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Inicio Revista Portuguesa de Saúde Pública Efeito genotóxico do etanol em neuroblastos de Drosophila melanogaster
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Vol. 28. Issue 2.
Pages 199-204 (July - December 2010)
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Vol. 28. Issue 2.
Pages 199-204 (July - December 2010)
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Efeito genotóxico do etanol em neuroblastos de Drosophila melanogaster
Genotoxic effect of ethanol in Drosophila melanogaster neuroblasts
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Ilda Patrícia Ribeiroa,
Corresponding author
ildaribeiro.patricia@gmail.com

Autora para correspondência.
, Isabel Gaivãoa,b
a Departamento de Genética e Biotecnologia (DGB), Universidade de Trás-os-Montes e Alto Douro, Vila Real, Portugal
b Centro de Ciência Animal e Veterinária (CECAV), Universidade de Trás-os-Montes e Alto Douro, Vila Real, Portugal
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Resumo
Introdução

O cérebro é um importante alvo do etanol, sendo o consumo excessivo de álcool associado a danos cerebrais. Tem sido demonstrado que os produtos do metabolismo do etanol promovem alterações no DNA. Desta forma, e apesar de se verificar em Portugal uma tendência para a diminuição do consumo de álcool, pensamos ser pertinente a realização deste estudo. Objectivo: Avaliar a toxicidade e o potencial efeito genotóxico do etanol em Drosophila melanogaster in vivo utilizando o ensaio do cometa.

Métodos

Realizou-se um estudo de toxicidade para o etanol com as concentrações de 0%; 0,625%; 1,25%; 2,5% e 5% (v/v), administradas de forma crónica, seguindo-se a contagem dos descendentes adultos para a avaliação da sobrevivência relativa das drosófilas nas diferentes concentrações de etanol. Seguidamente, utilizaram-se neuroblastos de drosófila para a avaliação do efeito genotóxico pelo ensaio do cometa (ensaio de electroforese de células isoladas). Os danos de DNA são reportados através dos seguintes parâmetros: comprimento da cauda, percentagem de DNA na cauda e momento de cauda.

Resultados

O etanol não apresentou toxicidade para a D. melanogaster, verificando-se, pelo contrário, um aumento no número de descendentes em todas as concentrações de etanol testadas, mostrando-se, portanto a presença de etanol benéfica em termos de número de descendentes. A sobrevivência superior ocorreu na concentração de 1,25%, uma vez que é nesta concentração que se encontraram mais descendentes. No entanto, em termos de genotoxicidade constatou-se nos parâmetros avaliados no ensaio do cometa que, de uma forma genérica, quanto maior a concentração de etanol mais danos são infligidos ao DNA. O etanol evidenciou um efeito genotóxico nas três concentrações mais elevadas em estudo (1,25%; 2,5% e 5%). Os danos foram superiores para a concentração de 5% de etanol. Por outro lado, a concentração de etanol de 0,625% não se mostrou genotóxica.

Conclusões

A D. melanogaster exposta a diferentes concentrações de etanol manifestou um aumento significativo de danos no DNA, ao nível dos neuroblastos, verificando-se um aumento dose-dependente, nos parâmetros do ensaio do cometa avaliados. Foi, portanto possível demonstrar que o etanol provoca rupturas no DNA, avaliadas pela presença de cometas.

Palavras-chave:
Etanol
Genotóxico
D. melanogaster
Ensaio do Cometa
Keywords:
Ethanol
Genotoxic
D. melanogaster
Comet assay
Abstract
Introduction

The brain is an important target to ethanol, being the excessive consumption of alcohol related to brain damage. It has been shown that the metabolic products of ethanol induce DNA alterations. Thus, although in Portugal the consumption of alcohol is decreasing, we believe that the present study is pertinent.

Purpose

To assess the toxicity and the genotoxicity of ethanol in Drosophila melanogaster in vivo using the comet assay.

Methods

The toxicity study of ethanol at 0%; 0.625%; 1.25%; 2.5% and 5% (v/v) was conducted; then, we counted the adult descendents to assess the rate of survival of drosophilas in the different concentrations of ethanol. Afterwards, the neuroblasts of drosophila were used to evaluate the genotoxicity of ethanol using the comet assay (single-cell gel electrophoresis). The DNA damage was quantified by determining the following parameters: the percentage of DNA in the tail, tail length, and tail moment.

Results

Ethanol did not present toxicity to D. melanogaster, as the number of descendents were higher in all the concentrations tested comparatively to 0%, hence, the presence of ethanol was beneficial. The higher survival rate was observed in the concentration of 1.25%, as in this concentration the number of descendents was higher. The parameters assessed by the comet assay showed that in general higher DNA damage is induced by higher concentrations of ethanol. Ethanol showed genotoxicity in the higher concentrations used in the present study (1.25%, 2.5%, 5%). The damages in DNA were superior in the ethanol concentration of 5%. Conversely, the ethanol concentration of 0.625% was not genotoxic.

Conclusions

The D. melanogaster exposed to different concentrations of ethanol revealed a significant increase in the DNA damage, in neuroblasts, being observed a dose-dependent increase in all the parameters assessed in the comet assay. Thus, the present study demonstrated that ethanol induces DNA ruptures, assessed by the presence of comets.

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Bibliografia
[1.]
WHO.
Global status report on alcohol policy.
World Health Organization Press, (2004),
[2.]
C.S. Lieber.
Alcoholic fatty liver: its pathogenesis and mechanism of progression to inflammation and fibrosis.
[3.]
C.S. Lieber.
Metabolism of alcohol.
Clin Liver Dis., 9 (2005), pp. 1-35
[4.]
D. Schuppan, J. Atkinson, M. Ruehl, E.O. Riecken.
Alcohol and liver fibrosis-pathobiochemistry and treatment.
Z Gastroenterolog., 33 (1995), pp. 546-550
[5.]
F. Lamarche, B. Gonthier, N. Signorini, H. Eysseric, L. Barret.
Acute exposure of cultured neurones to ethanol results in reversible DNA single-strand breaks; whereas chronic exposure causes loss of cell viability.
Alcohol Alcohol., 38 (2003), pp. 550-558
[6.]
G.F. Koob.
A role for GABA mechanisms in the motivational effects of alcohol.
Biochem Pharmacol., 68 (2004), pp. 1515-1525
[7.]
D.M. Lovinger, J.C. Crabbe.
Laboratory models of alcoholism: treatment target identification and insight into mechanisms.
Nat Neurosci., 8 (2005), pp. 1471-1480
[8.]
F. Weiss, L.J. Porrino.
Behavioral neurobiology of alcohol addiction: recent advances and challenges.
J Neurosci., 22 (2002), pp. 3332-3337
[9.]
H.G. Lee, Y.-C. Young-Cho Kim, J.S. Dunning, K.-A. Han.
Recurring ethanol exposure induces disinhibited courtship in Drosophila.
[10.]
J. Blasiak, A. Trzeciak, E. Malecka-Panas, J. Drzewoski, M. Wojewódzka.
In vitro genotoxicity of ethanol and acetaldehyde in human lymphocytes and the gastrointestinal tract mucosa cells.
Toxicol in Vitro., 14 (2000), pp. 287-295
[11.]
IAS.
Alcohol consumption and harm in the UK and EU.
Institute of Alcohol Studies, (2009),
[12.]
L.C. Matos.
Doença hepática alcoólica (DHA).
Medicina Interna., 13 (2006), pp. 207-216
[13.]
R. Andretic, B. Van Swinderen, R.J. Greenspan.
Dopaminergic modulation of arousal in Drosophila.
Curr Biol., 15 (2005), pp. 1165-1175
[14.]
C. McClung, J. Hirsh.
Stereotypic behavioral responses to free-base cocaine and the development of behavioral sensitization in Drosophila.
Curr Biol., 8 (1998), pp. 109-112
[15.]
F.W. Wolf, U. Heberlein.
Invertebrate models of drug abuse.
J Neurobiol., 54 (2003), pp. 161-178
[16.]
G.L. Miklos, G.M. Rubin.
The role of the genome project in determining gene function: insights from model organisms.
Cell., 86 (1996), pp. 521-529
[17.]
St. JohnMAR, T. Xu.
Insights from model systems: understanding human cancer in a fly?.
Am J Hum Genet., 61 (1997), pp. 1006-1010
[18.]
R.S. Holmes.
Alcohol dehydrogenases: a family of isozymes with differential functions.
Alcohol Alcohol Suppl., 2 (1994), pp. 127-130
[19.]
N.P. Singh, M.T. McCoy, R.R. Tice, E.L. Schneider.
A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells.
Exp Cell Res., 175 (1988), pp. 184-191
[20.]
A.R. Collins, V. Harrington, J. Drew, R. Melvin.
Nutritional modulation of DNA repair in a human intervention study.
Carcinogenesis., 24 (2003), pp. 511-515
[21.]
H.R. Siddique, D.K. Chowdhuri, D.K. Saxena, A. Dhawan.
Validation of Drosophila melanogaster as an in vivo model for genotoxicity assessment using modified alkaline Comet assay.
Mutagenesis., 20 (2005), pp. 285-290
[22.]
B.W. Geer, P.W. Heinstra, S.W. Mckechnie.
The biological basis of ethanol tolerance in Drosophila.
Comp Biochem Physiol B., 105 (1993), pp. 203-229
[23.]
J.B. Gibson, J.G. Oakeshott.
Genetics of biochemical and behavioural aspects of alcohol metabolism.
Aust N Z J Med., (1981), pp. 11128-11131
[24.]
A.A. Hoffmann, P.A. Parsons.
Olfactory response and resource utilization in Drosophila: interspecific comparision.
Biological Journal of the Linnean Society., 22 (1984), pp. 43-53
[25.]
N.P. Singh, H. Lai, A. Khan.
Ethanol-induced single-strand DNA breaks in rat brain cells.
Mutat Res., 345 (1995), pp. 191-196
[26.]
P. Navasumrit, T.H. Ward, P.J. O’Connor, J. Nair, N. Frank, H. Bartsch.
Ethanol enhances the formation of endogenously and exogenously derived adducts in rat hepatic DNA.
Mutat Res., 479 (2001), pp. 81-94
[27.]
D. Vaudry, C. Rousselle, M. Basille, A. Falluel-Morel, T.F. Pamantung, M. Fontaine, et al.
Pituitary adenylate cyclase-activating polypeptide protects rat cerebellar granule neurons against ethanol-induced apoptotic cell death.
Proc Natl Acad Sci U SA., 99 (2002), pp. 6398-6403
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