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B) Cambios en la absorbancia de la manosa y manosa con ácido gálico 0.56<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mM.</p>" ] ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "autoresLista" => "Óscar A. Muñoz-Bernal, Gaspar A. Torres-Aguirre, José A. Núñez-Gastélum, Laura A. de la Rosa, Joaquín Rodrigo-García, J. Fernando Ayala-Zavala, Emilio Álvarez-Parrilla" "autores" => array:7 [ 0 => array:2 [ "nombre" => "Óscar A." "apellidos" => "Muñoz-Bernal" ] 1 => array:2 [ "nombre" => "Gaspar A." "apellidos" => "Torres-Aguirre" ] 2 => array:2 [ "nombre" => "José A." "apellidos" => "Núñez-Gastélum" ] 3 => array:2 [ "nombre" => "Laura A." "apellidos" => "de la Rosa" ] 4 => array:2 [ "nombre" => "Joaquín" "apellidos" => "Rodrigo-García" ] 5 => array:2 [ "nombre" => "J. 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Los clúster representan las asociaciones de secuencias de aminoácidos de FTs con un porcentaje de similitud superior al 70%. El clado con más FTs es constituido por los FTs <span class="elsevierStyleItalic">TgNuy1</span>, <span class="elsevierStyleItalic">TgNuy2</span>, <span class="elsevierStyleItalic">TgNuy3</span> y <span class="elsevierStyleItalic">TgNuy4</span>, la familia MyB y HSF tienen 3 factores de transcripción, del mismo modo son detalladas las demás familias de genes reguladores en <span class="elsevierStyleItalic">Tectona grandis</span>.</p>" ] ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "autoresLista" => "Vladimir Camel, Esteban Galeano, Helaine Carrer" "autores" => array:3 [ 0 => array:2 [ "nombre" => "Vladimir" "apellidos" => "Camel" ] 1 => array:2 [ "nombre" => "Esteban" "apellidos" => "Galeano" ] 2 => array:2 [ "nombre" => "Helaine" "apellidos" => "Carrer" ] ] ] ] ] "idiomaDefecto" => "es" "EPUB" => "https://multimedia.elsevier.es/PublicationsMultimediaV1/item/epub/S1405888X17300013?idApp=UINPBA00004N" "url" => "/1405888X/0000002000000002/v1_201706150025/S1405888X17300013/v1_201706150025/es/main.assets" ] "es" => array:20 [ "idiomaDefecto" => true "cabecera" => "<span class="elsevierStyleTextfn">ARTÍCULO ORIGINAL</span>" "titulo" => "OBTENCIÓN DE DEHIDRODIISOEUGENOL POR DIMERIZACIÓN DE ISOEUGENOL CON CULTIVOS CELULARES DE <span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span> (TROMPETILLA)" "tieneTextoCompleto" => true "paginas" => array:1 [ 0 => array:2 [ "paginaInicial" => "15" "paginaFinal" => "22" ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:3 [ "autoresLista" => "Liliana Hernández-Vázquez, Ma. 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El isoeugenol es usado en perfumes, jabones, detergentes, aromatizantes, cosméticos, productos alimenticios (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0020">Findik <span class="elsevierStyleItalic">et al.</span>, 2011</a>) y material de partida para la síntesis de vainillina usando microorganismos (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0035">Hua <span class="elsevierStyleItalic">et al.</span>, 2007</a>) así como también para la preparación de salvinal (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0090">Wang <span class="elsevierStyleItalic">et al.</span>, 2006</a>) y otros derivados (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0020">Findik <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2011</a>). El acoplamiento oxidativo del isoeugenol produce compuestos diméricos como el dehidrodiisoeugenol ((±) licarina A), y diisoeugenol (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0005">Figura 1</a>) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060">Nascimento <span class="elsevierStyleItalic">et al.</span>, 2000</a>). El dehidrodiisoeugenol es el compuesto mayoritario y el más activo de los compuestos fenólicos presentes en <span class="elsevierStyleItalic">Myristica fragrans</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045">Juhász <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2000</a>), ya que posee una potente actividad antiinflamatoria y antibacterial (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0055">Murakami <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2005</a>), actividad esquistosomicida y tripanocida (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065">Pereira <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2011</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los cultivos celulares obtenidos de plantas, poseen un gran potencial bioquímico para la obtención de metabolitos secundarios. Así como para la transformación de sustratos exógenos en productos de interés farmacéutico. En la naturaleza se encuentran compuestos estructuralmente complicados, poco abundantes y de obtención costosa, pero gracias a las biotransformaciones en las que los cultivos celulares actúan como biocatalizadores, se ha encontrado una alternativa para que a partir de productos naturales simples, pero abundantes y de obtención barata, se extraigan los compuestos estructuralmente complicados. Las reacciones catalizadas por cultivos celulares incluyen hidroxilaciones, oxidaciones, reducciones, hidrogenaciones e hidrólisis (<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0025">Giri <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2001; Suga & Hirata, 1990; Ishihara <span class="elsevierStyleItalic">et al.</span>, 2003</a>).</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El desarrollo de biocatalizadores, para la oxidación de compuestos orgánicos, en específico para los fenoles, es una importante y versátil área de investigación.</p><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Recientemente, informamos que los cultivos celulares obtenidos a partir de <span class="elsevierStyleItalic">Medicago sativa</span> (alfalfa), <span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span> (trompetilla), <span class="elsevierStyleItalic">Prunus serotina</span> (capulín), <span class="elsevierStyleItalic">Coriandrum sativum</span> (cilantro), <span class="elsevierStyleItalic">Phaseolus vulgaris</span> (frijol), <span class="elsevierStyleItalic">Mammillaria hutzilopochtli</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Psacalium peltratum</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Cucumis melo</span> (melón) y <span class="elsevierStyleItalic">Dacus carota</span> (zanahoria) son capaces de trasformar a los <span class="elsevierStyleItalic">O-</span>metoxifenoles como el eugenol e isoeugenol en compuestos diméricos vía la reacción de acoplamiento oxidativo, catalizada por peroxidasas, como el dehidrodieugenol (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0030">Hernández-Vázquez <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2011</a>). El mecanismo de reacción que se propone (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">Figura 2</a>) para la dimerización está basado en los reportes de <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050">Moussouni <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2011</a> y <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0005">Anita <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2014</a> los cuales indican qué peroxidasas vegetales transforman fenoles sustituidos con un grupo metoxilo en la posición <span class="elsevierStyleItalic">orto</span> al correspondiente <span class="elsevierStyleItalic">O</span>-radical, que al estabilizarse por resonancia produce un <span class="elsevierStyleItalic">C</span>-radical; este último es el que conduce a la dimerización como lo indica lo reportado por <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0010">Bartolomeazzi <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2010</a> produciendo un dímero. Esta biotransformación representa una alternativa más limpia y verde a los métodos químicos tradicionales en los que las reacciones de acoplamiento oxidativo se efectúan usando catalizadores como FeCl<span class="elsevierStyleInf">3</span>, K<span class="elsevierStyleInf">3</span>(FeCN)<span class="elsevierStyleInf">6</span> y Cu(OH)Cl (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0015">Farías-Días,1988</a>). <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0075">Sánchez & Fernández, 1983</a>, informaron que diferentes explantes pueden ser usados para la obtención del callo homogéneo de <span class="elsevierStyleItalic">B. ternifolia</span> y también que las propiedades bioquímicas de los callos pueden ser modificadas cambiando la fuente de nitrógeno.</p><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En este trabajo reportamos el uso de cultivos celulares de <span class="elsevierStyleItalic">B. ternifolia</span> para la síntesis de dehidrodiisoeugenol partiendo del isoeugeol (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">Figura 3</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0015"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0030">MATERIALES Y MÉTODOS</span><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los reactivos se adquirieron en Sigma-Aldrich y se usaron sin purificar. Los espectros de RMN <span class="elsevierStyleSup">1</span>H, se obtuvieron en un equipo Varian 400 en CDCl<span class="elsevierStyleInf">3</span> y se utilizó tetrametilsilano (TMS) como referencia interna. La cromatografía en capa fina (CCF) fue utilizada de manera preliminar para determinar la presencia de los productos de las biotransformaciones. Se utilizaron placas de sílica gel en aluminio, Sílica gel Alugram® SIL G/UV<span class="elsevierStyleInf">254</span>, 0.2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mm, Macherey-Nagel y una mezcla de hexano-acetato de etilo (4:6) como eluyente. Para la cuantificación del dehidrodiisoeugenol obtenido de la biotransformación, se utilizó cromatografía de líquidos de alta resolución (HPLC) y un equipo Waters-1525 HPLC equipado con detector UV Waters 2487. La columna empleada fue una Symmetry ® C-18 a 280<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>nm, con flujo de 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL/min de una mezcla de ácido trifluoroacético (0.1%)-acetonitrilo (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070">Ramachandra & Ravishankar, 1999</a>). Se elaboraron curvas patrón en donde se usó isoeugenol en un rango de concentraciones de 0 a 0.8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/mL y dehidrodiisoeugenol de 0 a 8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/mL, para determinar los rendimientos de reacción y los porcentajes de recuperación del sustrato.</p><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0035">Obtención del callo de <span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span> a partir de hojas e inflorescencias</span><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los callos de <span class="elsevierStyleItalic">B. ternifolia</span> fueron establecidos partiendo de hojas jóvenes e inflorescencias de plantas de trompetilla colectadas en Ciudad Universitaria (UNAM).</p></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0040">Método de desinfección de hojas e inflorescencias</span><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las hojas jóvenes e inflorescencias fueron lavadas con agua y jabón. Éstas se pusieron en una caja Petri con etanol al 70% por 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min y se lavaron tres veces con agua esterilizada. Posteriormente, se colocaron en agitación constante con una disolución al 20% de hipoclorito de sodio comercial (NaClO con 6% de ingrediente activo), 0.1% de tween y 10<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μL de Mycrodyn®, por 20 minutos, se lavaron tres veces con agua esterilizada. Después a las hojas e inflorescencias se les adicionaron 250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL de Promil ® (2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g/250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL) y esta mezcla se agitó por 30<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min, se enjuagaron tres veces más con agua esterilizada. Al cabo de este tiempo se adicionaron 250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL of Agrimicin® 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g/250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL y se agitaron por 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min, posteriormente se enjuagaron cuatro veces con agua esterilizada.</p></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0045">Siembra de explantes e inducción de callo</span><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Las hojas y flores (explantes) se pusieron en una disolución 1:1 de ácido ascórbico y cítrico (100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/L). Las hojas se cortaron en segmentos de 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>cm<span class="elsevierStyleSup">2</span> y las flores se cortaron en cuatro segmentos colocándolas en el medio de cultivo Murashige and Skoog (MS) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0075">Sánchez & Fernández, 1983</a>) suplementado con sacarosa (3%), ácido 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D,1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/L), ácido ascórbico (50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/L)– ácido cítrico (50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/L), quinetina (0.05<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/L), cefotaxime (250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg/L) y gelzan <span class="elsevierStyleSup">TM</span> CM como agente gelante (2.5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g/L), se ajustó el pH 5.7. Las condiciones de incubación fueron 25 ± 2° C, con 16 horas de luz y 8 de obscuridad. El primer subcultivo se realizó después de tres semanas, el callo se conservó en medio MS sólido y se subcultivó cada tres semanas (21 días, <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">Figura 4</a>).</p><elsevierMultimedia ident="fig0020"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0030" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0050">Obtención de cultivos celulares en suspensión</span><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El medio que se usó fue el mismo pero sin gelzan<span class="elsevierStyleSup">TM</span> CM, el cultivo se estableció por inoculación de 10<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g de callo de hojas en un matraz Erlenmeyer con 250<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL del medio MS antes descrito, las condiciones de incubación son las mismas que se describieron anteriormente para la generación de callos, pero bajo agitación constante (150<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>rpm). Las células fueron subcultivadas por intervalos de 14 días. Al cabo de este tiempo este cultivo se filtró al vacío y se tomaron 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g de estas células con las que se realizó la biotransformación.</p><p id="par0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Adicionalmente, se obtuvieron cultivos de células en suspensión de <span class="elsevierStyleItalic">B. ternifolia</span> de hoja en estrés nutritivo, para lo cual se utilizó el medio antes descrito, pero se redujo el porcentaje de nitratos del medio a un 50% y 25%.</p></span><span id="sec0035" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0055">Biotransformación con callo disgregado en una solución amortiguadora de fosfatos</span><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se pesaron 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g de callo de hoja y otro de inflorescencias y se adicionaron a un matraz Erlenmeyer que contenía 100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL de solución amortiguadora de fosfatos 0.1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>M pH 6, la mezcla se agitó a 150<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>rpm en un agitador rotatorio. Posteriormente, a cada matraz se agregaron 25<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg (1.52 X 10<span class="elsevierStyleSup">-4</span> moles) de isoeugenol que previamente se disolvió en 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL de acetona, se adicionó o no agua oxigenada (34.5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μL, 3.04 X 10<span class="elsevierStyleSup">-4</span> moles) según el experimento. En todos los casos la reacción se realizó por triplicado, se usó un control que contuvo sólo los callos disgregados en el amortiguador de fosfatos y otro al que se adicionó todo excepto el sustrato. Las mezclas de reacción se colocaron en agitación a180<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>rpm durante 48 horas, al término de este tiempo, se filtró la suspensión de reacción para separar el sólido y el líquido y al filtrado se le hicieron dos extracciones con acetato de etilo (AcOEt, 50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL x 2), se deshidrataron con sulfato de sodio anhidro (Na<span class="elsevierStyleInf">2</span>SO<span class="elsevierStyleInf">4</span>) y se evaporaron a sequedad. Una muestra de la mezcla de reacción se analizó por HPLC bajo las condiciones que se describieron en el procedimiento general, ver resultados en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">Tabla I</a>. Las mezclas de reacción de las tres repeticiones se juntaron y se purificaron por cromatografía en columna.</p><elsevierMultimedia ident="tbl0005"></elsevierMultimedia><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El mismo procedimiento se realizó (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0010">Tabla II</a>) para el callo obtenido en condiciones de estrés nutritivo.</p><elsevierMultimedia ident="tbl0010"></elsevierMultimedia></span><span id="sec0040" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0060">Biotransformación con el sobrenadante obtenido después de homogeneizar y centrifugar</span><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se pesaron 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g de callo de hojas y 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>g de las células del cultivo en suspensión que se obtuvieron por filtración al vacío según se describió anteriormente. Estos callos o células se adicionaron a un matraz Erlenmeyer que contenía 100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL de solución amortiguadora de fosfatos 0.1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>M pH 6, y se homogeneizaron con ayuda de un homogeneizador Ultra-turrax IKA T10, se centrifugó a 1500<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>rpm por 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min. Se recuperó el sobrenadante y éste se utilizó para la biotransformación de isoeugenol, para lo cual se adicionaron 25<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mg de isoeugenol previamente disuelto en 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL de acetona y H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> (34.5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>μL, 3.04 X 10-4 moles) según sea el caso, la reacción se realizó por triplicado y dos controles: uno de ellos con sólo el sobrenadante y al otro se le adicionó todo excepto el sustrato. Las mezclas de reacción se pusieron en agitación continua a 180<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>rpm durante 48 horas, al término de este tiempo, se filtraron, para separar sólidos y al filtrado se le realizó una extracción con AcOEt (50<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL x 2), se secaron con Na<span class="elsevierStyleInf">2</span>SO<span class="elsevierStyleInf">4</span> y se evaporaron a sequedad, <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0015">Figura 3</a>. Una muestra de la mezcla de reacción se analizó por HPLC bajo las condiciones que se describieron en el procedimiento general, ver resultados en la Tabla I y III.</p><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El mismo método se efectuó para los callos y células en suspensión que crecieron en condiciones de estrés nutritivo (con 50% y 25% de nitratos).</p></span><span id="sec0045" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0065">Purificación del dehidrodiisoeugenol producido en la biotransformación</span><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La mezcla de reacción se purificó por cromatografía en columna usando como soporte sílica gel y como eluyente una mezcla de diclorometano-hexano 1:1, se tomaron fracciones de 25<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>mL, siguiendo la purificación por CCF reuniendo las primeras fracciones que contienen el isoeugenol recuperado y las fracciones posteriores en las que se eluyó al producto de la biotransformación del dehidrodiisoeugenol (40% de rendimiento), se evaporaron a sequedad y el producto fue identificado por RMN<span class="elsevierStyleSup">1</span>H. <span class="elsevierStyleSup">1</span>H RMN (CDCl<span class="elsevierStyleInf">3</span>/TMS): δ 1.37 (d, 3H, J = 6.8<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz), 1.86 (dd, 3H, J = 6.8, 1.6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz, 3.40–3.50 (m, 1H), 3.84 (s, 3H), 3.88 (s, 3H), 5.09 (d, 1H, J = 9.6<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz), 5.80 (s, 1H), 6.11 (dq, 1H, J = 15.6, 110, 6.4<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz), 6.36 (dd, 1H, J = 15.6, 1.2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>Hz), 6.76 (s, 1H), 6.78 (s, 1H), 111, 6.86–6.91 (m, 2H), 6.96 (s, 1H); (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0070">Ramachandra & Ravishankar, 1999</a>) CRMN (CDCl<span class="elsevierStyleInf">3</span>/TMS): δ 17.4, 18.4, 45.5, 55.7, 55.8, 93.5, 108.6, 108.8, 113, 113.8, 119.6, 123.2, 130.5, 131.6. Los datos son consistentes con los reportados en la literatura (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0010">Bartolomeazzi <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2010</a>).</p></span></span><span id="sec0050" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0070">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</span><span id="sec0055" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0075">Obtención de cultivos de <span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span> de hojas e inflorescencias</span><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los callos que se obtuvieron a partir de las hojas e inflorescencias presentaron una coloración crema y aspecto espumoso, no son susceptibles a la oxidación, son disgregables y aumentan rápidamente su masa en un periodo corto de crecimiento.</p><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los cultivos en suspensión de <span class="elsevierStyleItalic">B. ternifolia</span>, son de color crema y no presentan oxidación. Se realizó la cinética de crecimiento del cultivo de células en suspensión en peso seco y fresco por 14 días, debido a que se observó un crecimiento acelerado con la formación de agregados que dificultaban la toma de la muestra. En el periodo evaluado se observa que el crecimiento se presenta con una tendencia ascendente y con dos fases: la fase “lag” y la fase de crecimiento exponencial o lineal sin observarse la fase estacionaria. Los resultados obtenidos permiten concluir que los cultivos duplican su peso a los ocho días y lo cuatriplican a los 14 días. Esta etapa de crecimiento fue la seleccionada para efectuar las biotransformaciones.</p></span><span id="sec0060" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0080">Biotransformación de isoeugenol con callo disgregado en solución amortiguadora de fosfatos de inflorescencia y hoja</span><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">De manera preliminar y para determinar si existe diferencia entre el uso de la hoja y la inflorescencia en la biotransformación de isoeugenol se realizaron las reacciones sin adición de peróxido de hidrógeno utilizando callos disgregados en solución amortiguadora de fosfatos de los dos explantes antes mencionados, las mezclas de reacción de las biotransformaciones fueron aplicadas en una cromatoplaca poniendo isoeugenol y dehidrodiisoeugenol como referencia, observando que en las placas de cromatografía no hubo consumo total de la materia prima, pero sí presencia de productos más polares que el isoeugenol, uno de ellos mayoritario con el mismo R<span class="elsevierStyleInf">f</span> el dehidrodiisoeugenol. Los resultados obtenidos indican que no existen diferencias observables entre el uso de los callos de las hojas o el de los callos de las inflorescencias, por lo que se decidió continuar con los cultivos celulares provenientes de las hojas para las demás biotransformaciones, <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0020">Figura 4</a>.</p></span><span id="sec0065" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0085">Biotransformación de isoeugenol con callo disgregado en solución amortiguadora de fosfatos y del sobrenadante</span><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">Tabla I</a> se describen los resultados obtenidos de la biotransformación de isoeugenol con callos de hojas disgregados en solución amortiguadora de fosfatos y con el sobrenadante, con y sin adición de peróxido de hidrógeno. Se evaluó la influencia del H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span>, en la reacción, ya que los reportes indican que la adición de éste puede favorecer la formación de los productos de dimerización, por ser el sustrato de las enzimas peroxidasas. Sin embargo, también es sabido que un exceso del mismo puede disminuir los rendimientos (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">Figura 2</a>).</p><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los datos presentados en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">Tabla I</a>, indican que se obtienen rendimientos moderados similares para las biotransformaciones con el callo disgregado y los sobrenadantes (45 y 44%, respectivamente). Pero, para aquellos casos en los que se les adicionó peróxido de hidrógeno a la reacción, la biotransformación con el callo disgregado mostró una caída significativa en el rendimiento (13%); mientras que con el sobrenadante no hubo tal efecto (44%). La influencia del peróxido de hidrógeno en esta serie de reacciones no es clara. Rendimientos similares se obtienen cuando se usa la lacasa cruda y purificada de <span class="elsevierStyleItalic">Rhus vercifera</span> (41%) (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0080">Shiba <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2000</a>), pero menores a los resultados obtenidos por <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060">Nascimento <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2000</a> con peroxidasa pura de rábano (90%). Cabe mencionar que la comparación se basa sólo en los rendimientos correpondientes, en el entendido que se trata de enzimas y condiciones de reacción diferentes, debido al interés preparativo de estos compuestos.</p><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Por lo anterior, se puede proponer el mecanismo mostrado en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#fig0010">Figura 2</a>, de acuerdo a lo propuesto por <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0005">Anita <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2014</a> para guaiacol y por <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050">Moussouni <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2011</a>, para el isoeugenol, en lo que respecta a sistemas <span class="elsevierStyleItalic">o</span>-metoxifenoles éste sería el radical formado por la peroxidasa y posteriormente el radical se dimeriza de acuerdo al mecanismo propuesto por <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0010">Bartolomeazzi <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2010</a> en la reacción de formación de dehidrodiisoeugenol y dehidrodieugenol con DPPH de isoeugenol y eugenol, respectivamente.</p><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Con respecto a la recuperación del isoeugenol, éste disminuye cuando se usan callos disgregados y también cuando se utiliza el sobrenadante en presencia de peróxido de hidrógeno. Esto puede ser debido a que el isoeugenol puede sufrir otras reacciones de acoplamiento oxidativo y formar trímeros, tetrámeros e inclusive polímeros.</p><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Cabe resaltar que los cultivos celulares parecen formar pequeñas cantidades de isoeugenol en las condiciones evaluadas entre 0 y 1% y de dehidrodiisoeugenol entre 0-3%, sin embargo, estos resultados pueden también ser debidos al error asociado al método de análisis.</p><p id="par0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0010">Tabla II</a> presenta los resultados obtenidos con callo disgregado en solución amortiguadora de fosfato con H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> obtenidos en un medio donde se disminuyó la cantidad de nitratos a 50 y 25% (estrés nutritivo), puede observarse que los rendimientos en la obtención de dehidrodiisoeugenol aumentan cuando se disminuye la cantidad de nitrato es decir bajo condiciones de estrés, sin embargo, el incremento no es significativo. Como los resultados son iguales cuando se tiene un 50% y un 25% de nitratos en el medio, se decidió seguir el estudio empleando sólo los callos con 25% de nitratos.</p><p id="par0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Por último, presentamos una serie de experimentos que se realizaron con células en suspensión de <span class="elsevierStyleItalic">B</span>. <span class="elsevierStyleItalic">ternifolia</span>. Se eligió el uso de células en suspensión, en lugar de callo, con base en resultados previos, donde el uso de células en suspensión incrementa el rendimiento en la obtención de dehidrodieugenol a partir de eugenol con cultivos celulares de <span class="elsevierStyleItalic">B. ternifolia</span> (<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0030">Hernández-Vázquez <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>., 2011</a>).</p><p id="par0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los resultados de estos experimentos se presentan en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0015">Tabla III</a>, como puede observarse el rendimiento se incrementa de manera importante a 73 y 77% cuando se usa el sobrenadante obtenido con 100% y 25% de nitratos respectivamente. Esto es indicativo de que las células en suspensión son mejores fuentes del biocatalizador que los callos, además que el estrés nutritivo genera un incremento en el rendimiento del dehidrodiisoeugenol. Nuevamente cuando se usa el sobrenadante, adicionando H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span>, el rendimiento disminuye a 0 y 46% para las células en suspensión obtenidas con 100% y 25% de nitratos respectivamente.</p><elsevierMultimedia ident="tbl0015"></elsevierMultimedia><p id="par0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los datos descritos indican que el sobrenadante obtenido a partir de células en suspensión, es un biocatalizador eficiente para la transformación de isoeugenol, aunque los rendimientos son menores a los informados por Nascimento <span class="elsevierStyleItalic">et al</span>, 2000 con peroxidasa de rábano pura (90%).</p><p id="par0145" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Cabe resaltar, que en estas series de reacciones se utilizaron crudos enzimáticos, y las condiciones de reacción no fueron optimizadas para lograr el rendimiento máximo. Se determinó que la adición de H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> tuvo un efecto negativo en el rendimiento en la obtención de dehidrodiisoeugenol en todos los casos, posiblemente por la formación de otros productos como trímeros, tetrámeros o polímeros.</p></span></span><span id="sec0070" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0090">CONCLUSIONES</span><p id="par0150" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Podemos concluir que los cultivos celulares de <span class="elsevierStyleItalic">B ternifolia</span> pueden ser empleados como catalizadores en la obtención de dehidrodiisoeugenol y las mejores condiciones de reacción, son las que utilizan el sobrenadante obtenido a partir de células en suspensión bajo condiciones de estrés nutritivo y sin adición de peróxido de hidrógeno (77%). El rápido crecimiento de las células de <span class="elsevierStyleItalic">B</span>. <span class="elsevierStyleItalic">ternifolia</span>, su fácil disgregación y poca oxidación las hacen candidatos ideales para su uso como biocatalizador en la transformación de fenoles naturales.</p></span></span>" "textoCompletoSecciones" => array:1 [ "secciones" => array:10 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "xres853120" "titulo" => "RESUMEN" "secciones" => array:1 [ 0 => array:1 [ "identificador" => "abst0005" ] ] ] 1 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec847628" "titulo" => "Palabras clave" ] 2 => array:3 [ "identificador" => "xres853119" "titulo" => "ABSTRACT" "secciones" => array:1 [ 0 => array:1 [ "identificador" => "abst0010" ] ] ] 3 => array:2 [ "identificador" => "xpalclavsec847629" "titulo" => "Keywords" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0005" "titulo" => "INTRODUCCIÓN" ] 5 => array:3 [ "identificador" => "sec0010" "titulo" => "MATERIALES Y MÉTODOS" "secciones" => array:7 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0015" "titulo" => "Obtención del callo de Bouvardia ternifolia a partir de hojas e inflorescencias" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0020" "titulo" => "Método de desinfección de hojas e inflorescencias" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0025" "titulo" => "Siembra de explantes e inducción de callo" ] 3 => array:2 [ "identificador" => "sec0030" "titulo" => "Obtención de cultivos celulares en suspensión" ] 4 => array:2 [ "identificador" => "sec0035" "titulo" => "Biotransformación con callo disgregado en una solución amortiguadora de fosfatos" ] 5 => array:2 [ "identificador" => "sec0040" "titulo" => "Biotransformación con el sobrenadante obtenido después de homogeneizar y centrifugar" ] 6 => array:2 [ "identificador" => "sec0045" "titulo" => "Purificación del dehidrodiisoeugenol producido en la biotransformación" ] ] ] 6 => array:3 [ "identificador" => "sec0050" "titulo" => "RESULTADOS Y DISCUSIÓN" "secciones" => array:3 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "sec0055" "titulo" => "Obtención de cultivos de Bouvardia ternifolia de hojas e inflorescencias" ] 1 => array:2 [ "identificador" => "sec0060" "titulo" => "Biotransformación de isoeugenol con callo disgregado en solución amortiguadora de fosfatos de inflorescencia y hoja" ] 2 => array:2 [ "identificador" => "sec0065" "titulo" => "Biotransformación de isoeugenol con callo disgregado en solución amortiguadora de fosfatos y del sobrenadante" ] ] ] 7 => array:2 [ "identificador" => "sec0070" "titulo" => "CONCLUSIONES" ] 8 => array:2 [ "identificador" => "xack286121" "titulo" => "AGRADECIMIENTOS" ] 9 => array:1 [ "titulo" => "REFERENCIAS" ] ] ] "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true "fechaRecibido" => "2016-03-16" "fechaAceptado" => "2017-04-27" "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec847628" "palabras" => array:5 [ 0 => "acoplamiento oxidativo" 1 => "<span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span>" 2 => "cultivo celular" 3 => "dehidrodiisoeugenol" 4 => "isoeugenol" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec847629" "palabras" => array:5 [ 0 => "oxidative coupling" 1 => "<span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span>" 2 => "cell culture" 3 => "dehidrodiisoeugenol" 4 => "isoeugenol" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:2 [ "titulo" => "RESUMEN" "resumen" => "<span id="abst0005" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><p id="spar0005" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Los cultivos celulares de <span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span> fueron usados como catalizadores en la reacción de acoplamiento oxidativo de isoeugenol. El compuesto dimérico dehidrodiisoeugenol se obtuvo con 77% de rendimiento cuando se usó el sobrenadante obtenido de un cultivo de células en suspensión, que poseía actividad de peroxidasa. La conversión procede en condiciones suaves de reacción y al adicionar el peróxido de hidrógeno disminuye el rendimiento en la obtención del dehidrodiisoeugenol.</p></span>" ] "en" => array:2 [ "titulo" => "ABSTRACT" "resumen" => "<span id="abst0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><p id="spar0010" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Cell cultures of <span class="elsevierStyleItalic">Bouvardia ternifolia</span> were used as catalyst for the oxidative coupling of isoeugenol, to produce dehydrodiisoeugenol, a dimer, 77% isolated yield, when using the supernatat from the cell cultures suspension having peroxidase activity. The biotransformation proceeded under very mild conditions. 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entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Callo, H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">3.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Callo, isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">45 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">24 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Callo, isoeugenol y H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">13.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">4.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">**Sobrenadante \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">**Sobrenadante, H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">**Sobrenadante, isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">44.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">21.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">**Sobrenadante, isoeugenol, H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">44.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">2.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1440359.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0035" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Resultados de las reacciones de obtención de dehidrodiisoeugenol a partir de isoeugenol con callo disgregado en solución amortiguadora de fosfatos y sobrenadante.</p>" ] ] 5 => array:8 [ "identificador" => "tbl0010" "etiqueta" => "Tabla II" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "detalles" => array:1 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "at2" "detalle" => "Tabla I" "rol" => "short" ] ] "tabla" => array:2 [ "leyenda" => "<p id="spar0055" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">* Callo de hojas disgregado en solución amortiguadora de fosfatos y H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> con 100, 50 y 25% de nitratos.</p>" "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><th class="td-with-role" title="table-head ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top" scope="col">Muestra \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="center" valign="top" scope="col">Descripción \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="center" valign="top" scope="col">Rendimiento<br>(%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="center" valign="top" scope="col">Recuperación de isoeugenol<br>(%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Callo N 100% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Callo N 100%, isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">13.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">**Callo N 50% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">**Callo N 50%, isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">14.5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">3 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">***Callo N 25% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">***Callo N 25% isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">14.5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1440360.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0050" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Resultados de las reacciones de obtención de dehidrodiisoeugenol a partir de isoeugenol con callo disgregado generado en condiciones de estrés nutritivo.</p>" ] ] 6 => array:8 [ "identificador" => "tbl0015" "etiqueta" => "Tabla III" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "detalles" => array:1 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "at3" "detalle" => "Tabla II" "rol" => "short" ] ] "tabla" => array:2 [ "leyenda" => "<p id="spar0065" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">*Sobrenadante obtenido de células en suspensión de hojas homogeneizadas y centrifugadas.</p>" "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><th class="td-with-role" title="table-head ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top" scope="col">Muestra \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="center" valign="top" scope="col">Descripción \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="center" valign="top" scope="col">Rendimiento<br>(%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th><th class="td" title="table-head " align="center" valign="top" scope="col">Recuperación<br>de isoeugenol<br>(%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</th></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N 100% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">4 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N 100% y H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N 100%, H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> e isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N100% e isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">73 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">9.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N 25% \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">8.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">1.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Control \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N 25%, H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">3.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">0.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N 25%, isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">77 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">11 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td-with-role" title="table-entry ; entry_with_role_rowhead " align="left" valign="top">Biotrans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="left" valign="top">*Sobrenadante N25%, H<span class="elsevierStyleInf">2</span>O<span class="elsevierStyleInf">2</span>, isoeugenol \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">46 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="table-entry " align="char" valign="top">3.0 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab1440361.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "<p id="spar0060" class="elsevierStyleSimplePara elsevierViewall">Resultados de las reacciones de obtención de dehidrodiisoeugenol a partir de isoeugenol con el sobrenadante de las células en suspensión generadas bajo condiciones de estrés nutritivo.</p>" ] ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "REFERENCIAS" "seccion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "bibs0005" "bibliografiaReferencia" => array:19 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib0005" "etiqueta" => "Anita et al., 2014" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "contribucion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "titulo" => "Synthesis and elucidation structure of O-<span class="elsevierStyleItalic">para</span> dehydroguaiacol prepared by crude of <span class="elsevierStyleItalic">Brassica oleracea</span> var. <span class="elsevierStyleItalic">alboglabra</span> peroxidase-catalyzed oxidation" "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "etal" => false "autores" => array:3 [ 0 => "Y. 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2020 Diciembre | 24 | 16 | 40 |
2020 Noviembre | 55 | 17 | 72 |
2020 Octubre | 18 | 7 | 25 |
2020 Septiembre | 21 | 8 | 29 |
2020 Agosto | 28 | 11 | 39 |
2020 Julio | 13 | 12 | 25 |
2020 Junio | 21 | 13 | 34 |
2020 Mayo | 34 | 9 | 43 |
2020 Abril | 31 | 8 | 39 |
2020 Marzo | 24 | 9 | 33 |
2020 Febrero | 23 | 5 | 28 |
2020 Enero | 22 | 6 | 28 |
2019 Diciembre | 34 | 12 | 46 |
2019 Noviembre | 20 | 10 | 30 |
2019 Octubre | 30 | 8 | 38 |
2019 Septiembre | 34 | 7 | 41 |
2019 Agosto | 20 | 5 | 25 |
2019 Julio | 29 | 7 | 36 |
2019 Junio | 71 | 34 | 105 |
2019 Mayo | 100 | 62 | 162 |
2019 Abril | 87 | 47 | 134 |
2019 Marzo | 20 | 41 | 61 |
2019 Febrero | 37 | 57 | 94 |
2019 Enero | 33 | 57 | 90 |
2018 Diciembre | 20 | 54 | 74 |
2018 Noviembre | 45 | 57 | 102 |
2018 Octubre | 71 | 27 | 98 |
2018 Septiembre | 75 | 16 | 91 |
2018 Agosto | 90 | 34 | 124 |
2018 Julio | 17 | 21 | 38 |
2018 Junio | 26 | 16 | 42 |
2018 Mayo | 35 | 14 | 49 |
2018 Abril | 39 | 8 | 47 |
2018 Marzo | 16 | 6 | 22 |
2018 Febrero | 92 | 7 | 99 |
2018 Enero | 51 | 6 | 57 |
2017 Diciembre | 74 | 6 | 80 |
2017 Noviembre | 57 | 9 | 66 |
2017 Octubre | 15 | 12 | 27 |
2017 Septiembre | 36 | 13 | 49 |
2017 Agosto | 18 | 2 | 20 |
2017 Julio | 15 | 5 | 20 |
2017 Junio | 10 | 8 | 18 |