundación, clivaje y embarazo. Es una técnica sencilla y altamente reproducible que puede beneficiar a parejas con necesidad de postergar la posibilidad de embarazo, incluidos las pacientes oncológicas. Con ella, los centros de reproducción asistida pueden ofrecer una opción distinta y desestimular la demanda de congelación de embriones.</p><hr></hr><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Correspondencia:</span><br></br> Dra. Martha Isolina García Amador. <br></br> Boulevard Puerta de Hierro 5150. Torre C, 503-506. <br></br> Col. Plaza Corporativa Zapopan. C.P. 45116. Guadalajara, Jalisco. 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Material y métodos: Se vitrificaron los ovocitos excedentes de 79 pacientes en 88 ciclos de fecundación in vitro y 123 ciclos de donantes de julio del 2004 a diciembre del 2008. Se realizó una estimulación ovárica con FSHr o menotropinas, de acuerdo con la conveniencia clínica y la GnRh antagonista. Se aspiraron los ovocitos 36 h después de la administración de 10,000 UI de hCG. Los ovocitos maduros se colocaron en un plato de cultivo con una gota de 30 µl de solución de lavado y dos de solución de equilibrio (etilenglicol al 7.5% y dimetilsulfóxido [DMSO] al 7.5%) y se crearon puentes entre ellas cada dos a tres minutos. Luego se depositaron en la solución de vitrificación (etilenglicol al 15%, DMSO al 15% y sucrosa, 0.5 M). De ésta, se aspiraron y depositaron en la superficie del cryotop y éste se sumergió directamente en un recipiente con nitrógeno líquido para la colocación de su cubierta protectora. Se efectuó la descongelación 48 h antes de la transferencia embrionaria con solución descongelante y lavado (WS-1 y WS-2) (Kit-Kitazato-Japón). Los ovocitos sobrevivientes se microinyectaron (ICSI). Los embriones se transfirieron el segundo día de desarrollo bajo guía ecográfica. Resultados: Se han descongelado 1319 ovocitos con una supervivencia del 90.2%. Se transfirieron embriones en el segundo día de desarrollo en 199 pacientes en 257 ciclos. Se han conseguido 73 embarazos (36.6%) y han nacido 65 neonatos saludables. Conclusión: La vitrificación en cryotop es una técnica altamente eficaz para la criopreservación de ovocitos humanos." ] "en" => array:1 [ "resumen" => "Objective: Describe the evolution of 1319 human oocytes vitrificated in cryotop of an assisted reproduction centre in Guadalajara, México. 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Idioma original: Español
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2024 Noviembre | 27 | 0 | 27 |
2024 Octubre | 205 | 9 | 214 |
2024 Septiembre | 150 | 21 | 171 |
2024 Agosto | 97 | 7 | 104 |
2024 Julio | 116 | 8 | 124 |
2024 Junio | 97 | 9 | 106 |
2024 Mayo | 122 | 5 | 127 |
2024 Abril | 102 | 7 | 109 |
2024 Marzo | 94 | 14 | 108 |
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2024 Enero | 148 | 11 | 159 |
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2023 Noviembre | 160 | 9 | 169 |
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2023 Julio | 94 | 14 | 108 |
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2023 Mayo | 118 | 15 | 133 |
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2023 Febrero | 71 | 8 | 79 |
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2022 Noviembre | 77 | 15 | 92 |
2022 Octubre | 88 | 17 | 105 |
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2022 Agosto | 61 | 15 | 76 |
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2022 Abril | 78 | 17 | 95 |
2022 Marzo | 75 | 14 | 89 |
2022 Febrero | 84 | 8 | 92 |
2022 Enero | 104 | 9 | 113 |
2021 Diciembre | 73 | 18 | 91 |
2021 Noviembre | 86 | 16 | 102 |
2021 Octubre | 85 | 20 | 105 |
2021 Septiembre | 85 | 14 | 99 |
2021 Agosto | 67 | 9 | 76 |
2021 Julio | 61 | 13 | 74 |
2021 Junio | 63 | 15 | 78 |
2021 Mayo | 100 | 8 | 108 |
2021 Abril | 207 | 56 | 263 |
2021 Marzo | 238 | 29 | 267 |
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2021 Enero | 77 | 31 | 108 |
2020 Diciembre | 107 | 30 | 137 |
2020 Noviembre | 130 | 36 | 166 |
2020 Octubre | 72 | 26 | 98 |
2020 Septiembre | 62 | 21 | 83 |
2020 Agosto | 70 | 24 | 94 |
2020 Julio | 69 | 11 | 80 |
2020 Junio | 89 | 11 | 100 |
2020 Mayo | 98 | 24 | 122 |
2020 Abril | 120 | 24 | 144 |
2020 Marzo | 107 | 24 | 131 |
2020 Febrero | 98 | 10 | 108 |
2020 Enero | 101 | 13 | 114 |
2019 Diciembre | 76 | 21 | 97 |
2019 Noviembre | 75 | 12 | 87 |
2019 Octubre | 202 | 14 | 216 |
2019 Septiembre | 218 | 17 | 235 |
2019 Agosto | 171 | 8 | 179 |
2019 Julio | 146 | 13 | 159 |
2019 Junio | 213 | 35 | 248 |
2019 Mayo | 279 | 34 | 313 |
2019 Abril | 178 | 16 | 194 |
2019 Marzo | 81 | 8 | 89 |
2019 Febrero | 45 | 13 | 58 |
2019 Enero | 35 | 9 | 44 |
2018 Diciembre | 28 | 3 | 31 |
2018 Noviembre | 54 | 6 | 60 |
2018 Octubre | 68 | 6 | 74 |
2018 Septiembre | 37 | 11 | 48 |
2018 Agosto | 16 | 16 | 32 |
2018 Julio | 12 | 8 | 20 |
2018 Junio | 23 | 6 | 29 |
2018 Mayo | 34 | 11 | 45 |
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2017 Diciembre | 17 | 4 | 21 |
2017 Noviembre | 11 | 2 | 13 |
2017 Octubre | 9 | 1 | 10 |
2017 Septiembre | 11 | 3 | 14 |
2017 Agosto | 12 | 3 | 15 |
2017 Julio | 9 | 18 | 27 |
2017 Junio | 27 | 13 | 40 |
2017 Mayo | 24 | 15 | 39 |
2017 Abril | 20 | 2 | 22 |
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2017 Enero | 15 | 2 | 17 |
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2016 Marzo | 57 | 25 | 82 |
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2016 Enero | 47 | 16 | 63 |
2015 Diciembre | 48 | 23 | 71 |
2015 Noviembre | 60 | 21 | 81 |
2015 Octubre | 77 | 25 | 102 |
2015 Septiembre | 80 | 20 | 100 |
2015 Agosto | 77 | 15 | 92 |
2015 Julio | 78 | 14 | 92 |
2015 Junio | 51 | 3 | 54 |
2015 Mayo | 64 | 7 | 71 |
2015 Abril | 71 | 13 | 84 |
2015 Marzo | 57 | 9 | 66 |
2015 Febrero | 30 | 6 | 36 |
2015 Enero | 45 | 4 | 49 |
2014 Diciembre | 93 | 4 | 97 |
2014 Noviembre | 70 | 2 | 72 |
2014 Octubre | 70 | 4 | 74 |
2014 Septiembre | 46 | 3 | 49 |
2014 Agosto | 52 | 4 | 56 |
2014 Julio | 50 | 6 | 56 |
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2014 Mayo | 39 | 2 | 41 |
2014 Abril | 39 | 4 | 43 |
2014 Marzo | 41 | 1 | 42 |
2014 Febrero | 32 | 0 | 32 |
2014 Enero | 35 | 4 | 39 |
2013 Diciembre | 9 | 3 | 12 |
2009 Agosto | 633 | 0 | 633 |