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Los interesados en recibir la acreditación deben rellenar el cuestionario adjunto y enviarlo a la dirección indicada en el mismo.</p><hr></hr><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> INTRODUCCIÓN</span></p><p class="elsevierStylePara">La tomografía de emisión de positrones es una técnica no invasiva de diagnóstico por imagen en la que se utilizan radiotrazadores marcados que son administrados al sujeto de análisis en cantidades traza, por lo que no se producen efectos farmacodinámicos. La abundancia de los isótopos emisores de positrones de uso más frecuente (<span class="elsevierStyleSup">18</span>F, <span class="elsevierStyleSup">11</span>C) en las moléculas biológicas o en los fármacos, permite el cambio del isótopo frío por el radiactivo sin que se vean en absoluto afectadas las características químicas del compuesto. Además, el reducido período de semidesintegración de los emisores de positrones hace posible la realización de múltiples estudios en un mismo sujeto en un intervalo de pocas horas.</p><p class="elsevierStylePara">La técnica tomográfica posibilita la generación de imágenes volumétricas para obtener una visión global de la distribución del radiotrazador en el organismo, siendo además posible la cuantificación absoluta de la radiactividad presente en los tejidos en cada momento. La obtención de imágenes y/o datos dinámicos permite analizar la evolución de la concentración del radiotrazador a lo largo del tiempo, abriendo una nueva dimensión en los estudios farmacocinéticos.</p><p class="elsevierStylePara">Debido al reducido período de semidesintegración de los radionucleidos empleados para marcar los radiofármacos utilizados, estos deben producirse mediante un ciclotrón situado junto al laboratorio de radiofarmacia. Para los radiofármacos marcados con radionucleidos tales como carbono-11, nitrógeno-13 u oxígeno-15, la radiosíntesis debe llevarse a cabo «a pie de tomógrafo»; sin embargo, los radiofármacos fluorados, y en particular la 2-(<span class="elsevierStyleSup">18</span>F)-fluoro-2-deoxi-D-glucosa (<span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG), pueden sintetizarse en una Unidad de Radiofarmacia y ser distribuidos regionalmente a centros equipados con una cámara PET o una gammacámara de coincidencia. Dado que en una instalación PET el mayor costo se debe al ciclotrón y los laboratorios de síntesis y control de calidad, la existencia de los mencionados centros satélites ha permitido hacer de la PET un procedimiento diagnóstico cada día más extendido no solo por la mayor disponibilidad de la técnica, sino también por el favorable costo-beneficio que su aplicación ha venido demostrado en la aplicación de un sistema global de salud<span class="elsevierStyleSup">1,2</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> DESINTEGRACION Y ANIQUILACION</span></p><p class="elsevierStylePara">La desintegración de un radionucleido emisor de positrones ocurre según el esquema general siguiente:</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"><span class="elsevierStyleInf"><img src="125v20n06-13018738tab01.gif"></img></span></span></p><p class="elsevierStylePara">La emisión del positrón conlleva la estabilización del nucleido generado, ya que éste está más cerca de la línea de estabilidad. La emisión concomitante de un neutrino (ν) en cada desintegración hace que la energía de la emisión del positrón (β<span class="elsevierStyleSup">+</span>) sea variable, al contrario de lo que ocurre con las emisiones gamma, que tienen una energía fija para un radionucleido dado debido a que se deben a transiciones entre dos estados energéticos con valores definidos. Se habla por lo tanto de energía máxima y de energía media de emisión del positrón para cada radionucleido.</p><p class="elsevierStylePara">Tras la emisión del positrón, éste recorre una distancia (que será mayor cuanto mayor sea la energía de emisión del mismo) antes de chocar con un electrón y producirse la aniquilación. En este fenómeno la masa de ambas partículas se transforma en energía según la ecuación E = mc<span class="elsevierStyleSup">2</span>. La distancia recorrida por el positrón hasta su aniquilación es de unos pocos mm (en un medio acuoso, asimilable básicamente a un tejido) y ocurre en un tiempo muy corto desde la desintegración (en torno a 10<span class="elsevierStyleSup">-9</span> segundos).</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">PRODUCCION DE RADIONUCLEIDOS EMISORES DE POSITRONES</span></p><p class="elsevierStylePara">En Medicina Nuclear se utilizan radionucleidos de origen artificial emisores de radiaciones ionizantes que se obtienen bombardeando núcleos de átomos estables con partículas subatómicas (neutrones, protones, etc.) causando reacciones nucleares y convirtiendo núcleos estables en inestables (radiactivos). Los dispositivos y métodos usados para producir radionucleidos incluyen: reactores nucleares, aceleradores de partículas (lineales, ciclotrones...), generadores y el fenómeno de fotodesintegración.</p><p class="elsevierStylePara">La obtención de los radionucleidos utilizados en tomografía de emisión de positrones<span class="elsevierStyleSup">3</span> se lleva a cabo fundamentalmente por medio de ciclotrones<span class="elsevierStyleSup">4</span>, aunque existe también la posibilidad, hasta ahora poco explotada, de la utilización de generadores<span class="elsevierStyleSup">5,6</span>, si bien los isótopos obtenidos tienen unas características físicas y químicas desfavorables con respecto a los obtenidos en ciclotrones.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> FUNDAMENTOS MOLECULARES DE LA APLICACION DE LOS RADIOFARMACOS PET</span></p><p class="elsevierStylePara">La PET se basa en la utilización de radiofármacos marcados con isótopos emisores de positrones que permitan visualizar <span class="elsevierStyleItalic"> in vivo</span> diversos procesos fisiológicos o fisiopatológicos<span class="elsevierStyleSup">7,8</span>. De este modo, es posible monitorizar la evolución temporal de la distribución regional de la concentración de un radiofármaco tras la administración del compuesto marcado. El número de radiofármacos PET empleados hasta la fecha es muy elevado; no obstante la mayor parte de ellos se han utilizado en estudios de investigación y a excepción de unos pocos (singularmente la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG, la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA, la <span class="elsevierStyleSup"> 11</span>C-metionina, el <span class="elsevierStyleSup">15</span>O-agua, y el <span class="elsevierStyleSup"> 13</span>N-amoníaco) no han logrado introducirse en la práctica clínica habitual, si bien muchos de ellos presentan unas características inmejorables para el estudio de múltiples patologías. En la tabla I se recoge una selección de algunos de los radiofármacos PET utilizados hasta la fecha.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="125v20n06-13018738tab02.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">Para su aplicación <span class="elsevierStyleItalic">in vivo,</span> las características ideales que debe presentar un radiofármaco PET son:</p><p class="elsevierStylePara">-- Fácil penetración en el tejido diana.</p><p class="elsevierStylePara">-- Baja absorción inespecífica.</p><p class="elsevierStylePara">-- Elevada afinidad por su sitio de unión.</p><p class="elsevierStylePara">-- Disociación suficientemente lenta del lugar de unión como para detectar dicha unión tras la eliminación del compuesto unido inespecíficamente y del presente en el <span class="elsevierStyleItalic">pool</span> vascular.</p><p class="elsevierStylePara">-- Metabolización escasa (o nula) para facilitar el modelado matemático.</p><p class="elsevierStylePara">La PET permite estudiar, visualizar y cuantificar múltiples procesos bioquímicos y fisiológicos tales como el metabolismo glicídico<span class="elsevierStyleSup">9</span>, la tasa de síntesis proteica<span class="elsevierStyleSup">10</span>, la proliferación celular<span class="elsevierStyleSup">11,12</span>, la actividad enzimática<span class="elsevierStyleSup">13</span>, la tasa de consumo de oxígeno<span class="elsevierStyleSup">14</span>, el metabolismo β-oxidativo<span class="elsevierStyleSup">15</span>, el pH intracelular<span class="elsevierStyleSup">16</span>, el flujo sanguíneo<span class="elsevierStyleSup">17</span>, la transmisión de señales e incluso la expresión génica<span class="elsevierStyleSup">18,19</span> y su regulación, entre otros. Pero además es posible mediante PET analizar la densidad de receptores de una zona concreta<span class="elsevierStyleSup">20,21</span>, la cinética de la unión receptor ligando<span class="elsevierStyleSup">22</span> o enzima-sustrato<span class="elsevierStyleSup">23</span>, la afinidad de un compuesto por un receptor determinado<span class="elsevierStyleSup">24</span>, o el efecto de un fármaco en cualquiera de los procesos fisiológicos previamente referidos<span class="elsevierStyleSup">25,26</span>. A pesar de esta gran diversidad, y mediante una simplificación que quizá pudiera resultar excesiva, se pueden clasificar los radiofármacos PET en tres grandes grupos:</p><p class="elsevierStylePara">1. Sustratos de vías metabólicas.</p><p class="elsevierStylePara">2. Ligandos que interactúan selectivamente en un proceso de neurotransmisión.</p><p class="elsevierStylePara">3. Radiofármacos para la medida del flujo sanguíneo regional.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 1</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"> Características ideales radiofármacos PET:</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">-- Fácil penetración en tejido diana.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">-- Baja absorción inespecífica.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">-- Elevada afinidad por su sitio de unión.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">-- Disociación lenta.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">-- Metabolización escasa.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">SUSTRATOS DE VIAS METABOLICAS</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleSup"> 18</span>FDG</span></p><p class="elsevierStylePara">La <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG es sin duda el radiofármaco PET más importante<span class="elsevierStyleSup">9</span>. Esto se debe no sólo a su aplicación al estudio de patologías muy diversas, sino también a sus características metabólicas y a la rapidez de su síntesis. Tanto la glucosa como la FDG atraviesan la barrera hematoencefálica y entran fácilmente en las células, aunque este paso de incorporación es ligeramente más rápido en el caso del análogo fluorado. Tras su entrada en la célula, ambos compuestos inician la vía glicolítica, con la fosforilación por la enzima hexoquinasa en el carbono 6.</p><p class="elsevierStylePara">El siguiente paso de la vía glicolítica es la isomerización por acción de la enzima fosfoglucosa isomerasa para formar fructosa-6-fosfato. Puesto que tanto la glucosa-6-fosfato, como la fructosa-6-fosfato existen predominantemente en su forma cíclica, la reacción requiere la apertura del anillo, seguidamente la isomerización y finalmente el cierre del nuevo anillo de furanosa formado.</p><p class="elsevierStylePara">La intervención del grupo hidroxilo de C<span class="elsevierStyleInf">2</span> es fundamental para que pueda llevarse a cabo la isomerización; por lo tanto, la 2-<span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG-6-P, que carece de dicho grupo funcional, no es un sustrato adecuado para la fosfoglucosa isomerasa, por lo que la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG sufre únicamente el primer paso de la vía glicolítica: la fosforilación en C<span class="elsevierStyleInf">6</span> por acción de la hexoquinasa, ya que el compuesto resultante sufre atrapamiento metabólico por no poder ser metabolizado.</p><p class="elsevierStylePara">La reacción de desfosforilación de los derivados fosforilados (glucosa-6-P y <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG-6-P) es catalizada por la enzima glucosa-6-fosfatasa, cuya actividad solo es significativa en el hígado, dado que este órgano no emplea glucosa como fuente principal de energía y es además el encargado de regular la concentración de glucosa en sangre liberando la glucosa obtenida en la reacción de defosforilación referida. Por otra parte, las características de la glucokinasa hepática (la enzima encargada de fosforilar la glucosa a glucosa-6-P en este órgano, dado que la hexokinasa prácticamente no se expresa en los hepatocitos) son bastante diferentes de las de la hexokinasa. La hexokinasa tiene una elevada afinidad por la glucosa (K<span class="elsevierStyleInf">M</span> < 0,1 mM) y es inhibida por el producto de la reacción que cataliza. En contraposición, la glucokinasa tiene una afinidad mucho menor por la glucosa (K<span class="elsevierStyleInf">M</span> = 10 mM), de tal modo que su actividad es proporcional a la concentración de glucosa en sangre. Además, la glucokinasa no es inhibida por la glucosa-6-P. Con todo esto, no puede decirse que en el hígado la FDG sufra atrapamiento metabólico ya que las tasas de fijación en forma de FDG-6-P e hidrólisis a FDG son significativamente diferentes a las de otros tejidos.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 2</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Tras la fosforilación en C<span class="elsevierStyleInf">6</span> por la hexokinasa, el derivado fosforilado (<span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG-6P) sufre atrapamiento metabólico por no ser un sustrato adecuado para la fosfoglucosa isomerasa por carecer del ­OH en C<span class="elsevierStyleInf">2</span>.</span></p><p class="elsevierStylePara">Sin embargo, en el resto de los tejidos, se puede asumir que toda la FDG que entra en la célula queda fijada en su interior por sufrir atrapamiento metabólico: su conversión a FDG-6-P impide su difusión atravesando la membrana celular, y una vez que se encuentra en la forma fosforilada, esta molécula no puede ser metabolizada, por lo que el resultado final del proceso es el acúmulo progresivo del derivado fosforilado en el interior de la célula.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"> ¿Por qué se acumula <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG en las células tumorales?</span></span></p><p class="elsevierStylePara">A pesar de la amplia utilización de la FDG como radiofármaco principal en el estudio de la patología tumoral, debe quedar claro que este radiofármaco no es en absoluto un marcador de proliferación celular, sino del metabolismo glicídico celular. La concentración de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG en las células tumorales es un reflejo del aumento de su metabolismo glicídico para poder mantener una elevada tasa de crecimiento y/o proliferación<span class="elsevierStyleSup">27</span>. La necesidad de ATP para los procesos anabólicos referidos se traduce en un incremento de la captación de glucosa. Por lo tanto, la utilización de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG en oncología se fundamenta en la observación de que las células tumorales muestran una glicolisis aumentada, debido a tres factores:</p><p class="elsevierStylePara">1. El incremento en el número de transportadores de membrana para la glucosa<span class="elsevierStyleSup">28,29</span>--los denominados GLUT-1 a GLUT-9-- originado por un incremento de la expresión de sus genes (tal es así que para algunos autores el incremento de la expresión del gen GLUT-1 es uno de los marcadores más tempranos de transformación tumoral).</p><p class="elsevierStylePara">2. El aumento de la actividad de varias enzimas de la vía glicolítica<span class="elsevierStyleSup">30</span> (entre ellas la hexokinasa, fosfofructokinasa y piruvato deshidrogenasa) tanto por modificaciones alostéricas como por un incremento de la expresión de sus genes.</p><p class="elsevierStylePara">3. A todo esto se une el hecho de que la degradación de la glucosa en las células tumorales tiene lugar mediante una vía anaeróbica, en la que el rendimiento energético es de únicamente 2 moléculas de ATP por molécula de glucosa, mientras que mediante la oxidación aeróbica de la glucosa a CO<span class="elsevierStyleInf">2</span> y H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O se obtienen 38 ATP. El motivo de que la célula tumoral utilice preferentemente el metabolismo anaeróbico (a pesar de su menor rendimiento energético) se debe fundamentalmente a la velocidad con que se obtiene la energía en uno y otro caso, siendo ésta casi 100 veces mayor en la fermentación que en el catabolismo oxidativo. De este modo, y siempre que el aporte del sustrato energético sea suficiente, una célula tumoral en crecimiento compensa el menor rendimiento energético del proceso anaeróbico con su mayor velocidad, de tal modo que el consumo de glucosa es muy elevado.</p><p class="elsevierStylePara">En conjunto, estos tres factores conllevan la sustancial diferencia en el acúmulo de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG entre las células tumorales y las que no lo son, y posibilita la utilización de este radiofármaco como un indicador indirecto de proliferación celular.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Sustratos para el estudio de la β-oxidación</span></p><p class="elsevierStylePara">El estudio del metabolismo oxidativo miocárdico es de gran interés clínico porque permite la identificación del miocardio viable. En condiciones fisiológicas existe una estrecha relación entre la perfusión y el metabolismo miocárdicos y la función contráctil cardíaca. A pesar de que el corazón es capaz de metabolizar diversos sustratos, tiene clara preferencia por los ácidos grasos, aunque en determinadas circunstancias puede producirse una disminución de la beta-oxidación mitocondrial de los ácidos grasos en beneficio de un incremento del catabolismo de la glucosa.</p><p class="elsevierStylePara">Los radiofármacos más utilizados para el estudio del metabolismo oxidativo cardíaco son ácidos grasos marcados con carbono-11 (tales como el <span class="elsevierStyleSup">11</span>C-palmitato<span class="elsevierStyleSup">31</span> o el propio <span class="elsevierStyleSup">11</span>C-acetato<span class="elsevierStyleSup">32,33</span>). No es sin embargo sencillo el análisis cuantitativo de las imágenes obtenidas con estos radiofármacos, puesto que sufren una metabolización rápida con la generación de gran cantidad de productos intermediarios marcados (entre ellos <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span>).</p><p class="elsevierStylePara">Para simplificar el análisis cuantitativo, se ha utilizado un radiotrazador marcado con flúor-18, el ácido 14(R,S)-[<span class="elsevierStyleSup">18</span>F]fluoro-6-tio-heptadecanoico<span class="elsevierStyleSup">15,34</span> (<span class="elsevierStyleSup">18</span>FTHA). En este caso la presencia del átomo de azufre en el carbono 6 detiene la catabolización del compuesto, dando lugar al atrapamiento metabólico.</p><p class="elsevierStylePara">El <span class="elsevierStyleSup">18</span>FTHA entra en la vía β-oxidativa por su similitud con un ácido graso natural, sufriendo la activación al acil-coenzima A correspondiente y posteriormente las dos primeras vueltas completas de la β-oxidación, con lo que se eliminan los carbonos 1 a 4 en forma de 2 moléculas de acetil-CoA y queda el derivado fluorado activado como un acil CoA de 13 carbonos, con el azufre en la posición 2. En la siguiente vuelta, no puede llevarse a cabo ni siquiera la primera reacción de deshidrogenación catalizada por la acil-CoA deshidrogenasa, ya que la presencia del átomo de azufre imposibilita la formación del doble enlace. De este modo, se va acumulando progresivamente el metabolito fluorado en función de la tasa del metabolismo β-oxidativo.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Sustratos para el estudio de la proliferación: medida de la síntesis de DNA</span></p><p class="elsevierStylePara">El modo más preciso de medir la proliferación celular es determinando directamente la tasa de síntesis del DNA, ya que tanto el incremento de la glicolisis como de la tasa de síntesis de proteínas son indicadores indirectos que pueden por tanto dar lugar a diagnósticos erróneos en determinadas circunstancias.</p><p class="elsevierStylePara">Los radiofármacos ideales para visualizar proliferación celular mediante PET son por lo tanto análogos de las bases del DNA cuya incorporación a éste (esto es, su fijación intracelular) sí es una medida directa de la proliferación celular. La elección de la timidina como el nucleósido ideal es evidente, ya que la utilización de guanosina, citidina o adenosina conllevaría la incorporación del átomo radiactivo no sólo al DNA, sino también al RNA. Puesto que se intenta ver replicación (biosíntesis de DNA) y no síntesis de RNA, debe elegirse la base que es diferente entre ambos tipos de ácido nucleico.</p><p class="elsevierStylePara">Entre los radiofármacos utilizados destaca la <span class="elsevierStyleSup"> 11</span>C-timidina<span class="elsevierStyleSup">35</span>, pero la dificultad de su síntesis y su rápido catabolismo<span class="elsevierStyleSup">36,37</span> dificultan en gran medida su aplicación clínica<span class="elsevierStyleSup">38,39</span>. La introducción de otros análogos de la timidina marcados con flúor (especialmente la fluoro-timidina<span class="elsevierStyleSup">11,12</span>) y que no sean degradados tan rápidamente <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> ha supuesto un avance considerable en este campo.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 3</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">El modo más preciso de medir la proliferación celular es determinando directamente la tasa de síntesis del DNA, ya que tanto el incremento de la glicolisis como de la tasa de síntesis de proteínas son indicadores indirectos que pueden dar lugar a diagnósticos erróneos en determinadas circunstancias.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Síntesis de proteínas</span></p><p class="elsevierStylePara">Los aminoácidos no sólo se utilizan para la síntesis de proteínas, sino que además son los precursores de muchos compuestos nitrogenados, como por ejemplo nucleótidos, coenzimas, el grupo hemo, varias hormonas o neurotransmisores (epinefrina, norepinefrina, dopamina, serotonina, histamina...).</p><p class="elsevierStylePara">Por lo tanto, el destino final de un aminoácido va a depender de muchos factores, y sus productos de degradación o de biosíntesis van a ser muy diversos.</p><p class="elsevierStylePara">La mayor parte de los estudios PET con aminoácidos marcados se centran en su incorporación a las proteínas en el cerebro o en tejidos tumorales<span class="elsevierStyleSup">40</span>. Antes de incorporarse a las proteínas cerebrales, el aminoácido debe atravesar la barrera hematoencefálica, mediante un sistema específico de transportadores de aminoácidos. Estos transportadores son saturables, por lo que la tasa de transporte va a depender de la relación entre el aminoácido marcado inyectado y la concentración en la sangre de aminoácidos endógenos que puedan competir con éste por su unión al transportador.</p><p class="elsevierStylePara">Los aminoácidos L-fenilalamina, L-leucina, L-tirosina y L-metionina tienen las tasas de captación cerebral más alta, por lo que se consideran los aminoácidos ideales para la medida de la tasa de síntesis proteica en el cerebro<span class="elsevierStyleSup">41,42</span>.</p><p class="elsevierStylePara">El problema del destino del aminoácido marcado (fundamentalmente la disyuntiva entre la síntesis de proteínas y el metabolismo no proteico del precursor) y la eliminación de los metabolitos radiactivos, es el problema fundamental cuando se quiere llevar a cabo un análisis cuantitativo<span class="elsevierStyleSup">10</span>, pero puede solventarse mediante la utilización combinada de varios radiofármacos.</p><p class="elsevierStylePara">En cuanto a la posición del marcaje radiactivo, lo más sencillo es marcar el carbono carboxílico del aminoácido, pero el catabolismo de los aminoácidos así marcados conlleva la rápida producción de <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span>, que va a dificultar tanto el análisis visual de la imagen como el cálculo de parámetros semicuantitativos<span class="elsevierStyleSup">43</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Respecto a su aplicación clínica principal, la dinámica de incorporación diferencial a los tejidos la L-[metil-<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]metionina puede ser de utilidad para analizar cualitativamente diferencias metabólicas entre distintos tejidos, o para identificar transformaciones tumorales.</p><p class="elsevierStylePara">Además de participar en la síntesis de proteínas, el metabolismo de la L-[metil-<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]metionina es complejo y conlleva la aparición del carbono radiactivo en otros múltiples compuestos, ya que es éste carbono el que se transfiere a otras moléculas en las reacciones de transmetilación mediadas por la S-adenosil-metionina (SAM), uno de los agentes metilantes de mayor importancia biológica por la reactividad del metilo unido al ion sulfonio y que se produce <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> a partir de metionina. La SAM actúa, p. ej. como dador de metilos en la síntesis de fosfatidilcolina a partir de fosfatidiletanolamina, o de epinefrina a partir de norepinefrina. Las reacciones de transmetilación que implican a la SAM producen finalmente homocisteína, que puede transformarse de nuevo en metionina mediante una reacción de transmetilación con N<span class="elsevierStyleSup">5</span>-metil-tetrahidrofurano, o finalmente en alfa-cetobutirato, y succinil-CoA, un sustrato del ciclo de los ácidos tricarboxílicos, por lo que finalmente el carbono-11 aparecerá también en forma de <span class="elsevierStyleSup"> 11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Los análogos de aminoácidos marcados con <span class="elsevierStyleSup">18</span>F (especialmente los derivados fluorados de la tirosina<span class="elsevierStyleSup">44-46</span>, e incluso la propia <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA<span class="elsevierStyleSup">47</span>) presentan varias ventajas con respecto a los marcados con <span class="elsevierStyleSup">11</span>C, fundamentalmente en relación con el mayor período de semidesintegración del flúor-18 --que permite llevar a cabo estudios en tejidos con tasas de síntesis proteica reducidas--, y con la menor metabolización de los análogos fluorados, ya que al no tratarse de aminoácidos naturales han sido diseñados para poder obtener datos cuantitativos con mayor facilidad. Sin embargo, los procedimientos de síntesis son relativamente complejos, lo que hace que los aminoácidos fluorados no se utilicen profusamente para estudios PET.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 4</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">La dinámica de incorporación diferencial a los tejidos de la L-[metil-<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]metionina puede ser de utilidad para analizar cualitativamente diferencias metabólicas entre distintos tejidos, o para identificar transformaciones tumorales.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">LIGANDOS QUE INTERACTUAN SELECTIVAMENTE EN UN PROCESO DE NEUROTRANSMISION</span></p><p class="elsevierStylePara">La evaluación cuantitativa, semicuantitativa o simplemente el análisis visual de la unión de un ligando a un receptor, es quizá la aplicación más clara de la tomografía de emisión de positrones al análisis farmacológico <span class="elsevierStyleItalic">in vivo.</span></p><p class="elsevierStylePara">Los estudios de unión a receptores se pueden clasificar en tres grandes áreas:</p><p class="elsevierStylePara">1. Determinación de la interacción del fármaco con un receptor, de tal modo que la utilización como radiotrazador del propio fármaco marcado no produce alteración alguna en los parámetros bioquímicos que se quieren determinar<span class="elsevierStyleSup">48</span>.</p><p class="elsevierStylePara">2. En otros casos se procede a la co-administración del radiotrazador con el fármaco de interés para determinar, mediante la competición entre ambos, si el compuesto frío es capaz de disminuir la unión del marcado, lo que implicaría la unión de aquél al receptor con mayor afinidad que éste<span class="elsevierStyleSup">49</span>.</p><p class="elsevierStylePara">3. Se pueden determinar de manera indirecta los cambios en la concentración de un neurotransmisor endógeno en respuesta a un fármaco; si un fármaco actúa, p. ej., mediante el incremento de la liberación de dopamina, haciendo estudios PET con <span class="elsevierStyleSup">11</span>C-raclopride (un antagonista D<span class="elsevierStyleInf">2</span>) se puede comprobar que la ocupación de receptores por el compuesto marcado disminuye tras la administración de la droga, puesto que al liberarse el neurotransmisor éste ocupa los receptores<span class="elsevierStyleSup">50</span>. Una variación de este último método permite medir la inhibición de una enzima por un fármaco determinando la concentración del neurotransmisor que degrada aquélla; esto se ha hecho midiendo el incremento de la concentración de acetilcolina en respuesta a la inhibición de la acetilcolinesterasa por distintas drogas: el incremento del neurotransmisor se mide indirectamente utilizando un agonista muscarínico marcado<span class="elsevierStyleSup">51</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 5</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Para la determinación de la interacción de un fármaco con un receptor se puede usar la PET de tal modo que la utilización como radiotrazador del propio fármaco marcado no produce alteración alguna en los parámetros bioquímicos que se quieren determinar.</span></p><p class="elsevierStylePara">Para demostrar la actividad enzimática <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> mediante PET se pueden utilizar dos aproximaciones experimentales distintas. La primera se basa en la utilización de un sustrato marcado cuyo producto sufre atrapamiento metabólico en el lugar de la catálisis, mientras que la segunda implica la utilización de un inhibidor marcado que se una a la enzima con una tasa de disociación lenta. Entre los enzimas utilizados como dianas se incluyen la monoamina oxidasa<span class="elsevierStyleSup">52,53</span>, la acetilcolinesterasa<span class="elsevierStyleSup">54</span>, la dopamina descarboxilasa<span class="elsevierStyleSup">55</span>, o la fosfodiesterasa<span class="elsevierStyleSup">56</span>. La utilización de un sustrato PET puede permitirnos localizar los lugares donde una enzima se expresa, en qué concentración aparece e incluso cuál es su actividad. Este tipo de estudios aportan valiosa información sobre la actividad enzimática en diversos estados fisiológicos y patológicos y permite estudiar <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> el efecto de distintas drogas sobre estos sistemas enzimáticos.</p><p class="elsevierStylePara">Un ejemplo clásico de los estudios de ocupación de receptores son los llevados a cabo con neurolépticos<span class="elsevierStyleSup">57</span>. Se ha propuesto que la inducción de efectos extrapiramidales por los antipsicóticos clásicos se debe a una ocupación de receptores dopaminérgicos superior al 80%, mientras que el efecto antipsicótico sólo se manifiesta clínicamente cuando la ocupación es superior al 70%<span class="elsevierStyleSup">58</span>. Existe por lo tanto un estrecho margen en el que el fármaco debe funcionar<span class="elsevierStyleSup">49</span>. La acción simultánea sobre receptores D<span class="elsevierStyleInf">2</span> y 5HT<span class="elsevierStyleInf">2</span> de algunos compuestos (como p. ej. risperidona o clozapina<span class="elsevierStyleSup">59,60</span>) podría ser la causa que hace disminuir los efectos extrapiramidales. La única forma de determinar la ocupación de receptores <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> tras el tratamiento con distintos neurolépticos, es mediante PET: utilizando como radiotrazadores <span class="elsevierStyleSup">11</span>C-raclopride y <span class="elsevierStyleSup"> 11</span>C-N-metil-espiperona (un antagonista 5HT<span class="elsevierStyleInf">2</span>) se puede determinar el porcentaje de receptores a los que se une el radiofármaco<span class="elsevierStyleSup">61</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En ocasiones no es posible marcar con un isótopo emisor de positrones el compuesto de interés, pero incluso en estos casos puede ser útil la PET. La estrategia a seguir se basa habitualmente en cuantificar en qué medida la administración del fármaco no marcado reduce la incorporación del compuesto marcado. Si se utiliza una molécula selectiva por un subtipo de receptor concreto y se comprueba una disminución de la fijación del compuesto marcado tras la administración del fármaco frío, se demuestra que <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> éste se fija al mismo receptor que el compuesto marcado, con lo que se obtiene una información de gran utilidad para las fases subsiguientes de desarrollo del proceso<span class="elsevierStyleSup">62</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 6</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">La utilización de un radiofármaco PET adecuado permite localizar los lugares donde una enzima se expresa en el SNC, en qué concentración aparece e incluso cuál es su actividad.</span></p><p class="elsevierStylePara">Si bien el estudio de receptores con PET se ha dedicado mayoritariamente al SNC, son también numerosos los trabajos que mediante tomografía de emisión de positrones han permitido la caracterización <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> de diversos tipos de receptores en el corazón. Se han estudiado de este modo receptores muscarínicos<span class="elsevierStyleSup">63</span>, alfa-<span class="elsevierStyleSup">64,65</span> y beta-adrenérgicos<span class="elsevierStyleSup">66,67</span> y se ha podido visualizar <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> la innervación del corazón con falsos neurotransmisores como <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F-6-fluorometaraminol<span class="elsevierStyleSup">68</span>, o <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F-6-fluorodopamina<span class="elsevierStyleSup">69</span>. Estos estudios han permitido un conocimiento más preciso de la neurofisiología cardíaca y posibilitado el análisis <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> del efecto de diversas drogas sobre la función del corazón, con la consiguiente aplicación al desarrollo de nuevos fármacos más seguros, potentes y específicos.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> RADIOFARMACOS PARA LA MEDIDA DEL FLUJO SANGUINEO REGIONAL</span></p><p class="elsevierStylePara">Entre los trazadores difusibles, esto es, que son lavados del tejido por difusión simple, cabe destacar el H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">15</span>O, radiofármaco aplicado para la determinación y cuantificación del flujo sanguíneo, bien sea para el análisis de la perfusión de una lesión tumoral<span class="elsevierStyleSup">70</span> o para estudios de activación cerebral en respuesta a un estímulo<span class="elsevierStyleSup">71</span> o a un tratamiento farmacológico<span class="elsevierStyleSup">72</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Los radiofármacos extraíbles son atrapados en el tejido diana por un mecanismo dependiente de energía. Entre ellos cabe destacar el rubidio-82<span class="elsevierStyleSup">73</span> --cuyo mecanismo de acción se basa en la similitud del Rb<span class="elsevierStyleSup">+</span> con el K<span class="elsevierStyleSup">+</span>-- y el <span class="elsevierStyleSup">13</span>N-amoníaco<span class="elsevierStyleSup">74,75</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">SINTESIS DE RADIOFARMACOS EMISORES DE POSITRONES</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Generalidades</span></p><p class="elsevierStylePara">La síntesis de radiofármacos PET presenta unas características muy peculiares que la diferencian notablemente de los procedimientos de preparación de radiofármacos en Medicina Nuclear convencional.</p><p class="elsevierStylePara">Debe considerarse en primer lugar el tiempo de síntesis, ya que al trabajar con isótopos de vida media muy corta, deben buscarse necesariamente procedimientos en los que se reduzca al máximo el número de pasos, en los que cada uno de ellos transcurra con una gran eficiencia, y en los que la reacción de incorporación del isótopo tenga lugar en los pasos finales de la síntesis. De este modo se consiguen dos objetivos: reducir el tiempo total de síntesis y disminuir el número de sustancias obtenidas como producto secundario de la reacción.</p><p class="elsevierStylePara">Las síntesis de radiofármacos PET se llevan siempre a cabo a muy pequeña escala desde el punto de vista de la cantidad del compuesto producido (habitualmente tan solo unas pocas decenas de microgramos), lo que implica que siempre va a existir un gran exceso del precursor, y que por lo tanto es necesario utilizar un sistema de purificación adecuado del producto final. Estos han de ser rápidos y eficientes, por lo que lo más habitual es recurrir a la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), aunque en los casos en que sea posible, la utilización de sistemas de cartuchos de extracción en fase sólida es más adecuado ya que requiere un equipamiento más sencillo.</p><p class="elsevierStylePara">Cuando se desea afrontar un procedimiento de síntesis debe tenerse también en cuenta si el precursor necesario está disponible en el mercado; si no lo estuviera, debería sintetizarse <span class="elsevierStyleItalic">in situ,</span> lo que complica notablemente el proceso global, puesto que se requiere un equipamiento adicional costoso.</p><p class="elsevierStylePara">Es sin duda de gran importancia la posición del isótopo en el compuesto marcado, ya que esto puede condicionar el comportamiento biológico de la molécula, o los metabolitos marcados que se originen a partir del radiotrazador, lo que a su vez es importante cuando se llevan a cabo estudios de cuantificación absoluta.</p><p class="elsevierStylePara">La existencia de estereoisómeros de los que uno es activo y el otro no, hace que sea la estereoselectividad de las reacciones de síntesis un punto importante a tener en cuenta. En caso de existir la posibilidad, siempre es mejor utilizar un precursor en el que el centro quiral esté ya establecido y no se altere durante la síntesis, puesto que la obtención de una mezcla de isómeros implicaría un sistema de purificación mediante HPLC quiral que es bastante complejo.</p><p class="elsevierStylePara">Los procedimientos de síntesis deben además ser fácilmente automatizables, dado que el manejo de actividades muy elevadas (varios curios) hace inviable la utilización de procesos manuales; de ahí la importancia del establecimiento de procesos de manipulación adecuados a las actividades manejadas y la necesidad de utilizar sistemas de protección apropiados.</p><p class="elsevierStylePara">A todo esto debe añadirse que los radiofármacos deben ser estériles y apirógenos, ya que se van a administrar a los pacientes por vía endovenosa, por lo que todo el sistema de síntesis debe estar diseñado para obtener un producto final de las características referidas.</p><p class="elsevierStylePara">Finalmente, y cuando es necesario utilizar reacciones de sustitución electrofílica con F<span class="elsevierStyleInf">2</span>, debe considerarse la dificultad para obtener cantidades elevadas del radioisótopo en esta forma química, como veremos más adelante.</p><p class="elsevierStylePara">Con todas estas consideraciones previas, es patente la necesidad de un equipamiento complejo tecnológicamente avanzado para la síntesis de radiofármacos PET, a lo que hay que añadir los requerimientos de personal altamente especializado formado en los campos de la radiofarmacia, radioquímica, química orgánica, bioquímica, farmacología, informática, micromecánica, gestión de calidad, etc.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Automatización</span></p><p class="elsevierStylePara">La aplicación de sistemas de síntesis automatizada o de sistemas robotizados para la realización de diversas tareas en el laboratorio PET permite por una parte reducir extraordinariamente la exposición del personal a la radiación --protección al personal--, llevar a cabo las síntesis en condiciones fijadas y exactamente reproducibles --reproducibilidad--, minimizar la posibilidad del fallo humano --seguridad--, lo que a su vez redunda en la obtención de rendimientos mayores --eficiencia-- de radiofármacos de calidad asegurada y constante, todo lo cual facilita el cumplimiento de las buenas prácticas de laboratorio y las buenas prácticas radiofarmacéuticas y por lo tanto el funcionamiento de la unidad de acuerdo a un sistema global de aseguramiento y control de calidad.</p><p class="elsevierStylePara">La automatización o la robotización puede incluir diversos procesos, tales como síntesis, purificación del compuesto, control de calidad, preparación de monodosis listas para la administración, administración de dosis al paciente...</p><p class="elsevierStylePara">Las ventajas de la automatización son evidentes, y sólo tiene un inconveniente fundamental: su elevado costo. Por ello cuando se diseña un laboratorio de síntesis de radiofármacos PET debe considerarse el objetivo global del centro en el que la unidad PET está encuadrada: si se trata de un centro fundamentalmente clínico dedicado casi exclusivamente a estudios de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG, un centro clínico con capacidad de utilizar radiofármacos marcados con otros isótopos distintos del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F, un centro de investigación de nuevos radiotrazadores e incluso un centro dedicado exclusivamente a la producción centralizada de radiofármacos PET (<span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG) para su distribución a centros satélites equipados con tomocámaras adecuadas. La inversión será diferente en cada caso, condicionando el tipo de centro no solo qué se automatiza, sino también cómo se lleva a cabo la automatización.</p><p class="elsevierStylePara">La automatización y los problemas anteriormente referidos relativos a la síntesis de radiofármacos PET, básicamente el del reducido período de semidesintegración de los isótopos utilizados, hace muy necesaria la existencia de una coordinación muy precisa entre el personal encargado de la preparación de los radiofármacos y el encargado de la administración de las dosis y la adquisición de las imágenes. Deben por tanto programarse cuidadosamente las exploraciones que se llevan a cabo, lo que en definitiva afectará a la programación de la producción de isótopos en el ciclotrón y a la síntesis de radiofármacos.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 7</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">La automatización puede incluir diversos procesos, tales como síntesis, purificación del radiofármaco, control de calidad, preparación de monodosis listas para la administración, administración de dosis al paciente...</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Esquema general de síntesis</span></p><p class="elsevierStylePara">La aproximación a la síntesis química de un radiofármaco PET, teniendo en cuenta todas las consideraciones anteriormente apuntadas, podría no obstante reducirse a un esquema de síntesis que conceptualmente es muy sencillo (Fig. 1):</p><p class="elsevierStylePara"><img src="125v20n06-13018738tab03.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">* Se debe disponer de un compuesto (precursor frío) adecuado que tenga tres características básicas: un centro reactivo sobre el que se produzca el ataque del isótopo emisor de positrones durante la síntesis, en el que los grupos que no deben reaccionar estén protegidos con algún sustituyente adecuado, y que tenga los carbonos asimétricos en la configuración adecuada y que ésta no se altere en el transcurso de la reacción.</p><p class="elsevierStylePara">* El radionucleido (o una forma química reactiva derivada de éste) reacciona con el precursor frío, atacando el centro reactivo e incorporándose a la molécula.</p><p class="elsevierStylePara">* Una vez producida la reacción de incorporación del radionucleido, deben eliminarse los grupos protectores, para de esta forma obtener ya el producto deseado.</p><p class="elsevierStylePara">* Puesto que las reacciones químicas no transcurren con una eficiencia del 100%, siempre tendremos en la mezcla de reacción productos secundarios, por lo que el paso final de la síntesis consistirá en la purificación del compuesto y su formulación como solución inyectable.</p><p class="elsevierStylePara">Si bien la idea es muy sencilla, existen dificultades notables en cada uno de los pasos, empezando por la dificultad para obtener el precursor adecuado, conseguir una reacción directa con pocos productos secundarios y en la que no se den alteraciones de la configuración de los centros quirales, lograr un sistema de purificación que permita separar eficientemente el producto final de otros productos secundarios o restos de reactivos, y finalmente, que todo el proceso sea fácilmente automatizable.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Radiofármacos marcados con flúor-18</span></p><p class="elsevierStylePara">El flúor-18 es sin duda el radionucleido que cuantitativamente más se utiliza en tomografía de emisión de positrones. No obstante, este hecho se debe casi exclusivamente a la utilización de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG, el radiofármaco que ha posibilitado el salto del PET del ámbito de la investigación a la aplicación clínica diaria con gran impacto en el manejo del paciente<span class="elsevierStyleSup">76,77</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Por otra parte, es sorprendente que con la excepción de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG y en cierta medida de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA, la utilización de otros radiofármacos PET marcados con flúor-18 sea muy escasa<span class="elsevierStyleSup">78</span>, a pesar de que las características nucleares y químicas de este radioisótopo son excelentes:</p><p class="elsevierStylePara">-- Puede producirse en cantidades de hasta varios curios sin dificultad (en el caso del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span>, no así en el del <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleInf">2</span> para cuya producción existen dificultades importantes que hacen muy difícil la producción rutinaria de actividades elevadas).</p><p class="elsevierStylePara">-- Su energía de emisión del positrón es de tan sólo 0,64 MeV (la menor de todos los emisores de positrones con aplicación en PET), lo que conlleva diversas ventajas:</p><p class="elsevierStylePara">* La dosis recibida por el paciente será menor que en los casos en que la energía de emisión del positrón sea mayor; dado que la energía depositada hasta la aniquilación será menor en el caso del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F, la dosis absorbida será también inferior.</p><p class="elsevierStylePara">* La distancia recorrida por el positrón hasta su aniquilación será asimismo reducida, lo que permitirá obtener imágenes con mayor resolución porque la incertidumbre entre el punto de desintegración del radionucleido y de aniquilación del positrón será menor.</p><p class="elsevierStylePara">-- En la desintegración del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F no se emiten rayos gamma que puedan interferir la detección de los fotones de aniquilación, ni partículas (ß<span class="elsevierStyleSup">-</span>, *) que puedan suponer un incremento en la dosis recibida por el paciente.</p><p class="elsevierStylePara">-- Su período de semidesintegración (109,8 minutos) permite:</p><p class="elsevierStylePara">* Llevar a cabo síntesis complejas.</p><p class="elsevierStylePara">* Aplicar protocolos de estudio mediante PET que se prolonguen varias horas, lo que facilita la realización de estudios de farmacocinética (estudios dinámicos) y análisis de metabolitos.</p><p class="elsevierStylePara">* El transporte de radiofármacos marcados con flúor-18 a centros satélite u hospitales que dispongan de un tomógrafo PET o una gammacámara de coincidencia.</p><p class="elsevierStylePara">En cuanto a la presencia del flúor en las moléculas biológicas, hay que tener en cuenta que no es un átomo frecuente; sin embargo, muchos fármacos contienen flúor, ya que la introducción de este elemento en la estructura de una molécula pequeña lleva por lo general a una prolongación de la vida media de ésta en el organismo porque se dificulta su metabolización mediante reacciones de hidroxilación o conjugación, ya que el enlace C-F es más fuerte que el C-H, lo que lo hace más estable <span class="elsevierStyleItalic"> in vivo</span>. Por otra parte, el átomo de flúor y el de hidrógeno tienen un radio muy similar (ligeramente mayor el primero), por lo que el cambio de H por F no conlleva habitualmente modificaciones sustanciales en la estructura molecular por impedimentos estéricos. La electronegatividad del átomo de flúor es bien distinta de la del H (4,0 frente a 2,1), por lo que la presencia del F sí que va a afectar sustancialmente a muchas de las propiedades fisicoquímicas de la molécula en cuestión: efecto sobre los pKa de grupos cercanos, reactividad, posibilidad de formar puentes de hidrógeno (con todo lo que esto conlleva), etc.</p><p class="elsevierStylePara">La introducción de un átomo de flúor aumenta generalmente la lipofilicidad del compuesto, por lo que la repercusión en la biodistribución del radiotrazador va a ser notable, especialmente en lo que a la incorporación cerebral respecta.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 8</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">El flúor-18 es el radionucleido más utilizado en PET, pero con la excepción de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG y en cierta medida de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA, la utilización de otros radiofármacos marcados con flúor-18 es muy escasa a pesar de que las características nucleares y químicas de este radioisótopo son excelentes</span></p><p class="elsevierStylePara">No es por lo tanto posible asumir que el comportamiento biológico de una molécula y de su análogo fluorado vaya a ser similar, ya que es previsible que se altere su biodistribución, unión a proteínas, afinidad por receptores y/o transportadores específicos, metabolización, etc. Sin embargo, en muchos casos estas modificaciones son beneficiosas desde el punto de vista de la utilización del análogo fluorado como radiofármaco PET, dado que el cambio de H por F, que es probablemente la forma más sencilla de diseñar un nuevo radiofármaco fluorado, con frecuencia lleva a la producción de un compuesto que se comporta como un antimetabolito, sufre atrapamiento metabólico y por lo tanto presenta una farmacocinética que puede asimilarse a un modelo matemático sencillo que permita la cuantificación.</p><p class="elsevierStylePara">El flúor-18 puede obtenerse en dos formas químicas diferentes: ion fluoruro y flúor molecular, que poseen características químicas bien distintas y que van a utilizarse para la síntesis de radiofármacos fluorados mediante estrategias de síntesis diferentes.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"> Sustitución nucleofílica. Síntesis de <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>FDG</span></span></p><p class="elsevierStylePara">La utilización de <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> permite llevar a cabo reacciones de sustitución nucleofílica. El ejemplo más característico es sin duda la síntesis de <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>FDG.</p><p class="elsevierStylePara">El método más usado es la sustitución nucleofílica del triflato de manosa (1, 3, 4, 6-tetra-O-acetil-2-O-trifluorometanosulfonil-β-D-manopiranosa) con <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> promovido o bien por el aminopoliéter Kryptofix 2.2.2<span class="elsevierStyleSup">79</span> o bien por carbonato de tetrabutil-amonio (TBA)<span class="elsevierStyleSup">80,81</span>. En ambos casos, la hidrólisis --ácida o básica-- del producto fluorado, seguida de la purificación de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG mediante extracción en fase sólida, produce finalmente <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG epiméricamente pura. A continuación se describen brevemente cada uno de los pasos de la síntesis.</p><p class="elsevierStylePara">* Separación del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span>, recuperación del H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">18</span>O y elución del <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span>. El <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> se separa del H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">18</span>O mediante una resina de intercambio iónico. Cuando el material del blanco (<span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> en H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">18</span>O) pasa a través de la resina, el fluoruro queda retenido en la misma. Una vez recuperada el H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">18</span>O, se eluye la resina con una solución que libere el <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> para su utilización en la reacción de sustitución.</p><p class="elsevierStylePara">* Reacción con el precursor e hidrólisis. Para solventar el problema de la solubilización del fluoruro en un medio no acuoso y que a su vez mantenga al 18F<span class="elsevierStyleSup">-</span> en una forma altamente reactiva, se utiliza uno de los catalizadores de transferencia de fase mencionados (Kryptofix 2.2.2 o TBA). La utilización de la forma carbonatada del catalizador se debe a la escasa nucleofilia del anión, por lo que no interferirá en la reacción de sustitución nucleofílica compitiendo con el <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span>. Puesto que la reacción debe desarrollarse en medio anhidro (la elevada electronegatividad del ion fluoruro hace que en un medio acuoso esté fuertemente solvatado), se utiliza como disolvente acetonitrilo seco. Para la síntesis de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG se utiliza un derivado en el que el ataque nucleofílico del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> se produce sobre un grupo trifluorometanosulfonato (triflato). El ácido trifluorometanosulfónico y sus derivados se usan profusamente en síntesis química, ya que es uno de los ácidos orgánicos monopróticos más fuertes que se conocen, y en consecuencia el anión trifluorometanosulfonato es un excelente grupo saliente. En el proceso de síntesis de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG mediante sustitución nucleofílica, la utilización del triflato de manosa como precursor permite una síntesis muy rápida, en condiciones suaves y con escasas o nulas reacciones colaterales. La incorporación del <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> tiene lugar únicamente en el carbono 2 del precursor, porque los otros carbonos están protegidos por grupos acetilo. Dichos grupos deben eliminarse para obtener el producto final marcado, lo que se lleva a cabo mediante hidrólisis ácida con HCl o bien mediante hidrólisis básica con NaOH.</p><p class="elsevierStylePara">* Purificación y formulación. Los productos colaterales de la reacción (tales como los grupos acetato, el <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> no reaccionado, subproductos parcialmente acetilados...) deben eliminarse, lo que se lleva a cabo mediante varios cartuchos de extracción en fase sólida. El producto final (<span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG) se hace isotónico con NaCl concentrado y se esteriliza a través de un filtro de 0,22 µm antes de su administración.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 9</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Pasos de la síntesis de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDG:</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Separación del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleSup">-</span> y recuperación del H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">18</span>O.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Reacción con el precursor (triflato de manosa).</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Hidrólisis de los grupos protectores.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Purificación (SPE) y formulación.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"> Sustitución electrofílica con [<span class="elsevierStyleSup">18</span>F]F<span class="elsevierStyleInf">2</span>. Síntesis de <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>FDOPA</span></span></p><p class="elsevierStylePara">Para la síntesis de radiofármacos fluorados mediante sustitución electrofílica se utiliza <span class="elsevierStyleSup">18</span>F en forma de <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleInf">2</span> (gas), cuya producción en elevadas cantidades es muy complicada como se ha comentado anteriormente. Además, la utilización <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleInf">2</span> plantea problemas adicionales, relacionados con la reactividad y toxicidad de esta forma química, por lo que la síntesis de radiofármacos PET mediante sustitución electrofílica con <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F<span class="elsevierStyleInf">2</span> se lleva a cabo en pocos centros PET, a pesar de las enormes posibilidades que esta vía de síntesis nos abre.</p><p class="elsevierStylePara">En cuanto a la síntesis de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA, solo recientemente se ha sintetizado un precursor que mediante una reacción de fluorodesmetalación permita obtener el radiofármaco enantioméricamente puro en un sistema automatizado<span class="elsevierStyleSup">82</span>, ya que los procedimientos de síntesis anteriores producían una mezcla de isómeros fluorados que complicaba la obtención del producto deseado puesto que se hacían imprescindibles complejos sistemas de purificación mediante HPLC quiral. A continuación se describen brevemente los pasos de la síntesis de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA.</p><p class="elsevierStylePara">* Producción de [<span class="elsevierStyleSup">18</span>F]F<span class="elsevierStyleInf">2</span> y captura en el módulo de síntesis. La obtención de [<span class="elsevierStyleSup">18</span>F]F<span class="elsevierStyleInf">2</span> se lleva a cabo mediante el bombardeo con deuterones de una mezcla de <span class="elsevierStyleSup">19</span>F<span class="elsevierStyleInf">2</span> al 0,5% en Neón. La reacción nuclear <span class="elsevierStyleSup"> 20</span>Ne(d,α)<span class="elsevierStyleSup">18</span>F tiene una sección eficaz muy reducida, por lo que a las energías disponibles en un ciclotrón de uso clínico la actividad de saturación del blanco, y por lo tanto la cantidad de [<span class="elsevierStyleSup">18</span>F]F<span class="elsevierStyleInf">2</span> producido, será pequeña. El [<span class="elsevierStyleSup">18</span>F]F<span class="elsevierStyleInf">2</span> se atrapa en triclorofluorometano (enfriado a ­20 ºC con nitrógeno líquido) en el que se ha disuelto previamente el precursor (4,5-di[(1,1-dimetiletoxicarbonil)oxi]-N-formil-2-trimetilestannil-L-fenil­alanina etil éster).</p><p class="elsevierStylePara">* Reacción con el precursor e hidrólisis de los grupos protectores. La reacción de sustitución electrofílica se produce al aumentar la temperatura. El átomo de <span class="elsevierStyleSup"> 18</span>F sustituye en el anillo aromático a un grupo -Sn(CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>)<span class="elsevierStyleInf">3</span>, tras lo cual se produce la hidrólisis con ácido bromhídrico de los grupos protectores de otros carbonos no implicados en la reacción. La solución resultante se neutraliza con NH<span class="elsevierStyleInf">3</span> y se ajusta el pH a un valor próximo a 4 con un tampón fosfato adecuado.</p><p class="elsevierStylePara">* Purificación y formulación. La solución tamponada obtenida se purifica mediante radio-HPLC preparativa, consiguiéndose la separación de la <span class="elsevierStyleSup">18</span>F-DOPA de otros productos secundarios (básicamente dopa) y se esteriliza por filtración a través de un filtro de 0,22 µm.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 10</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Pasos de la síntesis de <span class="elsevierStyleSup">18</span>FDOPA:</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Captura del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F<span class="elsevierStyleInf">2</span> en freón.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Reacción con el precursor.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Hidrólisis de los grupos protectores.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Purificación (HPLC) y formulación.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Radiofármacos marcados con carbono-11</span></p><p class="elsevierStylePara">El carbono-11 es un radionucleido emisor de positrones caracterizado por un período de semidesintegración de tan sólo 20,4 minutos. La posibilidad de sustituir el carbono presente en la práctica totalidad de las moléculas biológicas por un isótopo emisor de positrones, permite obtener compuestos marcados con unas propiedades (químicas, farmacológicas...) exactamente iguales a la molécula sin marcar. El reducido período de semidesintegración del <span class="elsevierStyleSup">11</span>C hace que la aplicación de este isótopo en estudios <span class="elsevierStyleItalic">in vivo</span> en humanos no suponga una dosis de radiación de importancia para el sujeto, y que además se puedan llevar a cabo estudios repetitivos en un mismo individuo en un corto intervalo de tiempo. Los compuestos marcados con <span class="elsevierStyleSup">11</span>C deben sintetizarse justo antes de su utilización, lo que requiere en primer lugar la producción del radionucleido en un ciclotrón situado en el propio centro donde se lleve a cabo el estudio.</p><p class="elsevierStylePara">El <span class="elsevierStyleSup">11</span>C decae mediante la emisión de un positrón con una energía máxima de 960 KeV, un valor que hace que la distancia recorrida por el positrón hasta su aniquilación con un electrón sea pequeña.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"> Precursores primarios</span></span></p><p class="elsevierStylePara">La reacción más habitual de obtención del <span class="elsevierStyleSup">11</span>C es <span class="elsevierStyleSup"> 14</span>N(p,α)<span class="elsevierStyleSup">11</span>C sobre un blanco de nitrógeno natural con una pequeña cantidad de O<span class="elsevierStyleInf">2</span>. El carbono-11 se obtiene en forma de <span class="elsevierStyleSup"> 11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span>, una forma química muy poco reactiva, por lo que es necesario transformar esta molécula en un precursor primario adecuado que sea reactivo y que permita la incorporación del carbono inorgánico a una molécula orgánica.</p><p class="elsevierStylePara">El yoduro de metilo (<span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>I) es hasta la fecha el precursor primario más ampliamente utilizado para el marcaje con carbono-11, debido a su versatilidad en las reacciones de metilación, preferentemente para formar enlaces N-<span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>, S-<span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>, y O-<span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>. El desarrollo de nuevos precursores más reactivos (como p. ej. el triflato de metilo) está desplazando en los últimos años al yoduro de metilo como precursor. A pesar de todo, la investigación de nuevas técnicas de marcaje en las que se desarrollen las propiedades electrofílicas del yoduro de metilo frente a los carbaniones podría en un futuro cercano ampliar el abanico de reacciones en las que esta molécula se puede utilizar como precursor.</p><p class="elsevierStylePara">La forma más habitual de preparar el <span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>I es mediante la reacción del <span class="elsevierStyleSup">11</span>C-metanol con ácido yodhídrico concentrado, aunque existen métodos de producción del <span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>I en fase gaseosa con los que se obtienen rendimientos superiores, pero que requieren un equipamiento adicional complejo.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"> Síntesis de L-[metil-<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]metionina</span></span></p><p class="elsevierStylePara">Como ejemplo de la síntesis de un radiofármaco PET marcado con carbono-11, vamos a describir brevemente la de la L-[metil-<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]metionina, quizá el radiofármaco PET marcado con <span class="elsevierStyleSup">11</span>C más utilizado.</p><p class="elsevierStylePara">El <span class="elsevierStyleSup">11</span>C, obtenido en forma de <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span> en el blanco mediante la reacción <span class="elsevierStyleSup">14</span>N(ρ, α)<span class="elsevierStyleSup">11</span>C, se hace pasar por una trampa de frío mantenida a -150 ºC con nitrógeno líquido, con lo que se puede condensar una gran cantidad de <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span> en un volumen muy pequeño. Una vez conseguida la cantidad adecuada de <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span> en la trampa de frío, se incrementa la temperatura y se transfiere el <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span> liberado hasta el primer recipiente de reacción, donde se produce la reducción con tetrahidruro de litio y aluminio en tetrahidrofurano. La adición de ácido yodhídrico produce [<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]yoduro de metilo, que se destila a un segundo reactor donde se produce la reacción de metilación del precursor, en este caso la lactona de L-homoserina --que ya tiene el centro quiral en la configuración adecuada para producir únicamente el isómero L de la metionina--, en un medio hidroalcohólico fuertemente básico.</p><p class="elsevierStylePara">Tras la reacción de metilación, se neutraliza la solución con un tampón fosfato y se inyecta la solución resultante en un sistema de HPLC preparativa provisto de detectores de UV y de radiactividad, se recoge la fracción que contiene el compuesto deseado y se procede a la formulación del radiotrazador como una solución isotónica estéril.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 11</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">Pasos de la síntesis de L-[metil-<span class="elsevierStyleSup">11</span>C]metionina:</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Captura del <span class="elsevierStyleSup">11</span>CO<span class="elsevierStyleInf">2</span>.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Producción del precursor primario (<span class="elsevierStyleSup">11</span>CH<span class="elsevierStyleInf">3</span>I).</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Reacción con el precursor (tiolactona de L-homoserina).</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">* Purificación (HPLC) y formulación.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Radiofármacos marcados con oxígeno-15</span></p><p class="elsevierStylePara">El <span class="elsevierStyleSup">15</span>O es un radionucleido emisor de positrones caracterizado por un período de semidesintegración de tan sólo 2,05 minutos, por lo que su aplicación fundamental se basa en la posibilidad de llevar a cabo múltiples estudios repetidos en un mismo sujeto dejando transcurrir entre cada estudio tiempos tan cortos como 16-20 minutos.</p><p class="elsevierStylePara">La energía de emisión del positrón es en el caso del <span class="elsevierStyleSup">15</span>O de 1.720 KeV (casi tres veces superior a la del <span class="elsevierStyleSup">18</span>F), lo que implica que las imágenes obtenidas en estudios con radiofármacos PET marcados con <span class="elsevierStyleSup">15</span>O van a tener necesariamente una resolución peor que las obtenidas con radiofármacos fluorados.</p><p class="elsevierStylePara">Debido al reducido período de semidesintegración de este radionucleido, la síntesis de radiofármacos complejos es imposible. De hecho los únicos radiofármacos PET marcados con <span class="elsevierStyleSup">15</span>O que se utilizan son compuestos sencillos, tales como monóxido de carbono<span class="elsevierStyleSup">83</span>, dióxido de carbono<span class="elsevierStyleSup">84</span>, butanol<span class="elsevierStyleSup">85</span> o agua<span class="elsevierStyleSup">86</span>, con aplicación en estudios del metabolismo del oxígeno y del flujo sanguíneo.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Gases marcados con oxígeno-15: C<span class="elsevierStyleSup">15</span>O, C<span class="elsevierStyleSup">15</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span>, y <span class="elsevierStyleSup"> 15</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span></span></span></p><p class="elsevierStylePara">La producción de gases marcados con oxígeno-15 para su utilización como radiofármacos PET puede llevarse a cabo directamente en el blanco (lo que en ocasiones puede presentar diversos problemas químicos) o más frecuentemente, mediante la producción de <span class="elsevierStyleSup">15</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> y su posterior conversión a los gases carbonados referidos mediante reacciones en línea con distintos catalizadores. El producto de la reacción se dirige directamente al paciente para su administración en forma gaseosa. En estos casos es extremadamente importante el control del proceso de producción, puesto que se están manejando gases potencialmente tóxicos para el paciente. Asimismo, es complicado controlar con precisión la dosis del compuesto radiactivo administrada al paciente (incluso incluyendo un activímetro en la línea de administración), lo que junto con otra serie de dificultades técnicas --como p. ej. la emisión de gases radiactivos-- hace que los gases marcados con oxígeno-15 se utilicen en pocos centros.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"><span class="elsevierStyleSup"> 15</span>O-agua</span></span></p><p class="elsevierStylePara">La producción de <span class="elsevierStyleSup">15</span>O-agua es muy sencilla, puesto que se reduce a la obtención de vapor de agua mediante la reacción del oxígeno radiactivo --que viene del blanco en forma de <span class="elsevierStyleSup"> 15</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span>-- con hidrógeno gaseoso en un horno a 150 ºC. La reacción se favorece mediante un catalizador metálico tal como el paladio. El vapor de <span class="elsevierStyleSup"> 15</span>O-agua se condensa haciéndolo burbujear en un vial con suero salino fisiológico a temperatura ambiente.</p><p class="elsevierStylePara">Como característica diferencial de este sistema de obtención de agua marcada debe destacarse que en este caso el blanco no es una cavidad cerrada, sino que en él existe un flujo de gas que se va dirigiendo continuamente al laboratorio a medida que es bombardeado. Pueden de este modo obtenerse varios lotes del producto en muy poco tiempo, lo que es fundamental para la realización de estudios de activación cerebral utilizando este radiofármaco.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 12</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"> Síntesis de <span class="elsevierStyleSup">15</span>O-agua.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"> Producción de <span class="elsevierStyleSup">15</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> en continuo.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"> Reacción con H<span class="elsevierStyleInf">2</span> a 150 ºC catalizada por paladio.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic"> Condensación del vapor de <span class="elsevierStyleSup">15</span>O-agua en suero salino.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Radiofármacos marcados con nitrógeno-13</span></p><p class="elsevierStylePara">Los radiofármacos PET marcados con nitrógeno-13 se limitan casi exclusivamente al amoníaco (<span class="elsevierStyleSup">13</span>NH<span class="elsevierStyleInf">3</span>). La posibilidad de incorporar <span class="elsevierStyleSup">13</span>N a moléculas orgánicas, tales como aminoácidos, que pudieran ser utilizadas en el diagnóstico de diversas patologías (como los análogos marcados con <span class="elsevierStyleSup">11</span>C) tras su administración en humanos, es prácticamente inviable por varios factores: en primer lugar, el período de semidesintegración del <span class="elsevierStyleSup">13</span>N es de tan sólo 9,97 minutos, lo que impide llevar a cabo síntesis largas; en segundo lugar la incorporación de un átomo de nitrógeno a una molécula orgánica no es demasiado sencilla si se quiere obtener un producto puro; finalmente, debe considerarse que aunque en ocasiones se han llevado a cabo síntesis enzimáticas de algunos aminoácidos --utilizando enzimas adsorbidas en una columna-- es casi imposible obtener en un tiempo razonable el compuesto marcado libre completamente de restos de proteína proveniente de la columna, por lo que su administración en humanos ha sido muy cuestionada.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic"> Síntesis de <span class="elsevierStyleSup"> 13</span>N-amoníaco</span></span></p><p class="elsevierStylePara">Para la producción de este radiotrazador existen dos métodos diferentes mediante el bombardeo de H<span class="elsevierStyleInf">2</span><span class="elsevierStyleSup">16</span>O con protones: la reducción de los óxidos de nitrógeno obtenidos y la producción en el blanco. Existen además sistemas de obtención de <span class="elsevierStyleSup">13</span>N mediante bombardeo de carbono-13 con protones de baja energía.</p><p class="elsevierStylePara">En el primer método (el más ampliamente utilizado), el <span class="elsevierStyleSup"> 13</span>NH<span class="elsevierStyleInf">4</span><span class="elsevierStyleSup">+</span> puede obtenerse o bien directamente en el blanco<span class="elsevierStyleSup">87</span>, o bien mediante reducción de los óxidos de nitrógeno formados tras el bombardeo. Si se añade una pequeña cantidad de etanol al agua que va a ser bombardeada, el alcohol actúa como <span class="elsevierStyleItalic">scavenger</span> de los radicales libres producidos y posibilita la obtención directa de <span class="elsevierStyleSup"> 13</span>NH<span class="elsevierStyleInf">4</span><span class="elsevierStyleSup">+</span> en el blanco, ya que se produce la reducción <span class="elsevierStyleItalic">in situ</span> de los óxidos de nitrógeno generados. No obstante, es recomendable retener el catión radiactivo en una resina de intercambio catiónico, que es posteriormente eluída con una solución isotónica para la obtención de la solución inyectable de <span class="elsevierStyleSup">13</span>N-amoníaco. Sin embargo, si no se coloca en el blanco el mencionado <span class="elsevierStyleItalic"> scavenger,</span> tras el bombardeo se transfiere el material irradiado a un reactor que contiene un agente reductor en medio alcalino, de tal modo que los nitratos y nitritos producidos pueden reducirse para obtener <span class="elsevierStyleSup">13</span>NH<span class="elsevierStyleInf">4</span><span class="elsevierStyleSup">+</span>. Los medios reductores más empleados son el cloruro de titanio (III), el hidróxido de titanio (III) o la aleación de DeVarda en solución acuosa de hidróxido sódico. El <span class="elsevierStyleSup">13</span>NH<span class="elsevierStyleInf">3</span> así obtenido se destila y es atrapado en una solución ligeramente ácida en forma de <span class="elsevierStyleSup"> 13</span>NH<span class="elsevierStyleInf">4</span><span class="elsevierStyleSup">+</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">GARANTIA Y CONTROL DE CALIDAD</span></p><p class="elsevierStylePara">El reducido período de semidesintegración de los radiofármacos PET les dota de unas características excepcionales, fundamentalmente en lo que se refiere a la necesidad de síntesis rápidas y eficientes, que tienen lugar justo antes de la administración (excepto en algunos casos para los productos marcados con <span class="elsevierStyleSup">18</span>F), y en los que cada lote se usa para una sola administración (con excepción una vez más de algunos radiofármacos marcados con <span class="elsevierStyleSup">18</span>F). En muchos casos, la realización de un control de calidad exhaustivo en cada lote no es posible, o muchos de los controles sólo podrán estar terminados una vez que el radiofármaco haya sido administrado al paciente. Estos factores hacen que la validación del proceso de síntesis de los radiofármacos PET sea crucial para la obtención de compuestos con la calidad y pureza requeridas, por lo que debe desarrollarse un sistema de gestión de calidad que incluya no sólo los controles de calidad analíticos en el producto terminado, sino también un programa de garantía de calidad que permita controlar todo el proceso de preparación del radiofármaco, especialmente en lo que se refiere al sistema automatizado empleado para la síntesis.</p><p class="elsevierStylePara">La garantía de calidad es un concepto muy amplio que se refiere a todos los temas que afectan, individual o colectivamente, a la calidad de un producto, y que consiste en la suma total de las actividades organizadas con el objetivo de garantizar que los medicamentos posean la calidad requerida para el uso previsto<span class="elsevierStyleSup">88</span>. La garantía de calidad incluye cinco aspectos esenciales<span class="elsevierStyleSup">89</span>:</p><p class="elsevierStylePara">* Las normas de correcta fabricación.</p><p class="elsevierStylePara">* Las buenas prácticas de laboratorio.</p><p class="elsevierStylePara">* El sistema de control de calidad.</p><p class="elsevierStylePara">* El sistema de documentación.</p><p class="elsevierStylePara">* La autoinspección.</p><p class="elsevierStylePara">Las normas de correcta fabricación son la parte de la garantía de calidad que garantiza que los productos se producen de forma homogénea y se controlan para conseguir los niveles de calidad adecuados. Estas normas se refieren tanto a la producción como al control de calidad.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 13</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">La garantía de calidad es un concepto muy amplio que se refiere a todos los temas que afectan, individual o colectivamente, a la calidad de un producto, y que consiste en la suma total de las actividades organizadas con el objetivo de garantizar que los medicamentos posean la calidad requerida para el uso previsto.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Normas generales</span></p><p class="elsevierStylePara">Para la preparación y manipulación de radiofármacos deberá implantarse en las Unidades de Radiofarmacia un sistema de garantía de calidad que asegure que los radiofármacos PET poseen la calidad requerida para el uso previsto, y por tanto que se elaboran y controlan según las normas de correcta elaboración y control de calidad de medicamentos radiofármacos en las que se describen las condiciones que deben reunir las materias primas, los locales, el utillaje, la documentación, el personal, la elaboración, la dispensación, y en suma todos los procesos o factores que afecten al resultado final, tanto desde el punto de vista material como humano.</p><p class="elsevierStylePara">El sistema de garantía de calidad debe asegurar que los radiofármacos se diseñan y desarrollan teniendo en cuenta las normas de protección radiológica, las normas de correcta fabricación y las buenas prácticas de laboratorio; que la producción, el control y las responsabilidades del personal están especificadas claramente; que se realizan todos los controles necesarios durante los procesos y la validación del método, tanto en cuanto a la calidad de los materiales como a la idoneidad y estado del equipamiento; que se certifica la calidad de cada lote; que todo el proceso se documenta adecuadamente y que existe un procedimiento interno de auditoría de la calidad para la evaluación de la efectividad y aplicabilidad del sistema de garantía de calidad.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Controles de calidad</span></p><p class="elsevierStylePara">El control de calidad puede definirse como la parte de las normas de correcta fabricación relacionada con el muestreo, especificaciones, ensayos, y con la organización de la documentación que asegura que la calidad del producto ha sido juzgada como satisfactoria.</p><p class="elsevierStylePara">Los controles de calidad a efectuar a los radiofármacos PET en cada lote podrán en ocasiones finalizar después de la administración al paciente. En el caso de los radiofármacos PET existe disparidad de criterios sobre qué debe considerarse un lote: para los radiofármacos marcados con un radionucleido con un período de semidesintegración menor de 20 minutos, puede considerarse un lote a todas las preparaciones de ese radiofármaco llevadas a cabo en un mismo día, mientras que para los radiofármacos marcados con radionucleidos con período de semidesintegración superior a 20 minutos, cada síntesis corresponde a un lote distinto<span class="elsevierStyleSup">90</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Para aquellos radiofármacos PET que cuentan con monografía en la Real Farmacopea Española, se deberá cumplir lo especificado en la misma; en su defecto se deberá emplear la Farmacopea Europea, cualquiera de las farmacopeas de los estados miembros de la Unión Europea, la Farmacopea Americana, u otros textos científicos de reconocido prestigio.</p><p class="elsevierStylePara">Como norma general, los controles de calidad que deberán llevarse a cabo en cada lote para los radiofármacos PET son:</p><p class="elsevierStylePara">* pH.</p><p class="elsevierStylePara">* Inspección visual (presencia de partículas, color...).</p><p class="elsevierStylePara">* Pureza radioquímica: para calcularla es necesario separar las diferentes especies químicas que contienen el radionucleido de interés para poder estimar el porcentaje de radiactividad asociado a la forma química del radiofármaco. Los métodos más empleados son la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) y la cromatografía en capa fina (TLC), aunque debido a la mayor sensibilidad de la primera para la detección y cuantificación de cantidades muy pequeñas, es la más utilizada en radiofarmacia PET.</p><p class="elsevierStylePara">* Pureza química: permite identificar y cuantificar las sustancias no radiactivas presentes en la muestra (restos de los materiales de partida y reactivos empleados...); se emplean habitualmente sistemas cromatográficos (HPLC y TLC).</p><p class="elsevierStylePara">* Pureza radionucleídica: el método más ampliamente utilizado es la espectrometría gamma, aunque no es un método completamente fiable por varios motivos. En primer lugar, es difícil detectar impurezas emisoras de partículas alfa o beta; en segundo lugar, cuando se emplean detectores de yoduro sódico no es posible identificar con claridad los picos correspondientes a impurezas emisoras gamma sobre el espectro del radionucleido principal; y finalmente, los espectros gamma de muchos emisores de positrones son indistinguibles con el equipamiento utilizado habitualmente, ya que únicamente se identifica un pico principal a 511 KeV (y en ocasiones un pico secundario a 1.022 KeV en función de la geometría del detector). Por ello es importante en los radiofármacos emisores de positrones determinar además el período de semidesintegración de la muestra, lo que nos permite tener una aproximación bastante certera de la identidad radionucleídica.</p><p class="elsevierStylePara">* Actividad específica:</p><p class="elsevierStylePara">* Presencia de disolventes residuales: en el caso de que pudieran aparecer, deberá determinarse su cantidad, generalmente mediante cromatografía de gases, y comprobar que no se superan los límites establecidos en la legislación vigente<span class="elsevierStyleSup">91</span>.</p><p class="elsevierStylePara">* Test de endotoxinas (valor límite).</p><p class="elsevierStylePara">* Esterilidad.</p><p class="elsevierStylePara">La frecuencia de los ensayos límite de endotoxinas y de esterilidad podrá modificarse y adaptarla a una periodicidad distinta a la de cada lote, en el caso de que después de una documentación exhaustiva se obtengan siempre resultados negativos<span class="elsevierStyleSup">90</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"> Certificación prospectiva de la calidad</span></p><p class="elsevierStylePara">El sistema global de garantía de calidad en la producción de radiofármacos PET tiene como objetivo principal la certificación prospectiva de la calidad y pureza de cada lote. Sólo es posible garantizar la calidad de un medicamento mediante un sistema de garantía de calidad diseñado adecuadamente, correctamente implantado, que comprenda un sistema de documentación completo y bien organizado, en el que las operaciones son llevadas a cabo por personal cualificado que disponga de los medios e instalaciones adecuados, y todo ello monitorizado con los necesarios controles antes, durante y después de la producción.</p><p class="elsevierStylePara">Las singulares características de los radiofármacos PET y la necesidad de tomar la decisión de liberar un lote antes de haber finalizado muchos de los controles de calidad necesarios, hacen de la consecución del objetivo global de calidad en la preparación de radiofármacos PET una necesidad ineludible para asegurar que son adecuados para el uso previsto, seguros y efectivos y que por lo tanto permiten la obtención de datos diagnósticos de la máxima fiabilidad.</p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold"><span class="elsevierStyleItalic">Punto clave 14</span></span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleItalic">El sistema global de garantía de calidad en la producción de radiofármacos PET tiene como objetivo principal la certificación prospectiva de la calidad y pureza de cada lote.</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">LA PET EN LA INVESTIGACION Y DESARROLLO DE NUEVOS FARMACOS</span></p><p class="elsevierStylePara">Existen campos de la investigación biomédica en el desarrollo de nuevos fármacos en los que la valoración de los resultados es muy compleja y costosa; podrían citarse como ejemplo paradigmático las enfermedades cerebrales crónicas, en las que es necesario el estudio de un gran número de pacientes y períodos de observación muy prolongados, con la inversión que ello conlleva, para poder obtener conclusiones científicamente validables. En estos casos, para las empresas farmacéuticas la decisión de comenzar ensayos clínicos a gran escala debe fundamentarse en evidencias suficientes para casi asegurar el éxito de la inversión, por lo que son necesarios muchos estudios previos <span class="elsevierStyleItalic">in vitro</span> y en animales de experimentación que no solo prolongan la investigación durante mucho tiempo, sino que además tienen un costo muy notable. La tomografía de emisión de positrones constituye en este sentido una técnica con un incalculable valor añadido<span class="elsevierStyleSup">92,93</span> ya que es el único método que permite obtener datos cuantificables objetivamente sobre variables fisiológicas o patológicas relacionadas con la gravedad, evolución y pronóstico de dichos trastornos.</p><p class="elsevierStylePara">Esta tecnología abre por lo tanto una nueva era en la investigación farmacéutica y biológica en múltiples campos<span class="elsevierStyleSup">94,95</span>; sin embargo, para que la aplicación de la imagen metabólica en la investigación y desarrollo de nuevos fármacos tenga utilidad, debe aplicarse un método en el que estén perfectamente definidos diversos parámetros que van a afectar al resultado final.</p><p class="elsevierStylePara">Por otra parte, debe destacarse el desarrollo de los tomógrafos construidos para su utilización con animales pequeños (microPET), que permiten la aplicación de la tecnología PET con una resolución de pocos milímetros<span class="elsevierStyleSup">96,97</span>. Estos nuevos tomógrafos han sido diseñados para la investigación en animales de experimentación como ratas y ratones, lo que junto con la posibilidad de utilizar ratones quiméricos genéticamente modificados, abre una nueva vía a la investigación en el campo de las ciencias biomédicas que sin duda va a tener en los próximos años gran impacto en la estrategia de I + D de las empresas farmacéuticas<span class="elsevierStyleSup">98</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Dada la tasa actual de evolución de la biología molecular de los receptores del SNC, la diferencia entre el número de radiotrazadores disponibles y las drogas potenciales va creciendo rápidamente<span class="elsevierStyleSup">99</span>. Debemos por tanto insistir en que la utilidad de la tecnología PET en la búsqueda de nuevos agentes terapéuticos descansa sin duda en la obtención de compuestos marcados, por lo que la potenciación de la radioquímica y la radiofarmacia van a ser puntos clave en el desarrollo de este apasionante campo.</p>" "pdfFichero" => "125v20n06a13018738pdf001.pdf" "tienePdf" => true "multimedia" => array:6 [ 0 => array:6 [ "identificador" => "tbl1" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "copyright" => "Elsevier España" "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:1 [ "tablaImagen" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagenFichero" => "125v20n06-13018738tab01.gif" "imagenAlto" => 34 "imagenAncho" => 150 "imagenTamanyo" => 6588 ] ] ] ] ] ] 1 => array:6 [ "identificador" => "tbl2" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "copyright" => "Elsevier España" "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:1 [ "tablaImagen" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagenFichero" => "125v20n06-13018738tab02.gif" "imagenAlto" => 607 "imagenAncho" => 553 "imagenTamanyo" => 38458 ] ] ] ] ] ] 2 => array:6 [ "identificador" => "tbl3" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "copyright" => "Elsevier España" "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:1 [ "tablaImagen" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagenFichero" => "125v20n06-13018738tab03.gif" "imagenAlto" => 210 "imagenAncho" => 730 "imagenTamanyo" => 19013 ] ] ] ] ] ] 3 => array:5 [ "identificador" => "tbl4" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "copyright" => "Elsevier España" ] 4 => array:5 [ "identificador" => "tbl5" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "copyright" => "Elsevier España" ] 5 => array:5 [ "identificador" => "tbl6" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "copyright" => "Elsevier España" ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:1 [ "bibliografiaReferencia" => array:183 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib1" "etiqueta" => "1" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "referenciaCompleta" => "J Nucl Med 1993; 34:1132-3." 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2023 Noviembre | 10 | 2 | 12 |
2023 Julio | 3 | 2 | 5 |
2023 Marzo | 0 | 1 | 1 |
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2022 Julio | 1 | 2 | 3 |
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2018 Julio | 531 | 51 | 582 |
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2018 Mayo | 817 | 56 | 873 |
2018 Abril | 587 | 32 | 619 |
2018 Marzo | 660 | 35 | 695 |
2018 Febrero | 436 | 18 | 454 |
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2017 Diciembre | 383 | 13 | 396 |
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2017 Agosto | 269 | 36 | 305 |
2017 Julio | 258 | 23 | 281 |
2017 Junio | 403 | 55 | 458 |
2017 Mayo | 682 | 49 | 731 |
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2017 Marzo | 664 | 71 | 735 |
2017 Febrero | 494 | 80 | 574 |
2017 Enero | 305 | 33 | 338 |
2016 Diciembre | 279 | 46 | 325 |
2016 Noviembre | 556 | 74 | 630 |
2016 Octubre | 474 | 110 | 584 |
2016 Septiembre | 442 | 146 | 588 |
2016 Agosto | 287 | 77 | 364 |
2016 Julio | 155 | 43 | 198 |
2016 Junio | 239 | 50 | 289 |
2016 Mayo | 246 | 55 | 301 |
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2016 Marzo | 158 | 27 | 185 |
2016 Febrero | 98 | 28 | 126 |
2016 Enero | 83 | 18 | 101 |
2015 Diciembre | 86 | 14 | 100 |
2015 Noviembre | 120 | 21 | 141 |
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2015 Septiembre | 87 | 20 | 107 |
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2015 Julio | 150 | 17 | 167 |
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2015 Mayo | 87 | 7 | 94 |
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2015 Marzo | 34 | 10 | 44 |
2015 Febrero | 23 | 2 | 25 |
2015 Enero | 57 | 6 | 63 |
2014 Diciembre | 115 | 6 | 121 |
2014 Noviembre | 166 | 4 | 170 |
2014 Octubre | 141 | 3 | 144 |
2014 Septiembre | 108 | 7 | 115 |
2014 Agosto | 70 | 4 | 74 |
2014 Julio | 75 | 2 | 77 |
2014 Junio | 107 | 2 | 109 |
2014 Mayo | 74 | 3 | 77 |
2014 Abril | 39 | 5 | 44 |
2014 Marzo | 57 | 5 | 62 |
2014 Febrero | 34 | 7 | 41 |
2014 Enero | 44 | 2 | 46 |
2013 Diciembre | 54 | 4 | 58 |
2013 Noviembre | 76 | 7 | 83 |
2013 Octubre | 112 | 21 | 133 |
2013 Septiembre | 46 | 4 | 50 |
2013 Agosto | 59 | 11 | 70 |
2013 Julio | 12 | 3 | 15 |
2013 Junio | 1 | 0 | 1 |
2001 Septiembre | 3440 | 0 | 3440 |