¿Qué puede ofrecer actualmente el laboratorio de micobacterias en la formación profesional del microbiólogo clínico?
What can the microbiology laboratory currently offer in the professional training of clinical microbiologists?
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Allí se dice que el residente debe rotar en su segundo año de residencia durante 4 meses por muestras respiratorias y micobacterias (se entiende 2 meses en cada área en los servicios en que éstas se encuentran individualizadas).</p><p class="elsevierStylePara">Este escaso protagonismo de la micobacteriología clínica en los programas de formación actuales es, por las razones que se comentan a continuación, un error conceptual importante.</p><p class="elsevierStylePara">Hay muchas razones que justifican la necesidad de una formación más prolongada, específica y reglada de los residentes en micobacteriología clínica.</p><p class="elsevierStylePara">Contenidos específicos teóricos<span class="elsevierStyleSup">2-7</span></p><p class="elsevierStylePara">1. A nivel estructural y biológico las micobacterias poseen rasgos diferenciales suficientemente característicos como para considerarlas de forma independiente a otros microorganismos.</p><p class="elsevierStylePara">2. La epidemiología y patogenia de las infecciones micobacterianas es suficientemente importante y singular como para considerarlas de forma muy individualizada en los programas de formación.</p><p class="elsevierStylePara">3. Los principios en los que descansa el tratamiento de las enfermedades micobacterianas y los mecanismos de prevención y control de éstas requieren conocimientos teóricos específicos.</p><p class="elsevierStylePara">Contenidos específicos prácticos<span class="elsevierStyleSup">7-11</span></p><p class="elsevierStylePara">1. El laboratorio de micobacterias utiliza técnicas y procedimientos suficientemente singulares como para que sean aprendidos individualizadamente.</p><p class="elsevierStylePara">2. Esta singularidad alcanza también a las técnicas de estudio de sensibilidad in vitro, que son esencialmente diferentes a las utilizadas para otras bacterias.</p><p class="elsevierStylePara">3. Finalmente, el laboratorio de micobacterias constituye un excelente modelo para estudiar el impacto y realizar un análisis crítico del valor y las limitaciones de las nuevas técnicas diagnósticas (técnicas de amplificación genética, sondas genéticas y otras técnicas alternativas de identificación microbiana, análisis molecular de resistencias, técnicas de epidemiología molecular, etc.).</p><p class="elsevierStylePara">Posiblemente no hay otro lugar en los laboratorios clínicos actuales, excepto tal vez las secciones de virología clínica, donde pueda seguirse de forma más adecuada ni con mayor rigor la evolución de las nuevas tecnologías.</p><p class="elsevierStylePara">Contenidos culturales</p><p class="elsevierStylePara">En cuanto a contenidos de tipo cultural profesional que trascienden el ámbito de las micobacterias. Esta sección del laboratorio es un lugar idóneo para que los residentes se planteen y reflexionen sobre:</p><p class="elsevierStylePara">1. El control de calidad y su trascendencia.</p><p class="elsevierStylePara">2. Normativas de seguridad biológica.</p><p class="elsevierStylePara">3. Relaciones con los servicios clínicos y con las autoridades sanitarias en temas relativos a Salud Pública.</p><p class="elsevierStylePara">Probablemente no hay ninguna otra área en los laboratorios clínicos actuales donde las competencias técnicas y profesionales de los microbiólogos estén tan bien definidas y delimitadas.</p><p class="elsevierStylePara">Evolución de las técnicas diagnósticas en micobacteriología clínica a lo largo del pasado siglo y orígenes del presente</p><p class="elsevierStylePara">La evolución de las técnicas diagnósticas ha seguido, por razones diversas, diferentes etapas bien diferenciadas en las que los progresos han sido heterogéneos.</p><p class="elsevierStylePara">Una primera etapa, muy prolongada, se extendió hasta la mitad de la década de 1970 y se caracterizó porque no se produjeron progresos tecnológicos realmente relevantes en las técnicas de diagnóstico<span class="elsevierStyleSup">12</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Durante todo este dilatado período de tiempo los laboratorios utilizaron una tecnología convencional con evidentes limitaciones de cara a las necesidades de la práctica clínica (baja sensibilidad de las técnicas de examen microscópico directo y excesiva lentitud de las técnicas de cultivo, identificación y antibiograma).</p><p class="elsevierStylePara">Estas técnicas tradicionales son, con algunas modificaciones relevantes en los procedimientos de cultivo e identificación, plenamente vigentes en la actualidad.</p><p class="elsevierStylePara">Los procedimientos de digestión-descontaminación de las muestras que contienen flora comensal utilizados en la actualidad han variado muy poco a lo largo de los años. El hecho de que las micobacterias, por sus constituyentes de pared celular, sean más resistentes que otros microorganismos a los ácidos y bases fuertes, permite utilizar estas sustancias para eliminar bacterias y otros microorganismos comensales presentes en las muestras clínicas y evitar que interfieran en el crecimiento de las micobacterias<span class="elsevierStyleSup">13,14</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La soltura en el manejo y evaluación de estas técnicas es importante en la formación del residente, que debe conocer que la utilización inapropiada de éstas puede afectar la viabilidad de las micobacterias y producir falsos cultivos negativos (por exceso de descontaminación) o a un número elevado de contaminaciones (por defecto de descontaminación)<span class="elsevierStyleSup">12</span>. Un porcentaje aceptable de contaminaciones en los medios sólidos se estima en el 3-5%, dependiendo del tipo de muestras clínicas. Un índice de contaminación inferior al 3% es preocupante por exceso y cuando éste es superior al 5% sugiere un proceso de descontaminación demasiado suave o de digestión incompleta.</p><p class="elsevierStylePara">Otra etapa bien diferenciada abarcó la segunda mitad de la década de 1970 y se caracterizó por la introducción de una tecnología de cultivo aún no superada: los sistemas radiométricos de detección del crecimiento (Bactec 460 TB®, Becton Dickinson Lab. Systems)<span class="elsevierStyleSup">11,12</span>. Con esta nueva tecnología se consiguió<span class="elsevierStyleSup">15</span>:</p><p class="elsevierStylePara">1. Un ahorro considerable de tiempo (de aproximadamente 15-20 días) en la detección del crecimiento de las micobacterias.</p><p class="elsevierStylePara">2. La posibilidad de realizar antibiogramas de Mycobacterium tuberculosis a los fármacos de primera elección en 5-10 días aproximadamente.</p><p class="elsevierStylePara">La limitación más importante de este nuevo sistema era la necesidad de trabajar con isótopos radiactivos (C<span class="elsevierStyleSup">14</span>); esto suponía una limitación importante para muchos laboratorios pequeños que no podían disponer de las licencias necesarias para almacenar y trabajar con estos compuestos.</p><p class="elsevierStylePara">La tercera etapa se desarrolló a lo largo de la década de 1980 y se caracterizó por dos hechos importantes que condicionaron mucho la evolución de las técnicas diagnósticas: la aparición epidémica del SIDA y el acelerado desarrollo de nuevas tecnologías<span class="elsevierStyleSup">11</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La evolución de las técnicas diagnósticas en esta época se caracterizó:</p><p class="elsevierStylePara">1. Por el desarrollo de técnicas rápidas de cultivo no radiométricas<span class="elsevierStyleSup">8</span>.</p><p class="elsevierStylePara">2. La estandarización de técnicas eficaces de hemocultivo para micobacterias<span class="elsevierStyleSup">16</span>.</p><p class="elsevierStylePara">3. El desarrollo de técnicas rápidas de identificación alternativas (técnicas cromatográficas y sondas genéticas)<span class="elsevierStyleSup">17-20</span>.</p><p class="elsevierStylePara">En la tabla 1 figuran los principales medios de cultivo líquidos o bifásicos no radiométricos comercializados de lectura automática o visual y sus principales características<span class="elsevierStyleSup">7</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="28v21nSupl.2-13059084tab01.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">Aunque ninguno de estos sistemas supera en rapidez y sensibilidad al BACTEC 460 TB®, la utilización combinada de un medio sólido y de uno de estos medios líquidos se considera actualmente lo más idóneo, buscando una sensibilidad óptima y rapidez en la detección del crecimiento.</p><p class="elsevierStylePara">Los estudios de sensibilidad in vitro que utilizan estos nuevos medios líquidos no radiométricos no han sido aún aprobados por la Food and Drug Administration (FDA) con este fin, aunque cada vez se publican más artículos en los que son evaluados en comparación con las técnicas de referencia.</p><p class="elsevierStylePara">Las técnicas de identificación alternativas se introdujeron para incrementar la rapidez y solucionar los problemas de imprecisión de las técnicas de identificación convencional. Algunas de estas técnicas continúan teniendo plena vigencia en la actualidad<span class="elsevierStyleSup">8,9</span>:</p><p class="elsevierStylePara">1. Las sondas genéticas para identificar micobacterias aisladas en medios sólidos o líquidos. Actualmente están disponibles sondas genéticas frías para la identificación de M. tuberculosis, M. kansasii, M. avium, M. intracellulare y M. gordonae (Accu Probe®, Gen Probe)<span class="elsevierStyleSup">17</span>.</p><p class="elsevierStylePara">2. Las técnicas de identificación cromatográfica (cromatografía de capa fina, gas-líquido y HPLC) permiten poner en evidencia los perfiles lipídicos específicos de la pared micobacteriana e identificar de forma y rápida y reproducible las micobacterias<span class="elsevierStyleSup">18-20</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Llegamos así a una cuarta etapa, la actual, caracterizada por el desarrollo y aplicación de las nuevas técnicas de amplificación genética a los siguientes ámbitos<span class="elsevierStyleSup">8-10</span>:</p><p class="elsevierStylePara">1. Diagnóstico rápido de la tuberculosis<span class="elsevierStyleSup">10</span>.</p><p class="elsevierStylePara">2. Desarrollo de nuevas técnicas de identificación<span class="elsevierStyleSup">21,22</span>.</p><p class="elsevierStylePara">3. Detección de las mutaciones responsables de los genotipos de resistencia<span class="elsevierStyleSup">37</span>.</p><p class="elsevierStylePara">4. Estudios de epidemiología molecular<span class="elsevierStyleSup">24,25</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Durante la última década se han desarrollado una serie de técnicas de biología molecular que permiten la amplificación de secuencias de ADN y ARN específicas de M. tuberculosis. Las técnicas de amplificación genética permiten generar a partir de una única copia de ADN o ARN, y mediante un proceso enzimático, millones de copias de ácido nucleico diana, facilitando de esta forma la detección directa de M. tuberculosis en las muestras clínicas.</p><p class="elsevierStylePara">Esta tecnología ha logrado solventar, al menos en parte, los principales problemas inherentes a las técnicas microbiológicas convencionales, permitiendo establecer diagnósticos rápidos (entre 2 y 8 h) y mejorar la sensibilidad de las técnicas clásicas<span class="elsevierStyleSup">8-10</span>.</p><p class="elsevierStylePara">El interés de diferentes compañías multinacionales en el desarrollo de estas técnicas de amplificación ha conducido a la aparición de reactivos y equipos más o menos sofisticados que estandarizan, simplifican y en algunos casos automatizan las reacciones de amplificación. Esto ha sido determinante para que esta tecnología haya podido ser aplicada, con las debidas garantías, en el diagnóstico de la tuberculosis.</p><p class="elsevierStylePara">En la actualidad se dispone en el mercado de una gran variedad de sistemas de amplificación, que proveen los reactivos necesarios y que permiten trabajar en condiciones estandarizadas, ofreciendo amplias posibilidades en el diagnóstico actual de la tuberculosis (tabla 2)<span class="elsevierStyleSup">11</span>.</p><p class="elsevierStylePara"><img src="28v21nSupl.2-13059084tab02.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">Los retos planteados de cara al futuro en este campo son los siguientes<span class="elsevierStyleSup">11</span>:</p><p class="elsevierStylePara">1. Incrementar la sensibilidad de las técnicas de amplificación en muestras Ziehl-Neelsen negativas.</p><p class="elsevierStylePara">2. Idear procedimientos para neutralizar las sustancias inhibidoras de las reacciones de amplificación, especialmente en muestras extrarrespiratorias.</p><p class="elsevierStylePara">3. Automatizar tanto el proceso de preparación de la muestra como las de amplificación y detección del producto amplificado, con el fin de facilitar el trabajo y minimizar el riesgo de contaminación por amplicones durante el procesamiento manual de las muestras. Actualmente sólo el sistema Cobas Amplicor nos ofrece un equipo que permite trabajar de forma totalmente automatizada.</p><p class="elsevierStylePara">Las técnicas de identificación basadas en amplificación genética también han abierto nuevos caminos en los últimos años.</p><p class="elsevierStylePara">Polimorfismo de los fragmentos de restricción (PRA)<span class="elsevierStyleSup">21</span></p><p class="elsevierStylePara">Es una de las más utilizadas. Se basa en la amplificación de un fragmento de ADN común a todas las especies de micobacterias (que codifica la proteína 65 K), seguida de una digestión posterior con 2 enzimas de restricción (Hae III y Bst E II) y visualización posterior de los fragmentos obtenidos en un gel de agarosa tras tinción con bromuro de etidio. Los patrones de restricción obtenidos son específicos de las distintas especies de micobacterias.</p><p class="elsevierStylePara">Entre las principales ventajas de esta técnica están las siguientes: necesidad de poco inóculo, rapidez y capacidad de identificar la mayoría de especies descritas. Entre sus inconvenientes cabe destacar la necesidad de disponer de los materiales necesarios para la amplificación y electroforesis de geles de agarosa, así como el adiestramiento en la lectura e interpretación de resultados.</p><p class="elsevierStylePara"> Secuenciación de ácidos nucleicos<span class="elsevierStyleSup">22</span></p><p class="elsevierStylePara">Se basa en la amplificación y posterior secuenciación de un fragmento del gen RNAr 16s, de secuencia conocida en las distintas especies de micobacterias.</p><p class="elsevierStylePara">Este gen está bastante conservado, pero tiene zonas variables con secuencias de nucleótidos específicas de género y especie, que son las que se amplifican. Con esta metodología se han podido identificar y describir recientemente nuevas especies del género Mycobacterium.</p><p class="elsevierStylePara">Las técnicas genéticas actuales también permiten dar a conocer las mutaciones cromosómicas que causan la resistencia de las micobacterias a los quimioterápicos y abren una nueva vía para conocer las resistencias a los fármacos antituberculosos<span class="elsevierStyleSup">15</span>.</p><p class="elsevierStylePara">La genética molecular es también la herramienta actual más útil como marcador epidemiológico. La mayoría de aplicaciones epidemiológicas del análisis con enzimas de restricción (RFLP) han utilizado la secuencia de inserción IS 6110, que está presente en 1 a 20 copias en el genoma de M. tuberculosis. Algunas cepas con escaso número de copias de IS 6110 deben ser tipificadas con otro sistema de estudio como el spoligotyping (spacer oligonucleotoide typing); este método detecta la presencia o ausencia de secuencias de unión variables dentro de la región DR (direct repeat region)<span class="elsevierStyleSup">24,25</span>.</p><p class="elsevierStylePara">Algunas aplicaciones en las que puede ser de utilidad el estudio de la huella genética con IS 6110 son las siguientes:</p><p class="elsevierStylePara">1. Estudio epidemiológico de la tuberculosis comunitaria.</p><p class="elsevierStylePara">2. Detección de transmisión no sospechada de M. tuberculosis.</p><p class="elsevierStylePara">3. Investigación de transmisión de tuberculosis nosocomial.</p><p class="elsevierStylePara">4. Estudios de patogénesis (diferenciación entre reinfección y reactivación).</p><p class="elsevierStylePara">5. Identificación de contaminaciones cruzadas en el laboratorio.</p><p class="elsevierStylePara">El laboratorio actual de micobacterias. Análisis coste-beneficio. Criterios de selección de las técnicas<span class="elsevierStyleSup">8-10,26</span></p><p class="elsevierStylePara">Los laboratorios de microbiología pueden ofrecer hoy día prestaciones muy diversas para el diagnóstico y el control de las infecciones micobacterianas (tabla 3).</p><p class="elsevierStylePara"><img src="28v21nSupl.2-13059084tab03.gif"></img></p><p class="elsevierStylePara">El laboratorio actual de micobacterias es inconcebible sin una sólida colaboración de su personal con los clínicos y los epidemiólogos.</p><p class="elsevierStylePara">Algunas de las sofisticadas técnicas actuales (amplificación genética, estudios de susceptibilidad in vitro, técnicas de epidemiología molecular, etc.) son de coste realmente elevado y no está justificado su uso indiscriminado.</p><p class="elsevierStylePara">Se han de fijar de forma conjunta las indicaciones y las técnicas que es necesario utilizar en casos concretos o especiales. El establecimiento de reuniones frecuentes entre el personal implicado en la toma de decisiones es, por tanto, fundamental para la discusión de los casos clínicos y para crear la cultura necesaria que facilite la utilización más adecuada de los recursos técnicos disponibles en beneficio del enfermo y la comunidad.</p><p class="elsevierStylePara">Sólo en este escenario de colaboración donde la tecnología está abierta y es receptiva a la resolución de problemas clínicos pueden formarse nuestros especialistas en el futuro.</p><p class="elsevierStylePara">El microbiólogo clínico ha de ser un profesional que combine un conocimiento profundo de la microbiología con la capacidad de comprender los problemas clínicos.</p><p class="elsevierStylePara">Ha de estar habituado a plantear los aspectos sintomáticos y sindrómicos de las enfermedades infecciosas. Ha de pasar del laboratorio a la práctica clínica y a la inversa, según lo considere necesario, sin sentir que pasa a través de una barrera que delimita su actividad profesional.</p><p class="elsevierStylePara">Para conseguir este tipo de profesional, el laboratorio actual de micobacterias puede ser una buena escuela.</p>" "pdfFichero" => "28v21nSupl.2a13059084pdf001.pdf" "tienePdf" => true "PalabrasClave" => array:2 [ "es" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Palabras clave" "identificador" => "xpalclavsec205809" "palabras" => array:3 [ 0 => "Microbiología" 1 => "Micobacterias" 2 => "Formación" ] ] ] "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec205810" "palabras" => array:3 [ 0 => "Microbiology" 1 => "Mycobacteria" 2 => "Education" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:2 [ "es" => array:1 [ "resumen" => "En el presente artículo se constata la escasa formación en micobacteriología clínica dentro del vigente programa de la especialidad y las razones que justifican la necesidad de una formación más prolongada, específica y reglada de los residentes en este campo. 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Only in this collaborative scenario where the technology is open and receptive to resolution of xlinical problems we will be able to educate our spaecialists in the future. 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Información del artículo
ISSN: 0213005XIdioma original: Español
Datos actualizados diariamente
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| 2024 Octubre | 19 | 2 | 21 |
| 2024 Septiembre | 29 | 10 | 39 |
| 2024 Agosto | 31 | 5 | 36 |
| 2024 Julio | 34 | 2 | 36 |
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| 2023 Septiembre | 40 | 6 | 46 |
| 2023 Agosto | 49 | 4 | 53 |
| 2023 Julio | 33 | 8 | 41 |
| 2023 Junio | 40 | 6 | 46 |
| 2023 Mayo | 46 | 4 | 50 |
| 2023 Abril | 44 | 8 | 52 |
| 2023 Marzo | 69 | 6 | 75 |
| 2023 Febrero | 61 | 12 | 73 |
| 2023 Enero | 58 | 5 | 63 |
| 2022 Diciembre | 36 | 14 | 50 |
| 2022 Noviembre | 52 | 11 | 63 |
| 2022 Octubre | 28 | 7 | 35 |
| 2022 Septiembre | 43 | 8 | 51 |
| 2022 Agosto | 34 | 14 | 48 |
| 2022 Julio | 22 | 7 | 29 |
| 2022 Junio | 10 | 5 | 15 |
| 2022 Mayo | 15 | 6 | 21 |
| 2022 Abril | 25 | 16 | 41 |
| 2022 Marzo | 28 | 12 | 40 |
| 2022 Febrero | 24 | 7 | 31 |
| 2022 Enero | 28 | 10 | 38 |
| 2021 Diciembre | 15 | 12 | 27 |
| 2021 Noviembre | 20 | 6 | 26 |
| 2021 Octubre | 33 | 17 | 50 |
| 2021 Septiembre | 27 | 9 | 36 |
| 2021 Agosto | 27 | 9 | 36 |
| 2021 Julio | 17 | 6 | 23 |
| 2021 Junio | 11 | 8 | 19 |
| 2021 Mayo | 20 | 5 | 25 |
| 2021 Abril | 83 | 18 | 101 |
| 2021 Marzo | 36 | 5 | 41 |
| 2021 Febrero | 24 | 9 | 33 |
| 2021 Enero | 31 | 18 | 49 |
| 2020 Diciembre | 25 | 10 | 35 |
| 2020 Noviembre | 27 | 5 | 32 |
| 2020 Octubre | 21 | 3 | 24 |
| 2020 Septiembre | 21 | 11 | 32 |
| 2020 Agosto | 19 | 3 | 22 |
| 2020 Julio | 15 | 6 | 21 |
| 2020 Junio | 21 | 6 | 27 |
| 2020 Mayo | 20 | 7 | 27 |
| 2020 Abril | 32 | 8 | 40 |
| 2020 Marzo | 32 | 8 | 40 |
| 2020 Febrero | 29 | 4 | 33 |
| 2020 Enero | 20 | 8 | 28 |
| 2019 Diciembre | 21 | 12 | 33 |
| 2019 Noviembre | 21 | 11 | 32 |
| 2019 Octubre | 21 | 2 | 23 |
| 2019 Septiembre | 20 | 4 | 24 |
| 2019 Agosto | 10 | 2 | 12 |
| 2019 Julio | 15 | 11 | 26 |
| 2019 Junio | 53 | 21 | 74 |
| 2019 Mayo | 104 | 69 | 173 |
| 2019 Abril | 56 | 28 | 84 |
| 2019 Marzo | 14 | 9 | 23 |
| 2019 Febrero | 14 | 5 | 19 |
| 2019 Enero | 13 | 7 | 20 |
| 2018 Diciembre | 15 | 6 | 21 |
| 2018 Noviembre | 15 | 4 | 19 |
| 2018 Octubre | 19 | 2 | 21 |
| 2018 Septiembre | 24 | 3 | 27 |
| 2018 Agosto | 7 | 0 | 7 |
| 2018 Julio | 11 | 5 | 16 |
| 2018 Junio | 4 | 1 | 5 |
| 2018 Mayo | 6 | 11 | 17 |
| 2018 Abril | 12 | 1 | 13 |
| 2018 Marzo | 3 | 1 | 4 |
| 2018 Febrero | 2 | 0 | 2 |
| 2018 Enero | 9 | 1 | 10 |
| 2017 Diciembre | 3 | 0 | 3 |
| 2017 Noviembre | 6 | 0 | 6 |
| 2017 Octubre | 9 | 0 | 9 |
| 2017 Septiembre | 8 | 7 | 15 |
| 2017 Agosto | 9 | 0 | 9 |
| 2017 Julio | 4 | 0 | 4 |
| 2017 Junio | 9 | 11 | 20 |
| 2017 Mayo | 12 | 17 | 29 |
| 2017 Abril | 20 | 13 | 33 |
| 2017 Marzo | 19 | 22 | 41 |
| 2017 Febrero | 14 | 9 | 23 |
| 2017 Enero | 11 | 3 | 14 |
| 2016 Diciembre | 15 | 4 | 19 |
| 2016 Noviembre | 31 | 6 | 37 |
| 2016 Octubre | 41 | 13 | 54 |
| 2016 Septiembre | 28 | 5 | 33 |
| 2016 Agosto | 28 | 3 | 31 |
| 2016 Julio | 13 | 5 | 18 |
| 2016 Junio | 23 | 11 | 34 |
| 2016 Mayo | 16 | 6 | 22 |
| 2016 Abril | 15 | 19 | 34 |
| 2016 Marzo | 20 | 11 | 31 |
| 2016 Febrero | 22 | 12 | 34 |
| 2016 Enero | 24 | 16 | 40 |
| 2015 Diciembre | 8 | 11 | 19 |
| 2015 Noviembre | 11 | 14 | 25 |
| 2015 Octubre | 32 | 11 | 43 |
| 2015 Septiembre | 15 | 6 | 21 |
| 2015 Agosto | 37 | 1 | 38 |
| 2015 Julio | 39 | 5 | 44 |
| 2015 Junio | 8 | 1 | 9 |
| 2015 Mayo | 17 | 5 | 22 |
| 2015 Abril | 21 | 7 | 28 |
| 2015 Marzo | 19 | 3 | 22 |
| 2015 Febrero | 12 | 4 | 16 |
| 2015 Enero | 39 | 4 | 43 |
| 2014 Diciembre | 39 | 5 | 44 |
| 2014 Noviembre | 38 | 1 | 39 |
| 2014 Octubre | 32 | 3 | 35 |
| 2014 Septiembre | 33 | 2 | 35 |
| 2014 Agosto | 26 | 2 | 28 |
| 2014 Julio | 54 | 1 | 55 |
| 2014 Junio | 33 | 2 | 35 |
| 2014 Mayo | 24 | 2 | 26 |
| 2014 Abril | 20 | 2 | 22 |
| 2014 Marzo | 23 | 3 | 26 |
| 2014 Febrero | 27 | 3 | 30 |
| 2014 Enero | 16 | 2 | 18 |
| 2013 Diciembre | 20 | 2 | 22 |
| 2013 Noviembre | 26 | 2 | 28 |
| 2013 Octubre | 34 | 6 | 40 |
| 2013 Septiembre | 19 | 2 | 21 |
| 2013 Agosto | 25 | 4 | 29 |
| 2013 Julio | 23 | 1 | 24 |
| 2003 Mayo | 1478 | 0 | 1478 |
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