Selección de donantes y recogida de las unidades en un banco de sangre de cordón umbilical
Donors selection and retrieval of units in an umbilical cord blood bank
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Algunas de las principales ventajas que han hecho de este recurso una alternativa frente al tradicional uso de los progenitores procedentes de médula ósea y/o sangre periférica son: abundante disponibilidad, sencillez de obtención, bajo riesgo de transmisión de enfermedades infecciosas tales como citomegalovirus y virus de Epstein-Barr, posibilidad de un mayor grado de incompatibilidad entre donante y receptor, y la menor incidencia de enfermedad del injerto contra el huésped<span class="elsevierStyleSup">1</span>. Por el contrario, el factor principal que limita el uso de SCU para trasplante es su contenido limitado, y a menudo escaso, de células progenitoras hematopoyéticas. Por ello la mayoría de los trasplantes se han realizado en pacientes pediátricos. No obstante, el número de receptores adultos se ha incrementado progresivamente en los últimos años<span class="elsevierStyleSup">2</span>, al tiempo que la dosis recomendada de células nucleadas totales (CNT) por kilogramo de peso del receptor se ha ido modificando desde 3,7 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span> hasta la actual, que se sitúa en 2 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span>. Desde la creación del primer banco de SCU en Nueva York a principios de los años 1990, se han establecido otros muchos en diversos países. Los bancos de SCU tienen como objetivo principal garantizar la calidad de las unidades almacenadas, que posteriormente se utilizarán para trasplante. Asimismo, deben garantizar el abastecimiento de unidades para el mayor número de pacientes posible. Por ello deben centrar sus esfuerzos en aumentar el contenido hematopoyético de las unidades de SCU que tienen almacenadas. A fin de conseguirlo, la mayoría de los bancos establecen un umbral mínimo de CNT para procesar y criopreservar las unidades, lo que supone desechar hasta el 70% de las unidades recibidas<span class="elsevierStyleSup">3</span>. La optimización tanto del proceso de selección de las donantes, en función de factores obstétricos, como del método de recogida podría mejorar la calidad de las unidades de SCU, de modo que disminuiría el número de unidades que se rechazan debido al bajo recuento celular. Actualmente los estándares NETCORD y FACT (Foundation for the Accreditation of Cellular Therapy) para bancos de SCU establecen como único factor obstétrico los embarazos de al menos 34 semanas, dejando a los bancos la posibilidad de establecer sus propios criterios de inclusión<span class="elsevierStyleSup">4</span>. En el presente estudio se han analizado los motivos por los que se rechaza a las donantes y las donaciones. También se ha estudiado la influencia de los factores maternos, neonatales y de recogida en el contenido de progenitores hematopoyéticos de las unidades. Se pretende con ello optimizar los métodos del banco de SCU aumentando la calidad de las unidades almacenadas. El objetivo final es establecer unos criterios que permitan una selección eficiente de las unidades.</p><span class="elsevierStyleSectionTitle">Material y método</span><p class="elsevierStylePara">Hemos realizado un estudio prospectivo para analizar las causas de rechazo de las donantes potenciales de SCU. Los criterios de selección empleados fueron los siguientes: a) firma del consentimiento informado por la madre; b)ausencia de historia familiar de enfermedades hereditarias y transmisibles, fundamentalmente hepatitis B, hepatitis C y virus de la inmunodeficiencia humana, y c) criterios obstétricos (edad gestacional 34 semanas; rotura de membranas < 24 h; ausencia de fiebre materna intraparto) y ausencia de anomalías congénitas en el recién nacido. Los procedimientos obstétricos se desarrollaron siguiendo las recomendaciones de la Federación Internacional de Ginecología y Obstetricia y no se modificaron en ningún caso con motivo de la recogida de la SCU. Realizamos un análisis retrospectivo de los motivos por los que se rechazaron las unidades de SCU recogidas y enviadas al banco, antes y después de la criopreservación. Analizamos en 2.000 unidades de SCU, que finalmente se almacenaron, qué factores obstétricos podrían influir en la celularidad total y el contenido en progenitores hematopoyéticos. Se analizaron los datos obstétricos recogidos de forma habitual, entre ellos: duración de la rotura de membranas antes del parto, duración del período activo de parto, parto espontáneo frente a parto instrumentado (ventosa obstétrica o fórceps), índice de Apgar y equilibrio ácido-base de la muestra del cordón umbilical. Se registraron también otros factores maternos como el uso de anestesia epidural o la información referida al parto (vía de parto, edad gestacional, número de gestación, peso de placenta, características del líquido amniótico) y factores neonatales (sexo y peso). Para finalizar, determinamos el peso fetal y placentario que optimiza la CNT de las unidades de SCU. Para este fin utilizamos los datos de 2.590 unidades. En la tabla 1 se indican las características generales de la muestra estudiada. Por otro lado, se realizó un estudio comparativo entre las unidades recogidas con 2 métodos diferentes: con la placenta intraútero y tras su expulsión (ex útero). Cuando la placenta estaba dentro del útero, se pinzó el cordón inmediatamente después del nacimiento y se limpió con alcohol al 70% y solución yodada. La SCU se recogió por gravedad mediante punción de la vena umbilical, en una bolsa de recogida doble de 350 ml (R 1315, Baxter), con 23 ml de anticoagulante citrato, fosfato, dextrosa y adenina (CPDA) o triple (R MQT 2205PU, Maco Pharma) con 21 ml de anticoagulante citrato, fosfato, dextrosa (CPD). Para la recogida ex útero, tras el alumbramiento, la placenta se trasladó rápidamente a la sala de procesamiento, donde se dispone del equipamiento necesario. Se situó la placenta en una bandeja diseñada especialmente con un orificio central que permitía el paso del cordón, de manera que pudiera realizarse la extracción por gravedad. Después de limpiar el cordón con alcohol al 70% y solución yodada, la SCU se recogió mediante punción de la vena umbilical. La SCU de cesáreas también se recogió en el quirófano, de idéntica manera. Las unidades de SCU así obtenidas se almacenaron a 4 °C hasta su procesamiento, que siempre se realizó antes de que transcurrieran 48 h desde la recogida.</p><p class="elsevierStylePara">Procesamiento y estudios biológicos</p><p class="elsevierStylePara">La manipulación de las unidades de SCU se realizó en cabina de flujo laminar (clase A). Inicialmente las unidades de SCU se procesaron y criopreservaron siempre que el tiempo desde la recogida fuera inferior a 48 h y el recuento de CNT fuera de 50 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span> o mayor. La cifra límite de CNT ha ido incrementándose, hasta duplicarse en la actualidad (100 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span>). La reducción de volumen de las unidades de SCU se llevó a cabo según el método de Rubinstein et al<span class="elsevierStyleSup">5</span>, utilizando hidroxietilalmidón o con el método arriba y abajo<span class="elsevierStyleSup">6</span>. La criopreservación de las células hematopoyéticas de SCU se realizó añadiendo gradualmente una solución de dimetilsulfóxido (DMSO) al 50% con dextrano (Rheomacrodex, Ybyss) durante 15 min hasta alcanzar una concentración final de DMSO del 10%. Las bolsas se introdujeron en estuches de aluminio para la congelación inmediata en congelador programable (Planer-Kryo 10) y posterior almacenamiento en nitrógeno líquido. Estos estuches, además de facilitar la ordenación durante el almacenamiento propiamente dicho, actúan como difusores de calor y proporcionan uniformidad durante el proceso de intercambio de temperatura (congelación/descongelación). Antes del procesamiento se calculó el volumen y se extrajo una muestra para el cálculo de la CNT de las unidades de SCU. Después del procesamiento y antes de la criopreservación se extrajeron muestras directamente de la bolsa para el recuento de CNT, análisis de células CD34+, viabilidad, tipificación de los antígenos de histocompatibilidad, ensayos clonogénicos y control microbiológico. Las muestras se extrajeron a través de uno de los puertos de la bolsa mediante jeringa y aguja de 16 G. Los recuentos celulares se realizaron en un autoanalizador ABX. Los progenitores hematopoyéticos CD34+ se cuantificaron mediante citometría de flujo. Se incubaron 5 × 10<span class="elsevierStyleSup">5</span> células con anti-CD45 FITC y anti-CD34 PE (Becton Dickinson, San José, CA, EE.UU.) durante 10 min a temperatura ambiente. Seguidamente se lisaron con solución de lisis FACS. Las células se fijaron con paraformaldehído al 0,5% y se almacenaron a 4 <span class="elsevierStyleSup">o</span>C hasta su análisis, que se efectuó siguiendo el protocolo de la International Society of Hematotherapy and Graft Engineering (ISHAGE)<span class="elsevierStyleSup">7</span>. Para realizar los ensayos clonogénicos –unidades formadoras de colonias (CFU)–, como índice funcional in vitro, se utilizó un medio comercial Methocult GF H4434, que contiene factores de crecimiento hematopoyéticos, al que se añadieron 2 × 10<span class="elsevierStyleSup">4</span> CNT de SCU. Los cultivos se realizaron por duplicado en placas de Petri de 35 mm de diámetro y se incubaron durante 14 días, a 37 <span class="elsevierStyleSup"> o</span>C en atmósfera húmeda, con 5% de dióxido de carbono. Las colonias se identificaron como agregados de más de 40 células y la lectura se realizó con microscopio invertido.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab01.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 1 Características generales de la muestra estudiada</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab02.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 2 Donantes de sangre de cordón umbilical rechazadas antes de la recogida</p><p class="elsevierStylePara">Análisis estadístico</p><p class="elsevierStylePara">Se compararon los grupos en función de factores maternos, neonatales y parámetros de las unidades de SCU. Se utilizó el paquete estadístico SPSS (versión 10.0, Chicago, IL, EE.UU.) para el análisis. Se aplicó la prueba de Kolmogorov-Smirnov para comprobar si las variables seguían una distribución normal. Se recurrió a análisis estadísticos paramétricos cuando la distribución de las variables era normal y, eventualmente, a transformaciones logarítmicas. Para las variables continuas de distribución normal se utilizaron la prueba de la t de Student y el análisis de la variancia. Los grupos se compararon mediante los tests de la χ<span class="elsevierStyleSup">2</span> o de Fisher para variables categóricas, o los de Kruskal-Wallis o U de Mann-Whitney para variables continuas. La correlación entre el volumen, contenido de CNT, número de CD34+ y CFU se analizó con el coeficiente de correlación de Spearman. El análisis multivariante se realizó mediante un modelo de regresión logística que incluía las variables que resultaron significativas en el análisis univariante. Con objeto de establecer el mejor punto de corte del peso placentario y del recién nacido que permitiera optimizar la recogida de SCU, se realizó un análisis de curva de eficacia diagnóstica (ROC, de receiver operating characteristic) de las variables predictivas. La significación estadística se fijó en valores de p menores de 0,05.</p><span class="elsevierStyleSectionTitle">Resultados</span><p class="elsevierStylePara">Causas de rechazo de donaciones y de unidades de sangre de cordón umbilical</p><p class="elsevierStylePara">De las 391 donaciones iniciales, no se aceptaron 127 (32,5%), principalmente por razones obstétricas (tabla 2). El volumen y la cifra de CNT medios (desviación estándar) de las 5.814 unidades recogidas fueron de 90,8 (79,8) ml y 98,0 (65,8) × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span>, respectivamente. De las 5.814 unidades recogidas, 3.250 (56%) se descartaron antes de la criopreservación. En la tabla 3 se reflejan las causas de exclusión. Finalmente se criopreservaron un total de 2.564 unidades de SCU, y 196 (7,5%) se rechazaron una vez criopreservadas (tabla 4).</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab03.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 3 Unidades de sangre de cordón umbilical rechazadas antes de criopreservación</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab04.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 4 Unidades de sangre de cordón umbilical rechazadas después de la criopreservació</p><p class="elsevierStylePara">Influencia de los factores obstétricos en la calidad de las unidades de sangre de cordón umbilical recogidas</p><p class="elsevierStylePara">Se obtuvo la información obstétrica detallada de 1.858 partos vaginales y de 142 cesáreas. En el análisis univariante, las variables obstétricas edad gestacional y peso fetal y placentario se asociaron significativamente con un alto contenido en CNT. Cuando se consideró el tipo de parto, se encontró una asociación significativa entre el parto instrumentado y un mayor número de CNT, mientras que no se encontraron diferencias entre las unidades recogidas de partos vaginales y cesáreas. En la tabla 5 se recogen los factores obstétricos en función del contenido en CNT de las unidades de SCU. La CNT se correlacionó significativamente con la cantidad de células CD34+ t ras reducción de volumen (rho = 0,522; p < 0,001) y, en menor medida, con los cultivos clonogénicos (rho = 0,335; p < 0,001). La mejor correlación se detectó entre las células CD34+ y los cultivos clonogénicos (rho = 0,55; p < 0,001). Las donaciones procedentes de recién nacidos de sexo femenino tuvieron un volumen similar a las procedentes de varones –media de 110,3 (24,5) frente a 115,2 (95) ml; p no significativa–, pero mayor número de CNT –141,7 (53,6) × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span> frente a 134,8 (45,2) × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span>; p < 0,001–. Sin embargo, la cantidad de células CD34+ y de CFU fue significativamente superior para los recién nacidos varones, con 40,6 (31,1) × 10<span class="elsevierStyleSup">5</span> y 130,7 (122) × 10<span class="elsevierStyleSup">4</span>, respectivamente, que para las mujeres, en quienes fue de 36,5 (28,0) × 10<span class="elsevierStyleSup">5</span> y 118,4 (111,5) × 10<span class="elsevierStyleSup">4</span>. Cuando realizamos el análisis multivariante para controlar el efecto de diferentes factores de confusión, obtuvimos que los principales factores que influyen en la CNT son la edad gestacional (p < 0,05), el peso de la placenta (p < 0,001) y el método de recogida (p < 0,001). El peso de la placenta fue el único factor que influyó en la cantidad de CNT, células CD34+ y CFU, mientras que el modo de recogida también influyó en la CNT y cantidad de células CD34+. A fin de optimizar el peso de la placenta y del recién nacido en función de la CNT mínima establecida por el banco para el procesamiento de las unidades, realizamos a un análisis ROC en el que la variable se consideró 0 o 1 si el recuento de células totales fue menor o bien igual o mayor de 60, 70, 80, 90, 100 y 120 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span>, respectivamente. Los puntos de corte para las diferentes celularidades entre 60 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span> y 100 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span> no fueron diferentes. En resumen, un peso placentario igual o mayor de 650 g es un criterio aceptable para recoger unidades se SCU después del desprendimiento de la placenta. Por otro lado, para los centros en los que se recogen las unidades antes del alumbramiento, un peso fetal igual o mayor de 3.200 g es un criterio apropiado para aceptar las donaciones. En la tabla 6 se pormenorizan los valores del análisis ROC, y en la figura 1 se muestra la curva ROC para 80 × 10<span class="elsevierStyleSup">7</span> células en función del peso placentario.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706fig05.jpg"></img></p><p class="elsevierStylePara">Fig. 1. Curva de eficacia diagnóstica para una cifra de células nucleadas totales mayor</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab06.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 5 Datos obstétricos en función del contenido total de células nucleadas de las unidades de sangre de cordón</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab07.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 6 Resultados del análisis de curva de eficacia diagnóstica en función de los 6 valores de células nucleadas totales</p><p class="elsevierStylePara">Influencia del método de recogida en la calidad de las unidades de sangre de cordón umbilical</p><p class="elsevierStylePara">Con relación a los factores de recogida, se obtuvo un mayor volumen y más CNT (antes y después de la reducción volumen) y células CD34+ cuando la placenta se encontraba dentro del útero, para los partos vaginales. Sin embargo, esto no pudo demostrarse en las unidades recogidas de cesáreas. En la tabla 7 se detallan las características de las unidades de SCU recogidas con ambos métodos.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="2v129n15-13111706tab08.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">TABLA 7 Comparación de las características de las unidades de sangre de cordón umbilical recogidas con 2 métodos diferentes: con la placenta intraútero y tras su expulsión</p><span class="elsevierStyleSectionTitle">Discusión</span><p class="elsevierStylePara">Los parámetros que se consideran habitualmente para determinar la calidad de las unidades de SCU son la CNT, las células CD34+ y las CFU in vitro. Estos 3 parámetros se correlacionan muy bien entre sí, sobre todo las células CD34+ y CFU, puesto que ambas variables determinan cuantitativa y funcionalmente la calidad de los progenitores hematopoyéticos<span class="elsevierStyleSup">8</span>. A pesar de que los últimos estudios publicados inciden en la importancia del contenido de células CD34+ en el prendimiento de los trasplantes<span class="elsevierStyleSup">9</span>, en la actualidad la selección inicial de las unidades se realiza atendiendo a su contenido en CNT. Por ello la mayoría de los bancos tienen un umbral mínimo de CNT, por debajo del cual las unidades se rechazan y no se procesan, ya que sólo serían útiles para pacientes de muy poco peso<span class="elsevierStyleSup">10</span>. Sin embargo, esta cifra difiere entre los distintos bancos e incluso en un mismo banco a lo largo del tiempo. En nuestro caso, por ejemplo, hemos visto que ha llegado a duplicarse. En cualquier caso, en la actualidad éste es el principal motivo por el que se rechazan las unidades que llegan a los bancos. Puesto que hoy día no hay unos criterios obstétricos uniformes para la selección de donantes de SCU, analizamos la influencia de diversos factores obstétricos sobre la CNT, células CD34+ y CFU, con el objetivo final de mejorar la calidad de la SCU. No hemos encontrado diferencias significativas entre las unidades recogidas de partos vaginales y cesáreas, pero sí entre partos vaginales asistidos y espontáneos, conteniendo las unidades recogidas de los primeros un mayor contenido en CNT. El parto asistido supone un factor de estrés para el neonato, lo que se ha demostrado que aumenta la CNT de las unidades recogidas en estas circunstancias<span class="elsevierStyleSup">11</span>. Según nuestros resultados, el peso de la placen-las unidades de SCU. Otros autores han llegado a esta misma conclusión<span class="elsevierStyleSup">12-15</span>, lo que parece lógico, puesto que a más peso de la placenta, mayor volemia y, por consiguiente, es posible recoger mayor cantidad de SCU. Puesto que existe una correlación clara entre el peso de la placenta y el del recién nacido, realizamos un análisis de curva ROC con el objetivo de determinar el valor óptimo de ambos parámetros para seleccionar las donantes según la CNT establecida por el banco. La curva ROC es un análisis que se utiliza comúnmente para encontrar el punto de corte óptimo de una prueba sobre la base de su sensibilidad y especificidad. Consideramos que dicha técnica podría resultarnos útil para determinar el punto de corte del peso de la placenta y del recién nacido para una óptima selección de las unidades, según la cifra de CNT requerida. Se han determinado valores de corte para recogida de SCU con un contenido de CNT igual o mayor de 80 × 10<span class="elsevierStyleSup">8</span>, de 695 g para el peso placentario y de 3.150 g para el peso fetal en nuestra área geográfica (mediante curvas ROC). Con esta técnica hemos podido establecer pesos mínimos estimados de la placenta (650 g) y del recién nacido (3.200 g) como factores predictivos para asegurar la calidad de las unidades de SCU recogidas. Teniendo en cuenta la asociación entre el peso placentario y del recién nacido, se podría utilizar el peso fetal estimado en el momento del parto como criterio de selección en bancos de sangre que recojan la SCU con la placenta intraútero. Otros autores<span class="elsevierStyleSup">14,16</span> han establecido pesos diferentes, tanto del recién nacido como de la placenta, a nuestro juicio excesivos, al menos en nuestro entorno geográfico, puesto que nos obligarían a rechazar a un excesivo número de donantes, con lo que se frustrarían las expectativas de donación de muchas mujeres y, más relevante aún, se perderían unidades que pueden ser útiles. El peso de la placenta podría utilizarse como criterio obstétrico de selección de las donaciones cuando la recogida se efectúe ex útero. Después de la selección de donantes, la recogida es un paso clave para controlar la calidad de las unidades de SCU. Aunque hay muchos estudios publicados al respecto<span class="elsevierStyleSup">17-19</span>, la opinión acerca de la mejor técnica de recogida no es unánime<span class="elsevierStyleSup">20</span>. Para evaluar este aspecto, comparamos en nuestro banco los 2 métodos más extendidos: con la placenta intraútero o tras su expulsión. La recogida intraútero la realizan habitualmente las matronas y ginecólogos de las maternidades, mientras que la recogida ex útero suele llevarla a cabo el propio personal técnico del banco, que se desplaza a la maternidad con este fin. Según nuestros resultados, las unidades recogidas con la placenta intraútero tienen mayor cantidad de células totales y progenitores hematopoyéticos que las extraídas ex útero. Nuestros resultados apoyan los presentados por Surbeck et al<span class="elsevierStyleSup">20</span>, que demostraron que la concentración media de CNT y el total de CFU fueron significativamente inferiores cuando se recogía la sangre después del alumbramiento de la placenta si se comparaba con las de antes del alumbramiento. El tiempo desde el pinzamiento del cordón hasta la recogida de sangre podría contribuir a explicar estas diferencias<span class="elsevierStyleSup">21</span>. Mientras que en el primer caso la recogida se lleva a cabo inmediatamente después del pinzamiento, en el segundo es necesario esperar a la expulsión placentaria. La presencia de hemorragia en la cara materna o fetal placentaria y los coágulos podrían explicar la pérdida de células progenitoras hematopoyéticas. Otros autores han demostrado que la colocación del recién nacido sobre el abdomen materno aumenta el volumen y células CD34+ de las unidades recogidas. Sin embargo, pensamos que no debe alterarse la sistemática del parto a causa de la recogida de la SCU. En resumen, el peso de la placenta es el factor que condiciona la calidad de las unidades de SCU, por lo que se podría establecer como criterio de selección de donantes. La recogida intraútero es, según nuestros resultados, mejor estrategia que la recogida ex útero para obtener unidades de SCU de adecuada calidad.</p><p class="elsevierStylePara">Correspondencia: Dra. P. Solves Alcaina. Banco de Sangre de Cordón Umbilical. Centro de Transfusión. Avda. del Cid, 65-A. 46014 Valencia. España. Correo electrónico: solves_pil@gva.es</p><p class="elsevierStylePara">Recibido el 11-10-2006; aceptado para su publicación el 13-2-2007.</p>" "pdfFichero" => "2v129n15a13111706pdf001.pdf" "tienePdf" => true "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec221476" "palabras" => array:5 [ 0 => "Sangre de cordón" 1 => "Progenitores hematopoyéticos" 2 => "Factores obstétricos" 3 => "Selección de donantes" 4 => "Método de recogida" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec221477" "palabras" => array:5 [ 0 => "Cord blood" 1 => "Hematopoietic progenitors" 2 => "Obstetrical factors" 3 => "Donor selection" 4 => "Mode of collection" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:1 [ "resumen" => "Fundamento y objetivo: El contenido cualitativo y cuantitativo de la fracción celular es el factor principal que limita el uso clínico de progenitores hematopoyéticos de sangre de cordón umbilical (SCU). Con el fin de optimizar la calidad de la SCU, se ha llevado a cabo un estudio sobre los criterios de selección de donantes en nuestro entorno geográfico, comparando además diferentes métodos de recogida. Material y método: Se analizaron 391 donaciones potenciales de SCU en la maternidad del Hospital Universitario La Fe. Se evaluaron diversos factores obstétricos relativos a 2.000 unidades de SCU. También se analizó el valor del peso placentario y del recién nacido. Resultados: Se excluyó al 32,5% de las donantes potenciales, principalmente por factores obstétricos. El 56% de las unidades recogidas se rechazó antes de la criopreservación, debido al insuficiente número de células. En el análisis multivariante se demostró que el peso de la placenta fue el único factor predictivo que influyó en la cantidad de células nucleadas totales, células CD34+ y unidades formadoras de colonias, mientras que el modo de recogida también influyó en las cifras de células nucleadas totales y células CD34+. Conclusiones: Nuestro estudio demuestra que, teniendo en cuenta diversos factores obstétricos previamente a la recogida de SCU, se puede optimizar su contenido en progenitores hematopoyéticos. La recogida intraútero es, según nuestros resultados, la mejor estrategia para obtener unidades de SCU eficientemente." ] "en" => array:1 [ "resumen" => "Background and objective: Umbilical cord blood (UCB) contains hematopoietic stem cells that can be used as an alternative to bone marrow transplantation in certain cases. This study was designed to investigate the influence of obstetric, neonatal and collection factors on the hematopoietic content of UCB donations. Material and method: A total of 391 consecutive maternal-neonatal pairs were evaluated during the prepartum period in the maternity ward at La Fe University Hospital. Maternal, neonatal and collection factors influencing cord blood quality measured as volume, total nucleated cells count, CD34+ cells and colony forming units were analyzed in 2,000 UCB collections. Results: 32.5% of UCB potential donors were excluded, mainly due to obstetrical reasons. Among the collected units, 56% were discarded before cryopreservation, mainly due to low cell counts. In the multivariate analysis, placental weight was a predictor variable for total nucleated cells, CD34+ cells and colony forming units, while the mode of collection influenced the total nucleated cells and CD34+ cell counts. 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Información del artÃculo
ISSN: 00257753Idioma original: Español
Datos actualizados diariamente
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|---|---|---|---|
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| 2017 Octubre | 16 | 0 | 16 |
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