Evaluación del citómetro UF-1000i como método de cribado en el diagnóstico de infecciones del tracto urinario | Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica

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Considerando la elevada prevalencia de resultados negativos<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0005">1-5</a>, la implementación de un método de cribado fiable y rápido podría suponer un ahorro en costes, sobre todo en carga de trabajo, además de adelantar los resultados negativos.UF-1000i es un citómetro de flujo con enfoque hidrodinámico que a través de 2canales, uno para bacterias y otro para el resto de células, y previa tinción fluorescente, cuenta las partículas de la muestra integrando 3señales de medición: tamaño, estructura y fluorescencia. Emite un resultado fácil de interpretar, su manejo es sencillo, aporta resultados en pocos minutos y permite una carga de muestras continua para su procesamiento.El objetivo del estudio ha sido conocer el comportamiento del sistema automatizado de cribado de orina Syxmex UF-1000i (bioMérieux, España) para discriminar, en nuestro laboratorio, las muestras que deben ser procesadas por cultivo convencional, permitiendo emitir el resultado de las muestras negativas el mismo día de su recepción.Material y métodosNuestro Laboratorio de Microbiología sirve al Complejo Asistencial de Salamanca, que cuenta con 800camas aproximadamente, incluyendo servicios de críticos, y atiende a un área de salud de 338.000personas. Procesa en torno a 23.000muestras de orina al año. Durante el periodo que duró el presente estudio (desde el 1 de noviembre de 2010 hasta el 30 de septiembre de 2011) se recibieron un total de 21.467peticiones de urinocultivo, con una media de 97peticiones diarias.De ellas se procesaron 3.374 (15,7%) muestras de orina utilizando el sistema automatizado UF-1000i y el cultivo convencional. Para ello se analizaron en paralelo las 15primeras muestras de orina que llegaban cada día al laboratorio para procesamiento de rutina. A su llegada, la muestra se dividía en 2alícuotas: una se utilizaba para el análisis con el sistema automatizado y la otra para el cultivo convencional inmediato.Se excluyeron del estudio todas las muestras recibidas de menores de 5años, de los ingresados en servicios de cuidados intensivos y de los pacientes inmunodeprimidos y/o trasplantados, ya que, según nuestro protocolo, estas muestras requieren una valoración individualizada.El cultivo convencional se realizó mediante la siembra con asa calibrada de 10μl en medio de agar sangre para recuento y MacConkey para identificación presuntiva (ambas de Becton Dickinson), interpretando los resultados a las 24h de incubación aeróbica a 37°C.Se consideraron positivos los recuentos superiores a 104UFC/ml en los cultivos pertenecientes a mujeres de 15 a 45años y a hombres (grupo1) y los recuentos superiores a 105UFC/ml en cultivos de mujeres que se encontraban fuera del rango anterior (grupo2). En ambos grupos, según el crecimiento, se informaron como cultivo positivo (recuento igual o mayor a los establecidos en ambos grupos), cultivo negativo (recuento inferior a los establecidos en ambos grupos) y orinas contaminadas (más de 2microorganismos distintos en cultivo).Estos puntos de corte son los que se consideraron como resultados patrón a la hora de compararlos con el cribado del UF-1000i.La orinas contaminadas se contabilizaron para el cultivo como positivas cuando su recuento estaba por encima del punto de corte establecido, a la hora de relacionar estos resultados con los obtenidos por el UF-1000i.Los microorganismos fueron identificados por el sistema automático Vitek 2 (bioMérieux, España).Con la otra alícuota de la muestra se realizó el cribado con el autoanalizador Sysmex UF-1000i, siguiendo las directrices del fabricante.UF-1000i analiza las partículas de la muestra mediante citometría de flujo; cada muestra se diluye y se tiñe en 2cámaras distintas, una para bacterias y otra para el resto de las partículas, con polimetina fluorescente que se fija al ADN; posteriormente, en otra celda se irradian las partículas con una luz láser semiconductora. A continuación se detecta la dispersión de la luz emitida en distintas direcciones del espacio y se mide la intensidad de la fluorescencia, y con ello se calcula el tamaño y la estructura de cada partícula para identificarlas y contarlas; esta información se presenta como diagramas de dispersión («scattergramas»).Los datos del estudio comparativo se han analizado con el paquete estadístico SPSS19.0. Para las variables cuantitativas se han calculado medias y desviación estándar, y para las variables cualitativas se han comparado porcentajes. Para valorar el mejor punto de corte del test UF1000i se han representado las curvas ROC, para cada uno de los 2grupos de pacientes de forma independiente. Además se han evaluado la sensibilidad, la especificidad y los valores predictivos positivo y negativo para estos puntos de corte, que permiten conocer la cantidad y el porcentaje de muestras que se evitaría cultivar en cada caso, para una más completa valoración de las posibles aportaciones de este cribado.Por último se realizó un cálculo del tiempo necesario para el procesamiento de las muestras por ambos métodos y la comparación de costes.ResultadosEl número de muestras de orina incluidas en el estudio fue de 3.374. De ellas, el 68,1% (2.304) correspondían a muestras de mujeres y el 31,9% restante (1.070) a hombres. Del total, el 73% provenían de centros de salud y consultas hospitalarias, y el 27%, de pacientes ingresados. Las estadísticas de nuestro laboratorio (datos no publicados) confirman que esta muestra se corresponde con las características de las muestras que, en general, procesamos en el laboratorio.Los resultados del cultivo, separados en ambos grupos, fueron los siguientes:<ul class="elsevierStyleList" id="lis0005"><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0005">•Grupo 1 (mujeres de 15-45años y varones): 1.945muestras de orina; de ellas fueron negativos 1.405 (72,3%) cultivos, positivos 326 (16,7%) y cultivos contaminados 214 (11%), contabilizados como positivos para el cribado por tener un recuento >104UFC/ml, aun cuando la probabilidad de infección en estos casos es muy baja. De los positivos fueron bacterias gramnegativas el 69,71% y bacterias grampositivas el resto. Los microorganismos aislados más frecuentes fueron E.coli (52,8%), Klebsiella spp. (8,2%), Proteus mirabilis (7,3%), Enterococcus faecalis (16,5%) y Streptococcus agalactiae (4,6%).</li><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0010">•Grupo 2 (resto de mujeres): la media de edad de estas mujeres fue de 65años. Forman el grupo 1.429muestras de orina; de ellas fueron negativos 852 (59,6%) cultivos, positivos 424 (29,6%) y cultivos contaminados 153 (10,7%), contabilizados como positivos para el cribado por tener recuento >105UFC/ml. De los positivos, fueron bacterias gramnegativas el 83,14% y bacterias grampositivas el resto. Los microorganismos aislados más frecuentes en este grupo fueron E.coli (65,3%), Klebsiella spp. (10,6%), Proteus mirabilis (6,1%), Enterococcus faecalis (7,5%) y Streptococcus agalactiae (6,1%).</li></ul>Cuando se construyen las curvas de reconocimiento óptico de caracteres (ROC) (<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#fig0005">figs. 1 y 2</a>) y se elige el punto de corte, buscando la mejor sensibilidad para la mayor especificidad posible, para los 2grupos de distinto patrón oro en el cultivo, encontramos un punto de corte del UF-1000i de 53,1 para el grupo1, con un área bajo la curva de la carga bacteriana de 0,85, y para el grupo2 de 128,35, con un área bajo la curva de 0,90.<elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia>Para el grupo1 este valor de 53,1 en el cribado se corresponde con una sensibilidad del 92,2% y una especificidad del 60%, además de un valor predictivo positivo del 47,8% y un valor predictivo negativo del 95,3%. En este grupo se sembraría sin necesidad un 28% de las muestras (548 muestras falsas positivas) y habría 42muestras (2,1%) que no se habrían sembrado siendo positivas (falsas negativas). Estos datos se recogen en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">tabla 1</a>. En la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0010">tabla 2</a> se recogen los microrganismos aislados de las muestras negativas para el citómetro (falsas negativas); en el resto de casos que no figuran en la tabla creció flora mixta.<elsevierMultimedia ident="tbl0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="tbl0010"></elsevierMultimedia>En este grupo1, de usar el método de cribado en la rutina se hubiesen dejado de sembrar 895 orinas, que suponen el 46% del total del grupo.Para el grupo2 este valor de 128,3 en el cribado se corresponde con una sensibilidad del 86,4% y una especificidad del 87,7%, presenta además un valor predictivo positivo del 82,9% y un valor predictivo negativo del 91%. En este grupo se sembrarían sin necesidad un 7,2% de las muestras (104muestras falsas positivas) y habría 74muestras (5,1%) que no se habrían sembrado siendo positivas (falsas negativas). Estos datos se recogen en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0015">tabla 3</a>. En la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0020">tabla 4</a> se recogen los microorganismos aislados de las muestras negativas para el citómetro (falsas negativas); en el resto de casos que no figuran en la tabla creció flora mixta.<elsevierMultimedia ident="tbl0015"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="tbl0020"></elsevierMultimedia>En el grupo2, de usar el método de cribado en la rutina se hubiesen dejado de sembrar 822 orinas, que suponen el 57,5% del total del grupo.Respecto a la valoración del tiempo utilizado por ambos métodos, UF-1000i emite en un minuto el resultado de una muestra, lo cual significa que nuestra media de 100muestras diarias podría estar cribada en 100min, más la validación de los controles del análisis; la limitación es que el laboratorio recibe las muestras en «pulsos de muestras», pequeños de los servicios hospitalarios y más cuantiosos de los centros de salud, repartidos hasta el final de la mañana, lo cual hace difícil la optimización de esta ventaja; a este tiempo habría que añadir el que se precisa posteriormente para sembrar las muestras positivas del cribado. En el otro lado, la siembra directa en los 2medios referidos se realiza en el laboratorio por personal entrenado, aproximadamente en 1min por muestra.Los costes directos, dejando aparte el tiempo del personal técnico, en el caso del cribado por cada muestra se calcularon en 1,78 euros, solo consumibles, puesto que el citómetro lo cedió la empresa distribuidora; a esto hay que añadir el coste de la siembra de las muestras positivas. En la siembra directa se utiliza una placa de agar sangre, de 0,225euros aproximadamente, y otra de agar MacConkey, de 0,217euros aproximadamente.DiscusiónCuando se empezó a trabajar con el autoanalizador UF-1000i y se revisaron las más recientes evaluaciones publicadas, se decidió que lo más razonable sería definir los puntos de corte más adecuados para nuestras muestras. Teníamos en cuenta que la Oficina Europea de Directrices recomienda para una prueba rápida de cribado de orina, distinta del cultivo, una sensibilidad analítica del 90-95% para detectar bacteriuria asintomática en las muestras con más de 105UFC/ml, con una confirmación por cultivo de las muestras positivas<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0030">6</a>.Se decidió también no considerar el recuento simultáneo de leucocitos, pues aunque podría ser un buen predictor de infección, no existe acuerdo sobre cuál es el valor a partir del cual una piuria puede considerarse significativa<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0035">7,8</a>. Además existe mucha discordancia en su utilidad, de manera que en algunos trabajos mejora la rentabilidad del cribado<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045">9-11</a>, y para otros las áreas bajo la curva ROC son menores que las correspondientes a las bacterias, no mejoran la sensibilidad ni la especificidad y concluyen que no hay que considerarlas para el cribado<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0060">12,13</a>. Además nuestros recipientes colectores de orina no contienen ácido bórico, que estabiliza los leucocitos y frena el crecimiento de las bacterias.La población atendida en nuestro hospital es muy heterogénea, desde neonatos ingresados en cuidados intensivos y hematológicos trasplantados hasta una buena cantidad de muestras de mujeres añosas atendidas en atención primaria; además, en la mayoría de las peticiones faltan datos clínicos, información sobre tratamiento antimicrobiano en curso o completado y si se trata de pacientes sondados. Esto nos obliga a hacer de las muestras una valoración también heterogénea, de manera que las orinas de neonatos, niños críticos, trasplantados e inmunodeprimidos en general, así como de adultos críticos, se valoran de forma individualizada, y para el resto, de forma general, aplicamos 2puntos de corte: ≥104UFC/ml en los casos de muestras de varones y mujeres en edad fértil, y otro para el resto, que son fundamentalmente mujeres añosas del medio extrahospitalario, consideradas positivas con recuentos ≥105UFC/ml.Cuando comparamos la muestra con las de otros autores para contrastar los resultados, se observa una heterogeneidad que es la razón que justifica que cada laboratorio deba establecer sus puntos de corte para el cribado, aunque sí hay aspectos compartidos que poner de manifiesto. Los trabajos recientes evalúan muestras en general de adultos mayoritariamente comunitarias y en cuya etiología predominan los bacilos gramnegativos, sobre todo E.coli. En el caso de Broeren et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060">12</a> las muestras son en un 56% hospitalarias y comunican que E.coli es el microorganismo más aislado y representa el 37%, cuando en el resto de las series<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045">9-11,13</a>, incluidos los 2grupos de la muestra que se analizan, representa más del 50%. El porcentaje de cultivos positivos, que determinará la sensibilidad de la prueba de cribado, es más homogéneo, alrededor del 30%<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045">9-13</a>, teniendo en cuenta que todos estos autores incluyen en los positivos los cultivos contaminados cuyo recuento supera el punto de corte de positividad. Broeren et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060">12</a>, que analizan sus datos con distintos puntos de corte, encuentran mayor porcentaje de muestras positivas cuando establecen el cultivo positivo >104 (50%) que cuando lo establecen en >105 (38%), lo que modifica también la sensibilidad. En nuestros grupos, para el punto de corte ≥104 encontramos un 27% de muestras positivas, y en el de positividad establecida ≥105 hay un 40%; la razón es que no se trata de la misma muestra sino de 2muestras distintas de 2grupos epidemiológicamente muy diferentes.En cuanto a los puntos de corte que los diferentes autores eligen para el cribado con UF-1000i, encontramos que aumenta cuanto más alto es el límite a partir del cual se considera positivo el cultivo, lo que se constata en los grupos de la muestra que se presenta (53,1 para cultivo positivo >104UFC/ml y 128,3 para cultivo positivo >105UFC/ml). Así en el trabajo referido anteriormente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060">12</a> eligen 39bacterias/μl para un punto de corte de cultivo negativo <104 y de 230bacterias/μl, para la misma muestra, para un punto de corte de cultivo negativo <105; otros autores<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045">9</a> establecen en 125bacterias/μl el punto de corte del cribado, habiendo establecido como cultivo positivo los crecimientos mayores de 105UFC/ml. Menos concordantes son los datos de De Rosa et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050">10</a>, que establecen el corte en 170bacterias/μl, con un punto de corte en el cultivo positivo ≥104, que quizá tenga explicación en el hecho de que su porcentaje de cultivos positivos es menor que el resto (25,6%, frente a cerca del 40% de media en el resto) y que las muestras positivas según su punto de corte lo sean mayoritariamente con recuentos muy altos. En otro trabajo revisado<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065">13</a> se eligen 20bacterias/μl, quizá un número llamativamente bajo, con un 30% de muestras positivas, un punto de corte de >104 para uropatógenos y de >105 para los no uropatógenos; es posible que en las características de su muestra, que desconocemos, pudiera estar la explicación de esta diferencia.Respecto a la sensibilidad y a la especificidad del cribado con el UF-1000i, el estudio de Broeren et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060">12</a> ya puso de manifiesto cómo mejoraba la sensibilidad y disminuía la especificidad a medida que se acepta un número creciente de bacterias en cultivo como referencia. Sin embargo, es el tipo de paciente el que determina el punto de corte, y a partir de ahí el cribado debe tener un comportamiento aceptable, de sensibilidad y especificidad. La mayoría de los autores a los que hemos hecho referencia<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045">9-13</a> comunican una sensibilidad entre el 85 y el 98%, con una moda del 97%; en el grupo1 se alcanza el 92% con el punto de cribado elegido, pero el grupo2 se queda en el 86%, teniendo este mayor porcentaje de cultivos positivos (40% entre verdaderos positivos y contaminados); puede ocurrir que buena parte de estos cultivos positivos estén «justos» de recuento, y comprobaremos este extremo en estudios posteriores. Las cifras de especificidad comunicadas se encuentran en torno al 80%, cifra que se alcanza en el grupo2, pero que es del 60% en el grupo1 de hombres y mujeres en edad fértil.El dato correspondiente al valor predictivo negativo (VPN), que, junto con la sensibilidad, es el más importante para valorar una prueba de cribado, fue del 95,3% para el grupo1 y del 91% para el grupo2; los autores a los que estamos haciendo referencia<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0050">10,11</a> comunican el 99 y el 98%, respectivamente.Los falsos positivos tienen una importancia relativa desde el punto de vista microbiológico, son muestras que han de cultivarse sin necesidad y podrían corresponder a muestras de orina que contengan bacterias no viables por la administración de antibióticos o microrganismos no cultivables; las cifras del grupo2 (7,2%) están en consonancia con las series publicadas, que comunican entre el 3%<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045">9</a> y hasta el 17%<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050">10</a>, y el grupo1 presenta el 28% de falsos positivos; posiblemente los varones y las mujeres en edad fértil con clínica compatible son, epidemiológicamente, los mejores candidatos a infecciones recurrentes, parcialmente tratadas, y a la presencia de bacterias no cultivables; sin embargo, corresponde a 548 muestras, un número elevado por su repercusión en la carga de trabajo.No se valoró si los falsos negativos tuvieron significación clínica, y creemos además que el hecho de que no la tengan no les resta trascendencia en la valoración de una prueba de cribado. Cuantitativamente los artículos referidos hasta aquí encuentran en torno al 1%<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045">9-11,13</a>, y en el grupo1 hay el 2,1% de falsos negativos, que alcanzan el 5,1% en el grupo2. Cuando se trata de saber qué microorganismos se aíslan de estas muestras, y excluyendo las levaduras para las que el autoanalizador realiza un recuento aparte que no hemos considerado, Wang el al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0055">11</a> encuentran en sus 2muestras que cumplen este criterio un enterococo y un estafilococo, De Rosa et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050">10</a> un enterococo, un Proteus mirabilis y un E.coli, y Manoni et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045">9</a> publican que de los falsos negativos que encuentran, la mitad son cocos grampositivos y el resto levaduras y bacilos gramnegativos de crecimiento lento. Cuando se observan los aislamientos en estos casos, en las <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#tbl0010">tablas 2 y 4</a>, los mayores porcentajes corresponden a microorganismos grampositivos y a Proteus spp.; estas diferencias precisan de una evaluación posterior para determinar su posible significación. Es interesante una de las aportaciones del trabajo de Kadkhoda et al.<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065">13</a>, que encuentran que cuando se aumentan los puntos de corte, la sensibilidad de detección del UF-1000i para bacterias grampositivas se afecta mucho más que la sensibilidad para detectar bacterias gramnegativas.Otro aspecto importante es la reducción de cultivos de orina que supone la introducción del sistema de cribado, el 46% en el grupo1 y el 57,5% en el grupo2; los trabajos a los que se viene haciendo mención refieren cifras también en torno al 50%.Coincidimos con varios autores<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045">9,12,13</a> en que las muestras de algunos pacientes seleccionados (niños pequeños, embarazadas, inmunodeprimidos y posiblemente también urológicos) han de valorarse individualmente, y el fabricante de UF-1000i reconoce que el límite inferior de detección del citómetro es de 103-104bacterias/ml, límite de sensibilidad demasiado alto para algunos de estos casos.La introducción en la rutina del procesamiento de las orinas con el autoanalizador UF-1000i tiene ventajas, dadas entre otras por el hecho de que todo el proceso es automático, con lo que desaparecen los errores humanos que pueden darse en el cultivo con asa calibrada. Además, este sistema es capaz de cribar una muestra por minuto, con lo que en los laboratorios con gran volumen de muestras y cuya organización permita testarlas en bloque supone un ahorro considerable de tiempo, sobre todo el de la valoración de los cultivos negativos, ya que en costes directos no supone ahorro con respecto al cultivo convencional.El comportamiento y la rentabilidad de la incorporación de este citómetro al cribado de las orinas dependerá en cada laboratorio de los parámetros analizados y de los puntos de corte que se elijan.En nuestra opinión, valorando exclusivamente la bacteriuria, los datos obtenidos de reducción de la carga de trabajo y sobre todo el porcentaje de resultados falsos negativos no justifica, en nuestro contexto, el uso del autoanalizador UF-1000i como método de cribado de bacteriuria.Conflicto de interesesLos autores declaran no tener ningún conflicto de intereses." 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Considerando la elevada prevalencia de resultados negativos, la implementación de un método de cribado fiable y rápido podría suponer un ahorro en costes de carga de trabajo y adelantar los resultados negativos. MétodoEvaluamos la utilidad del citómetro de flujo UF-1000i® (bioMérieux, España) para cribado de muestras negativas que se pueden excluir del cultivo. Dividimos las muestras en 2grupos: grupo1, hombres y mujeres en edad fértil, que se consideran positivas con un crecimiento ≥104UFC/ml, y grupo2, consideradas positivas con crecimiento ≥105UFC/ml. ResultadosEnfrentando los datos del cultivo y del cribado en curva ROC, los puntos de mejor sensibilidad y especificidad fueron de 53,1bacterias/μl para el grupo1, y de 128,35bacterias/μl para el grupo2. En el grupo1 la sensibilidad fue del 92,2%, la especificidad del 60%, la reducción de cultivos de orina del 46%, con el 2,1% de falsos negativos (42muestras). En el grupo2, la sensibilidad fue del 86%, la especificidad del 87,7%, la reducción de cultivos del 57,5%, con el 5,1% de falsos negativos (74muestras). ConclusiónLa incorporación del citómetro UF-1000i al cribado de las muestras de orina depende mucho de las características de los pacientes y de la definición de cultivo de orina positivo. En nuestro caso, con el estudio exclusivo de la bacteriuria, los datos de reducción de carga de trabajo y de falsos negativos cuestionan seriamente esta incorporación." ] "en" => array:2 [ "titulo" => "Abstract" "resumen" => "IntroductionThe urine culture is a huge workload in the Microbiology Laboratory and remains the gold standard for the diagnosis of urinary tract infections. Considering the high prevalence of negative results, the implementation of a reliable screening method could lead to cost saving in the workload, and speed up reporting of negative results. MethodsWe evaluated the usefulness of the flow cytometer UF-1000i in the screening for negative samples than could be excluded from culture. We divided the samples into two groups, Group1, males and women of childbearing age who were considered positive with a growth ≥104CFU/ml, and Group2, considered positive with ≥105CFU/ml growth. ResultsOn comparing the culture and screening data in the ROC curve, the best sensitivity and specificity points were 53.1bact/μl for Group1, and 128.3bact/μl for Group2. In Group1, the sensitivity was 92.2% and a specificity of 60%, a reduction in urine cultures of 46%, with 2.1% false negative (42samples). In Group2, the sensitivity was 86%, with a specificity of 87.7%, a culture reduction of 57.5%, and 5.1% false negatives (74samples). ConclusionThe incorporating of the UF-1000i cytometer to the screening of urine samples depends on the characteristics of the patients and the definition of positive urine culture. In our case, with only studying bacteriuria, the data on the reduction of workload and the false negatives seriously question this incorporation." ] ] "multimedia" => array:6 [ 0 => array:7 [ "identificador" => "fig0005" "etiqueta" => "Figura 1" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr1.jpeg" "Alto" => 1803 "Ancho" => 1645 "Tamanyo" => 111061 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "Curva ROC para detección de bacterias por el UF-1000i en el grupo1, en el que la definición patrón de cultivo negativo es un crecimiento <104UFC/ml." ] ] 1 => array:7 [ "identificador" => "fig0010" "etiqueta" => "Figura 2" "tipo" => "MULTIMEDIAFIGURA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "figura" => array:1 [ 0 => array:4 [ "imagen" => "gr2.jpeg" "Alto" => 1780 "Ancho" => 1513 "Tamanyo" => 97358 ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "Curva ROC para detección de bacterias por el UF 1000i en el grupo2, en el 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\t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Total \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Positivos UF-1000 >53,1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">VP 502 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">FP 548 (28%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1.050 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Negativos UF-1000 <53,1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">FN 42 (2,1%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">VN 853 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">895 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Total \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">544 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1.401 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " 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style="border-bottom: 2px solid black">n \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Porcentaje sobre el total de aislados \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">E. coli \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">14 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">8% (14/169) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Proteus mirabilis \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">6 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">25% (6/24) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">E. faecalis \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">5 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">9,2% (5/54) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Klebsiella spp. \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">7,4% (2/27) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">S. agalactiae \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">15% (2/15) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">C. albicans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">100% (2/2) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">C. parapsilopsis \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">100% (1/1) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">S saprophyticus \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">20% (1/5) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab463606.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "Microorganismos aislados en cultivo, en recuento significativo, en las muestras negativas para el citómetro, en el grupo1" ] ] 4 => array:7 [ "identificador" => "tbl0015" "etiqueta" => "Tabla 3" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black"> \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Enfermos cultivo positivo \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Sanos cultivo negativo \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Total \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Positivos UF-1000 >128,35 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">VP 503 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">FP 104 (7,2%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">607 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Negativos UF-1000 <128,35 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">FN 74 (5,1%) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">VN 748 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">822 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Total \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">577 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">852 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1.429 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab463608.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "Valor predictivo del UF-1000i para el grupo2 (mujeres fuera del rango 15-45años), para un punto de corte del citómetro de 128,35" ] ] 5 => array:7 [ "identificador" => "tbl0020" "etiqueta" => "Tabla 4" "tipo" => "MULTIMEDIATABLA" "mostrarFloat" => true "mostrarDisplay" => false "tabla" => array:1 [ "tablatextoimagen" => array:1 [ 0 => array:2 [ "tabla" => array:1 [ 0 => """ <table border="0" frame="\n \t\t\t\t\tvoid\n \t\t\t\t" class=""><thead title="thead"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Microorganismo \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">n \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-head\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Porcentaje sobre el total de aislados \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">E. coli \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">16 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">5,7% (16/277) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">S. agalactiae \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">13 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">50% (13/32) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Proteus mirabilis \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">7 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">26,9% (7/26) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">E. faecalis \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">6 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">18,7% (6/32) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">C. albicans \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">4 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">100% (4/4) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">Klebsiella spp. \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">2 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">4,4% (2/45) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">C. tropicalis \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">100% (1/1) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="left" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">P. aeruginosa \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">1 \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n \t\t\t\t\ttable-entry\n \t\t\t\t " align="char" valign="\n \t\t\t\t\ttop\n \t\t\t\t">25% (1/4) \t\t\t\t\t\t\n \t\t\t\t</td></tr></tbody></table> """ ] "imagenFichero" => array:1 [ 0 => "xTab463607.png" ] ] ] ] "descripcion" => array:1 [ "es" => "Microorganismos aislados en cultivo, en recuento significativo, en las muestras negativas para el citómetro, en el grupo2" ] ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "identificador" => "bibs0005" "bibliografiaReferencia" => array:13 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib0005" "etiqueta" => "1" "referencia" => array:1 [ 0 => array:1 [ "referenciaCompleta" => "Andreu Domingo A, Cacho J, Coira Nieto A, Lepe Jiménez JA. Diagnóstico microbiológico de las infecciones del tracto urinario. Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica. Disponible en: <a id="intr0005" class="elsevierStyleInterRef" href="http://www.seimc.org/documentos/protocolos/microbiologia/cap14a.pdf">http://www.seimc.org/documentos/protocolos/microbiologia/cap14a.pdf</a> [consultado 15 Ene 2012]." ] ] ] 1 => array:3 [ "identificador" => "bib0010" "etiqueta" => "2" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "contribucion" => array:1 [ 0 => array:2 [ "titulo" => "Use of flow cytometry (Syxmex UF-100) to screen for positive urine cultures in search for the ideal cut-off" "autores" => array:1 [ 0 => array:2 [ "etal" => false "autores" => array:4 [ 0 => "S. Brilha" 1 => "J. Proenca" 2 => "M. Cristino" 3 => "T. 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Estadísticas

Original

Evaluación del citómetro UF-1000i como método de cribado en el diagnóstico de infecciones del tracto urinario

Evaluation of the Sysmex UF-1000i flow cytometer for screening of urinary tract infection

Mónica de Frutos-Sernaa,

Autor para correspondencia

mfrutoss@saludcastillayleon.es

Autor para correspondencia.

, María Luz Asensio-Callea, Ana María Haro-Pérezb, Ana María Blázquez-de Castroa, María Nieves Gutiérrez-Zufiaurrea, Jesús Iglesias-Garcíaa

a Servicio de Microbiología, Hospital Universitario de Salamanca, Salamanca, España

b Servicio de Medicina Preventiva, Hospital Universitario de Salamanca, Salamanca, España

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uno para bacterias y otro para el resto de c&#233;lulas&#44; y previa tinci&#243;n fluorescente&#44; cuenta las part&#237;culas de la muestra integrando 3<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>se&#241;ales de medici&#243;n&#58; tama&#241;o&#44; estructura y fluorescencia&#46; Emite un resultado f&#225;cil de interpretar&#44; su manejo es sencillo&#44; aporta resultados en pocos minutos y permite una carga de muestras continua para su procesamiento&#46;</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El objetivo del estudio ha sido conocer el comportamiento del sistema automatizado de cribado de orina Syxmex UF-1000i &#40;bioM&#233;rieux&#44; Espa&#241;a&#41; para discriminar&#44; en nuestro laboratorio&#44; las muestras que deben ser procesadas por cultivo convencional&#44; permitiendo emitir el resultado de las muestras negativas el mismo d&#237;a de su recepci&#243;n&#46;</p></span><span id="sec0010" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0070">Material y m&#233;todos</span><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Nuestro Laboratorio de Microbiolog&#237;a sirve al Complejo Asistencial de Salamanca&#44; que cuenta con 800<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>camas aproximadamente&#44; incluyendo servicios de cr&#237;ticos&#44; y atiende a un &#225;rea de salud de 338&#46;000<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>personas&#46; Procesa en torno a 23&#46;000<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras de orina al a&#241;o&#46; Durante el periodo que dur&#243; el presente estudio &#40;desde el 1 de noviembre de 2010 hasta el 30 de septiembre de 2011&#41; se recibieron un total de 21&#46;467<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>peticiones de urinocultivo&#44; con una media de 97<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>peticiones diarias&#46;</p><p id="par0025" class="elsevierStylePara elsevierViewall">De ellas se procesaron 3&#46;374 &#40;15&#44;7&#37;&#41; muestras de orina utilizando el sistema automatizado UF-1000i y el cultivo convencional&#46; Para ello se analizaron en paralelo las 15<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>primeras muestras de orina que llegaban cada d&#237;a al laboratorio para procesamiento de rutina&#46; A su llegada&#44; la muestra se divid&#237;a en 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>al&#237;cuotas&#58; una se utilizaba para el an&#225;lisis con el sistema automatizado y la otra para el cultivo convencional inmediato&#46;</p><p id="par0030" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se excluyeron del estudio todas las muestras recibidas de menores de 5<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>a&#241;os&#44; de los ingresados en servicios de cuidados intensivos y de los pacientes inmunodeprimidos y&#47;o trasplantados&#44; ya que&#44; seg&#250;n nuestro protocolo&#44; estas muestras requieren una valoraci&#243;n individualizada&#46;</p><p id="par0035" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El cultivo convencional se realiz&#243; mediante la siembra con asa calibrada de 10<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>&#956;l en medio de agar sangre para recuento y MacConkey para identificaci&#243;n presuntiva &#40;ambas de Becton Dickinson&#41;&#44; interpretando los resultados a las 24<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>h de incubaci&#243;n aer&#243;bica a 37<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>&#176;<span class="elsevierStyleSmallCaps">C</span>&#46;</p><p id="par0040" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se consideraron positivos los recuentos superiores a 10<span class="elsevierStyleSup">4</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml en los cultivos pertenecientes a mujeres de 15 a 45<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>a&#241;os y a hombres &#40;grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1&#41; y los recuentos superiores a 10<span class="elsevierStyleSup">5</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml en cultivos de mujeres que se encontraban fuera del rango anterior &#40;grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2&#41;&#46; En ambos grupos&#44; seg&#250;n el crecimiento&#44; se informaron como cultivo positivo &#40;recuento igual o mayor a los establecidos en ambos grupos&#41;&#44; cultivo negativo &#40;recuento inferior a los establecidos en ambos grupos&#41; y orinas contaminadas &#40;m&#225;s de 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>microorganismos distintos en cultivo&#41;&#46;</p><p id="par0045" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Estos puntos de corte son los que se consideraron como resultados patr&#243;n a la hora de compararlos con el cribado del UF-1000i&#46;</p><p id="par0050" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La orinas contaminadas se contabilizaron para el cultivo como positivas cuando su recuento estaba por encima del punto de corte establecido&#44; a la hora de relacionar estos resultados con los obtenidos por el UF-1000i&#46;</p><p id="par0055" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los microorganismos fueron identificados por el sistema autom&#225;tico Vitek 2 &#40;bioM&#233;rieux&#44; Espa&#241;a&#41;&#46;</p><p id="par0060" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Con la otra al&#237;cuota de la muestra se realiz&#243; el cribado con el autoanalizador Sysmex UF-1000i&#44; siguiendo las directrices del fabricante&#46;</p><p id="par0065" class="elsevierStylePara elsevierViewall">UF-1000i analiza las part&#237;culas de la muestra mediante citometr&#237;a de flujo&#59; cada muestra se diluye y se ti&#241;e en 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>c&#225;maras distintas&#44; una para bacterias y otra para el resto de las part&#237;culas&#44; con polimetina fluorescente que se fija al ADN&#59; posteriormente&#44; en otra celda se irradian las part&#237;culas con una luz l&#225;ser semiconductora&#46; A continuaci&#243;n se detecta la dispersi&#243;n de la luz emitida en distintas direcciones del espacio y se mide la intensidad de la fluorescencia&#44; y con ello se calcula el tama&#241;o y la estructura de cada part&#237;cula para identificarlas y contarlas&#59; esta informaci&#243;n se presenta como diagramas de dispersi&#243;n &#40;&#171;scattergramas&#187;&#41;&#46;</p><p id="par0070" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los datos del estudio comparativo se han analizado con el paquete estad&#237;stico SPSS<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>19&#46;0&#46; Para las variables cuantitativas se han calculado medias y desviaci&#243;n est&#225;ndar&#44; y para las variables cualitativas se han comparado porcentajes&#46; Para valorar el mejor punto de corte del test UF<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1000i se han representado las curvas ROC&#44; para cada uno de los 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>grupos de pacientes de forma independiente&#46; Adem&#225;s se han evaluado la sensibilidad&#44; la especificidad y los valores predictivos positivo y negativo para estos puntos de corte&#44; que permiten conocer la cantidad y el porcentaje de muestras que se evitar&#237;a cultivar en cada caso&#44; para una m&#225;s completa valoraci&#243;n de las posibles aportaciones de este cribado&#46;</p><p id="par0075" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Por &#250;ltimo se realiz&#243; un c&#225;lculo del tiempo necesario para el procesamiento de las muestras por ambos m&#233;todos y la comparaci&#243;n de costes&#46;</p></span><span id="sec0015" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0075">Resultados</span><p id="par0080" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El n&#250;mero de muestras de orina incluidas en el estudio fue de 3&#46;374&#46; De ellas&#44; el 68&#44;1&#37; &#40;2&#46;304&#41; correspond&#237;an a muestras de mujeres y el 31&#44;9&#37; restante &#40;1&#46;070&#41; a hombres&#46; Del total&#44; el 73&#37; proven&#237;an de centros de salud y consultas hospitalarias&#44; y el 27&#37;&#44; de pacientes ingresados&#46; Las estad&#237;sticas de nuestro laboratorio &#40;datos no publicados&#41; confirman que esta muestra se corresponde con las caracter&#237;sticas de las muestras que&#44; en general&#44; procesamos en el laboratorio&#46;</p><p id="par0085" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los resultados del cultivo&#44; separados en ambos grupos&#44; fueron los siguientes&#58;<ul class="elsevierStyleList" id="lis0005"><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0005"><span class="elsevierStyleLabel">&#8226;</span><p id="par0090" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Grupo 1 &#40;mujeres de 15-45<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>a&#241;os y varones&#41;&#58; 1&#46;945<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras de orina&#59; de ellas fueron negativos 1&#46;405 &#40;72&#44;3&#37;&#41; cultivos&#44; positivos 326 &#40;16&#44;7&#37;&#41; y cultivos contaminados 214 &#40;11&#37;&#41;&#44; contabilizados como positivos para el cribado por tener un recuento &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>104<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml&#44; aun cuando la probabilidad de infecci&#243;n en estos casos es muy baja&#46; De los positivos fueron bacterias gramnegativas el 69&#44;71&#37; y bacterias grampositivas el resto&#46; Los microorganismos aislados m&#225;s frecuentes fueron <span class="elsevierStyleItalic">E&#46;</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli</span> &#40;52&#44;8&#37;&#41;&#44; <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> spp&#46; &#40;8&#44;2&#37;&#41;&#44; <span class="elsevierStyleItalic">Proteus mirabilis</span> &#40;7&#44;3&#37;&#41;&#44; <span class="elsevierStyleItalic">Enterococcus faecalis</span> &#40;16&#44;5&#37;&#41; y <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus agalactiae</span> &#40;4&#44;6&#37;&#41;&#46;</p></li><li class="elsevierStyleListItem" id="lsti0010"><span class="elsevierStyleLabel">&#8226;</span><p id="par0095" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Grupo 2 &#40;resto de mujeres&#41;&#58; la media de edad de estas mujeres fue de 65<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>a&#241;os&#46; Forman el grupo 1&#46;429<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras de orina&#59; de ellas fueron negativos 852 &#40;59&#44;6&#37;&#41; cultivos&#44; positivos 424 &#40;29&#44;6&#37;&#41; y cultivos contaminados 153 &#40;10&#44;7&#37;&#41;&#44; contabilizados como positivos para el cribado por tener recuento &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>105<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml&#46; De los positivos&#44; fueron bacterias gramnegativas el 83&#44;14&#37; y bacterias grampositivas el resto&#46; Los microorganismos aislados m&#225;s frecuentes en este grupo fueron <span class="elsevierStyleItalic">E&#46;</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli</span> &#40;65&#44;3&#37;&#41;&#44; <span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> spp&#46; &#40;10&#44;6&#37;&#41;&#44; <span class="elsevierStyleItalic">Proteus mirabilis</span> &#40;6&#44;1&#37;&#41;&#44; <span class="elsevierStyleItalic">Enterococcus faecalis</span> &#40;7&#44;5&#37;&#41; y <span class="elsevierStyleItalic">Streptococcus agalactiae</span> &#40;6&#44;1&#37;&#41;&#46;</p></li></ul></p><p id="par0100" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Cuando se construyen las curvas de reconocimiento &#243;ptico de caracteres &#40;ROC&#41; &#40;<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#fig0005">figs&#46; 1 y 2</a>&#41; y se elige el punto de corte&#44; buscando la mejor sensibilidad para la mayor especificidad posible&#44; para los 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>grupos de distinto patr&#243;n oro en el cultivo&#44; encontramos un punto de corte del UF-1000i de 53&#44;1 para el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1&#44; con un &#225;rea bajo la curva de la carga bacteriana de 0&#44;85&#44; y para el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 de 128&#44;35&#44; con un &#225;rea bajo la curva de 0&#44;90&#46;</p><elsevierMultimedia ident="fig0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="fig0010"></elsevierMultimedia><p id="par0105" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Para el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 este valor de 53&#44;1 en el cribado se corresponde con una sensibilidad del 92&#44;2&#37; y una especificidad del 60&#37;&#44; adem&#225;s de un valor predictivo positivo del 47&#44;8&#37; y un valor predictivo negativo del 95&#44;3&#37;&#46; En este grupo se sembrar&#237;a sin necesidad un 28&#37; de las muestras &#40;548 muestras falsas positivas&#41; y habr&#237;a 42<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras &#40;2&#44;1&#37;&#41; que no se habr&#237;an sembrado siendo positivas &#40;falsas negativas&#41;&#46; Estos datos se recogen en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0005">tabla 1</a>&#46; En la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0010">tabla 2</a> se recogen los microrganismos aislados de las muestras negativas para el cit&#243;metro &#40;falsas negativas&#41;&#59; en el resto de casos que no figuran en la tabla creci&#243; flora mixta&#46;</p><elsevierMultimedia ident="tbl0005"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="tbl0010"></elsevierMultimedia><p id="par0110" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En este grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1&#44; de usar el m&#233;todo de cribado en la rutina se hubiesen dejado de sembrar 895 orinas&#44; que suponen el 46&#37; del total del grupo&#46;</p><p id="par0115" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Para el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 este valor de 128&#44;3 en el cribado se corresponde con una sensibilidad del 86&#44;4&#37; y una especificidad del 87&#44;7&#37;&#44; presenta adem&#225;s un valor predictivo positivo del 82&#44;9&#37; y un valor predictivo negativo del 91&#37;&#46; En este grupo se sembrar&#237;an sin necesidad un 7&#44;2&#37; de las muestras &#40;104<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras falsas positivas&#41; y habr&#237;a 74<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras &#40;5&#44;1&#37;&#41; que no se habr&#237;an sembrado siendo positivas &#40;falsas negativas&#41;&#46; Estos datos se recogen en la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0015">tabla 3</a>&#46; En la <a class="elsevierStyleCrossRef" href="#tbl0020">tabla 4</a> se recogen los microorganismos aislados de las muestras negativas para el cit&#243;metro &#40;falsas negativas&#41;&#59; en el resto de casos que no figuran en la tabla creci&#243; flora mixta&#46;</p><elsevierMultimedia ident="tbl0015"></elsevierMultimedia><elsevierMultimedia ident="tbl0020"></elsevierMultimedia><p id="par0120" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2&#44; de usar el m&#233;todo de cribado en la rutina se hubiesen dejado de sembrar 822 orinas&#44; que suponen el 57&#44;5&#37; del total del grupo&#46;</p><p id="par0125" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Respecto a la valoraci&#243;n del tiempo utilizado por ambos m&#233;todos&#44; UF-1000i emite en un minuto el resultado de una muestra&#44; lo cual significa que nuestra media de 100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras diarias podr&#237;a estar cribada en 100<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min&#44; m&#225;s la validaci&#243;n de los controles del an&#225;lisis&#59; la limitaci&#243;n es que el laboratorio recibe las muestras en &#171;pulsos de muestras&#187;&#44; peque&#241;os de los servicios hospitalarios y m&#225;s cuantiosos de los centros de salud&#44; repartidos hasta el final de la ma&#241;ana&#44; lo cual hace dif&#237;cil la optimizaci&#243;n de esta ventaja&#59; a este tiempo habr&#237;a que a&#241;adir el que se precisa posteriormente para sembrar las muestras positivas del cribado&#46; En el otro lado&#44; la siembra directa en los 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>medios referidos se realiza en el laboratorio por personal entrenado&#44; aproximadamente en 1<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>min por muestra&#46;</p><p id="par0130" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los costes directos&#44; dejando aparte el tiempo del personal t&#233;cnico&#44; en el caso del cribado por cada muestra se calcularon en 1&#44;78 euros&#44; solo consumibles&#44; puesto que el cit&#243;metro lo cedi&#243; la empresa distribuidora&#59; a esto hay que a&#241;adir el coste de la siembra de las muestras positivas&#46; En la siembra directa se utiliza una placa de agar sangre&#44; de 0&#44;225<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>euros aproximadamente&#44; y otra de agar MacConkey&#44; de 0&#44;217<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>euros aproximadamente&#46;</p></span><span id="sec0020" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0080">Discusi&#243;n</span><p id="par0135" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Cuando se empez&#243; a trabajar con el autoanalizador UF-1000i y se revisaron las m&#225;s recientes evaluaciones publicadas&#44; se decidi&#243; que lo m&#225;s razonable ser&#237;a definir los puntos de corte m&#225;s adecuados para nuestras muestras&#46; Ten&#237;amos en cuenta que la Oficina Europea de Directrices recomienda para una prueba r&#225;pida de cribado de orina&#44; distinta del cultivo&#44; una sensibilidad anal&#237;tica del 90-95&#37; para detectar bacteriuria asintom&#225;tica en las muestras con m&#225;s de 10<span class="elsevierStyleSup">5</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml&#44; con una confirmaci&#243;n por cultivo de las muestras positivas<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0030"><span class="elsevierStyleSup">6</span></a>&#46;</p><p id="par0140" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Se decidi&#243; tambi&#233;n no considerar el recuento simult&#225;neo de leucocitos&#44; pues aunque podr&#237;a ser un buen predictor de infecci&#243;n&#44; no existe acuerdo sobre cu&#225;l es el valor a partir del cual una piuria puede considerarse significativa<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0035"><span class="elsevierStyleSup">7&#44;8</span></a>&#46; Adem&#225;s existe mucha discordancia en su utilidad&#44; de manera que en algunos trabajos mejora la rentabilidad del cribado<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9-11</span></a>&#44; y para otros las &#225;reas bajo la curva ROC son menores que las correspondientes a las bacterias&#44; no mejoran la sensibilidad ni la especificidad y concluyen que no hay que considerarlas para el cribado<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12&#44;13</span></a>&#46; Adem&#225;s nuestros recipientes colectores de orina no contienen &#225;cido b&#243;rico&#44; que estabiliza los leucocitos y frena el crecimiento de las bacterias&#46;</p><p id="par0145" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La poblaci&#243;n atendida en nuestro hospital es muy heterog&#233;nea&#44; desde neonatos ingresados en cuidados intensivos y hematol&#243;gicos trasplantados hasta una buena cantidad de muestras de mujeres a&#241;osas atendidas en atenci&#243;n primaria&#59; adem&#225;s&#44; en la mayor&#237;a de las peticiones faltan datos cl&#237;nicos&#44; informaci&#243;n sobre tratamiento antimicrobiano en curso o completado y si se trata de pacientes sondados&#46; Esto nos obliga a hacer de las muestras una valoraci&#243;n tambi&#233;n heterog&#233;nea&#44; de manera que las orinas de neonatos&#44; ni&#241;os cr&#237;ticos&#44; trasplantados e inmunodeprimidos en general&#44; as&#237; como de adultos cr&#237;ticos&#44; se valoran de forma individualizada&#44; y para el resto&#44; de forma general&#44; aplicamos 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>puntos de corte&#58; &#8805;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml en los casos de muestras de varones y mujeres en edad f&#233;rtil&#44; y otro para el resto&#44; que son fundamentalmente mujeres a&#241;osas del medio extrahospitalario&#44; consideradas positivas con recuentos &#8805;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">5</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml&#46;</p><p id="par0150" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Cuando comparamos la muestra con las de otros autores para contrastar los resultados&#44; se observa una heterogeneidad que es la raz&#243;n que justifica que cada laboratorio deba establecer sus puntos de corte para el cribado&#44; aunque s&#237; hay aspectos compartidos que poner de manifiesto&#46; Los trabajos recientes eval&#250;an muestras en general de adultos mayoritariamente comunitarias y en cuya etiolog&#237;a predominan los bacilos gramnegativos&#44; sobre todo <span class="elsevierStyleItalic">E&#46;</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli&#46;</span> En el caso de Broeren et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a> las muestras son en un 56&#37; hospitalarias y comunican que <span class="elsevierStyleItalic">E&#46;</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli</span> es el microorganismo m&#225;s aislado y representa el 37&#37;&#44; cuando en el resto de las series<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9-11&#44;13</span></a>&#44; incluidos los 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>grupos de la muestra que se analizan&#44; representa m&#225;s del 50&#37;&#46; El porcentaje de cultivos positivos&#44; que determinar&#225; la sensibilidad de la prueba de cribado&#44; es m&#225;s homog&#233;neo&#44; alrededor del 30&#37;<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9-13</span></a>&#44; teniendo en cuenta que todos estos autores incluyen en los positivos los cultivos contaminados cuyo recuento supera el punto de corte de positividad&#46; Broeren et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a>&#44; que analizan sus datos con distintos puntos de corte&#44; encuentran mayor porcentaje de muestras positivas cuando establecen el cultivo positivo &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span> &#40;50&#37;&#41; que cuando lo establecen en &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">5</span> &#40;38&#37;&#41;&#44; lo que modifica tambi&#233;n la sensibilidad&#46; En nuestros grupos&#44; para el punto de corte &#8805;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span> encontramos un 27&#37; de muestras positivas&#44; y en el de positividad establecida &#8805;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">5</span> hay un 40&#37;&#59; la raz&#243;n es que no se trata de la misma muestra sino de 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras distintas de 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>grupos epidemiol&#243;gicamente muy diferentes&#46;</p><p id="par0155" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En cuanto a los puntos de corte que los diferentes autores eligen para el cribado con UF-1000i&#44; encontramos que aumenta cuanto m&#225;s alto es el l&#237;mite a partir del cual se considera positivo el cultivo&#44; lo que se constata en los grupos de la muestra que se presenta &#40;53&#44;1 para cultivo positivo &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml y 128&#44;3 para cultivo positivo &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">5</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml&#41;&#46; As&#237; en el trabajo referido anteriormente<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a> eligen 39<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>bacterias&#47;&#956;l para un punto de corte de cultivo negativo &#60;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span> y de 230<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>bacterias&#47;&#956;l&#44; para la misma muestra&#44; para un punto de corte de cultivo negativo &#60;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">5</span>&#59; otros autores<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a> establecen en 125<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>bacterias&#47;&#956;l el punto de corte del cribado&#44; habiendo establecido como cultivo positivo los crecimientos mayores de 105<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>UFC&#47;ml&#46; Menos concordantes son los datos de De Rosa et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a>&#44; que establecen el corte en 170<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>bacterias&#47;&#956;l&#44; con un punto de corte en el cultivo positivo &#8805;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span>&#44; que quiz&#225; tenga explicaci&#243;n en el hecho de que su porcentaje de cultivos positivos es menor que el resto &#40;25&#44;6&#37;&#44; frente a cerca del 40&#37; de media en el resto&#41; y que las muestras positivas seg&#250;n su punto de corte lo sean mayoritariamente con recuentos muy altos&#46; En otro trabajo revisado<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a> se eligen 20<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>bacterias&#47;&#956;l&#44; quiz&#225; un n&#250;mero llamativamente bajo&#44; con un 30&#37; de muestras positivas&#44; un punto de corte de &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">4</span> para uropat&#243;genos y de &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>10<span class="elsevierStyleSup">5</span> para los no uropat&#243;genos&#59; es posible que en las caracter&#237;sticas de su muestra&#44; que desconocemos&#44; pudiera estar la explicaci&#243;n de esta diferencia&#46;</p><p id="par0160" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Respecto a la sensibilidad y a la especificidad del cribado con el UF-1000i&#44; el estudio de Broeren et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0060"><span class="elsevierStyleSup">12</span></a> ya puso de manifiesto c&#243;mo mejoraba la sensibilidad y disminu&#237;a la especificidad a medida que se acepta un n&#250;mero creciente de bacterias en cultivo como referencia&#46; Sin embargo&#44; es el tipo de paciente el que determina el punto de corte&#44; y a partir de ah&#237; el cribado debe tener un comportamiento aceptable&#44; de sensibilidad y especificidad&#46; La mayor&#237;a de los autores a los que hemos hecho referencia<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9-13</span></a> comunican una sensibilidad entre el 85 y el 98&#37;&#44; con una moda del 97&#37;&#59; en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 se alcanza el 92&#37; con el punto de cribado elegido&#44; pero el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 se queda en el 86&#37;&#44; teniendo este mayor porcentaje de cultivos positivos &#40;40&#37; entre verdaderos positivos y contaminados&#41;&#59; puede ocurrir que buena parte de estos cultivos positivos est&#233;n &#171;justos&#187; de recuento&#44; y comprobaremos este extremo en estudios posteriores&#46; Las cifras de especificidad comunicadas se encuentran en torno al 80&#37;&#44; cifra que se alcanza en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2&#44; pero que es del 60&#37; en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 de hombres y mujeres en edad f&#233;rtil&#46;</p><p id="par0165" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El dato correspondiente al valor predictivo negativo &#40;VPN&#41;&#44; que&#44; junto con la sensibilidad&#44; es el m&#225;s importante para valorar una prueba de cribado&#44; fue del 95&#44;3&#37; para el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 y del 91&#37; para el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2&#59; los autores a los que estamos haciendo referencia<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0050"><span class="elsevierStyleSup">10&#44;11</span></a> comunican el 99 y el 98&#37;&#44; respectivamente&#46;</p><p id="par0170" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los falsos positivos tienen una importancia relativa desde el punto de vista microbiol&#243;gico&#44; son muestras que han de cultivarse sin necesidad y podr&#237;an corresponder a muestras de orina que contengan bacterias no viables por la administraci&#243;n de antibi&#243;ticos o microrganismos no cultivables&#59; las cifras del grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2 &#40;7&#44;2&#37;&#41; est&#225;n en consonancia con las series publicadas&#44; que comunican entre el 3&#37;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a> y hasta el 17&#37;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a>&#44; y el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 presenta el 28&#37; de falsos positivos&#59; posiblemente los varones y las mujeres en edad f&#233;rtil con cl&#237;nica compatible son&#44; epidemiol&#243;gicamente&#44; los mejores candidatos a infecciones recurrentes&#44; parcialmente tratadas&#44; y a la presencia de bacterias no cultivables&#59; sin embargo&#44; corresponde a 548 muestras&#44; un n&#250;mero elevado por su repercusi&#243;n en la carga de trabajo&#46;</p><p id="par0175" class="elsevierStylePara elsevierViewall">No se valor&#243; si los falsos negativos tuvieron significaci&#243;n cl&#237;nica&#44; y creemos adem&#225;s que el hecho de que no la tengan no les resta trascendencia en la valoraci&#243;n de una prueba de cribado&#46; Cuantitativamente los art&#237;culos referidos hasta aqu&#237; encuentran en torno al 1&#37;<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9-11&#44;13</span></a>&#44; y en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 hay el 2&#44;1&#37; de falsos negativos&#44; que alcanzan el 5&#44;1&#37; en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2&#46; Cuando se trata de saber qu&#233; microorganismos se a&#237;slan de estas muestras&#44; y excluyendo las levaduras para las que el autoanalizador realiza un recuento aparte que no hemos considerado&#44; Wang el al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0055"><span class="elsevierStyleSup">11</span></a> encuentran en sus 2<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>muestras que cumplen este criterio un enterococo y un estafilococo&#44; De Rosa et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0050"><span class="elsevierStyleSup">10</span></a> un enterococo&#44; un <span class="elsevierStyleItalic">Proteus mirabilis</span> y un <span class="elsevierStyleItalic">E&#46;</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span><span class="elsevierStyleItalic">coli</span>&#44; y Manoni et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9</span></a> publican que de los falsos negativos que encuentran&#44; la mitad son cocos grampositivos y el resto levaduras y bacilos gramnegativos de crecimiento lento&#46; Cuando se observan los aislamientos en estos casos&#44; en las <a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#tbl0010">tablas 2 y 4</a>&#44; los mayores porcentajes corresponden a microorganismos grampositivos y a <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> spp&#46;&#59; estas diferencias precisan de una evaluaci&#243;n posterior para determinar su posible significaci&#243;n&#46; Es interesante una de las aportaciones del trabajo de Kadkhoda et al&#46;<a class="elsevierStyleCrossRef" href="#bib0065"><span class="elsevierStyleSup">13</span></a>&#44; que encuentran que cuando se aumentan los puntos de corte&#44; la sensibilidad de detecci&#243;n del UF-1000i para bacterias grampositivas se afecta mucho m&#225;s que la sensibilidad para detectar bacterias gramnegativas&#46;</p><p id="par0180" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Otro aspecto importante es la reducci&#243;n de cultivos de orina que supone la introducci&#243;n del sistema de cribado&#44; el 46&#37; en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>1 y el 57&#44;5&#37; en el grupo<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>2&#59; los trabajos a los que se viene haciendo menci&#243;n refieren cifras tambi&#233;n en torno al 50&#37;&#46;</p><p id="par0185" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Coincidimos con varios autores<a class="elsevierStyleCrossRefs" href="#bib0045"><span class="elsevierStyleSup">9&#44;12&#44;13</span></a> en que las muestras de algunos pacientes seleccionados &#40;ni&#241;os peque&#241;os&#44; embarazadas&#44; inmunodeprimidos y posiblemente tambi&#233;n urol&#243;gicos&#41; han de valorarse individualmente&#44; y el fabricante de UF-1000i reconoce que el l&#237;mite inferior de detecci&#243;n del cit&#243;metro es de 10<span class="elsevierStyleSup">3</span>-10<span class="elsevierStyleSup">4</span><span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>bacterias&#47;ml&#44; l&#237;mite de sensibilidad demasiado alto para algunos de estos casos&#46;</p><p id="par0190" class="elsevierStylePara elsevierViewall">La introducci&#243;n en la rutina del procesamiento de las orinas con el autoanalizador UF-1000i tiene ventajas&#44; dadas entre otras por el hecho de que todo el proceso es autom&#225;tico&#44; con lo que desaparecen los errores humanos que pueden darse en el cultivo con asa calibrada&#46; Adem&#225;s&#44; este sistema es capaz de cribar una muestra por minuto&#44; con lo que en los laboratorios con gran volumen de muestras y cuya organizaci&#243;n permita testarlas en bloque supone un ahorro considerable de tiempo&#44; sobre todo el de la valoraci&#243;n de los cultivos negativos&#44; ya que en costes directos no supone ahorro con respecto al cultivo convencional&#46;</p><p id="par0195" class="elsevierStylePara elsevierViewall">El comportamiento y la rentabilidad de la incorporaci&#243;n de este cit&#243;metro al cribado de las orinas depender&#225; en cada laboratorio de los par&#225;metros analizados y de los puntos de corte que se elijan&#46;</p><p id="par0200" class="elsevierStylePara elsevierViewall">En nuestra opini&#243;n&#44; valorando exclusivamente la bacteriuria&#44; los datos obtenidos de reducci&#243;n de la carga de trabajo y sobre todo el porcentaje de resultados falsos negativos no justifica&#44; en nuestro contexto&#44; el uso del autoanalizador UF-1000i como m&#233;todo de cribado de bacteriuria&#46;</p></span><span id="sec0025" class="elsevierStyleSection elsevierViewall"><span class="elsevierStyleSectionTitle" id="sect0085">Conflicto de intereses</span><p id="par0205" class="elsevierStylePara elsevierViewall">Los autores declaran no tener ning&#250;n conflicto de intereses&#46;</p></span></span>"
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t">Positivos UF-1000 &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>53&#44;1&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t">1&#46;050&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t">Negativos UF-1000 &#60;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>53&#44;1&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t\ttable-head\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Microorganismo&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-head\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">n&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-head\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Porcentaje sobre el total de aislados&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">E&#46; coli</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">14&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">8&#37; &#40;14&#47;169&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">Proteus mirabilis</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">6&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">25&#37; &#40;6&#47;24&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">E&#46; faecalis</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">5&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">9&#44;2&#37; &#40;5&#47;54&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> spp&#46;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">2&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">7&#44;4&#37; &#40;2&#47;27&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">S&#46; agalactiae</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">2&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">15&#37; &#40;2&#47;15&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">C&#46; albicans</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">2&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">100&#37; &#40;2&#47;2&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">C&#46; parapsilopsis</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">1&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">100&#37; &#40;1&#47;1&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">S saprophyticus</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">1&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">20&#37; &#40;1&#47;5&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr></tbody></table>
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                  \t\t\t\t  " align="" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-head\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Enfermos cultivo positivo&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-head\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Sanos cultivo negativo&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-head\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Total&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">Positivos UF-1000 &#62;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>128&#44;35&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">VP 503&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">FP 104 &#40;7&#44;2&#37;&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
                  \t\t\t\t\ttable-entry\n
                  \t\t\t\t  " align="char" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">607&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">Negativos UF-1000 &#60;<span class="elsevierStyleHsp" style=""></span>128&#44;35&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t  " align="left" valign="\n
                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">FN 74 &#40;5&#44;1&#37;&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t">VN 748&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">822&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">Total&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t">1&#46;429&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr></tbody></table>
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                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Microorganismo&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">n&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t" style="border-bottom: 2px solid black">Porcentaje sobre el total de aislados&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr></thead><tbody title="tbody"><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">E&#46; coli</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t">16&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
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                  \t\t\t\t\ttop\n
                  \t\t\t\t">5&#44;7&#37; &#40;16&#47;277&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td></tr><tr title="table-row"><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">Proteus mirabilis</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">E&#46; faecalis</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">Klebsiella</span> spp&#46;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
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                  \t\t\t\t</td><td class="td" title="\n
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                  \t\t\t\t"><span class="elsevierStyleItalic">C&#46; tropicalis</span>&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
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                  \t\t\t\t">25&#37; &#40;1&#47;4&#41;&nbsp;\t\t\t\t\t\t\n
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Información del artículo

ISSN: 0213005X
Idioma original: Español

DOI:10.1016/j.eimc.2013.02.015

Datos actualizados diariamente

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2024 Noviembre	3	0	3
2024 Octubre	40	16	56
2024 Septiembre	32	16	48
2024 Agosto	36	17	53
2024 Julio	43	4	47
2024 Junio	22	7	29
2024 Mayo	26	3	29
2024 Abril	24	7	31
2024 Marzo	54	4	58
2024 Febrero	56	4	60
2024 Enero	60	4	64
2023 Diciembre	45	16	61
2023 Noviembre	181	17	198
2023 Octubre	78	2	80
2023 Septiembre	60	4	64
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2023 Julio	64	6	70
2023 Junio	60	2	62
2023 Mayo	88	6	94
2023 Abril	56	2	58
2023 Marzo	54	8	62
2023 Febrero	34	9	43
2023 Enero	45	5	50
2022 Diciembre	44	12	56
2022 Noviembre	49	14	63
2022 Octubre	42	49	91
2022 Septiembre	38	25	63
2022 Agosto	25	15	40
2022 Julio	19	19	38
2022 Junio	35	13	48
2022 Mayo	46	14	60
2022 Abril	38	22	60
2022 Marzo	26	10	36
2022 Febrero	18	7	25
2022 Enero	25	5	30
2021 Diciembre	38	21	59
2021 Noviembre	35	15	50
2021 Octubre	31	16	47
2021 Septiembre	25	21	46
2021 Agosto	27	7	34
2021 Julio	32	9	41
2021 Junio	32	7	39
2021 Mayo	49	7	56
2021 Abril	46	19	65
2021 Marzo	59	12	71
2021 Febrero	35	10	45
2021 Enero	38	14	52
2020 Diciembre	32	12	44
2020 Noviembre	37	7	44
2020 Octubre	33	4	37
2020 Septiembre	29	6	35
2020 Agosto	33	7	40
2020 Julio	27	7	34
2020 Junio	25	14	39
2020 Mayo	35	15	50
2020 Abril	23	8	31
2020 Marzo	33	10	43
2020 Febrero	33	10	43
2020 Enero	31	20	51
2019 Diciembre	53	12	65
2019 Noviembre	25	10	35
2019 Octubre	35	15	50
2019 Septiembre	34	8	42
2019 Agosto	28	2	30
2019 Julio	57	41	98
2019 Junio	68	50	118
2019 Mayo	184	89	273
2019 Abril	59	53	112
2019 Marzo	24	11	35
2019 Febrero	25	31	56
2019 Enero	26	13	39
2018 Diciembre	14	20	34
2018 Noviembre	26	23	49
2018 Octubre	51	19	70
2018 Septiembre	13	12	25
2018 Agosto	15	31	46
2018 Julio	14	12	26
2018 Junio	19	28	47
2018 Mayo	12	13	25
2018 Abril	14	18	32
2018 Marzo	20	12	32
2018 Febrero	19	24	43
2018 Enero	9	12	21
2017 Diciembre	10	9	19
2017 Noviembre	25	13	38
2017 Octubre	22	14	36
2017 Septiembre	16	25	41
2017 Agosto	29	14	43
2017 Julio	27	15	42
2017 Junio	22	26	48
2017 Mayo	32	38	70
2017 Abril	24	40	64
2017 Marzo	40	52	92
2017 Febrero	28	14	42
2017 Enero	34	26	60
2016 Diciembre	58	19	77
2016 Noviembre	55	29	84
2016 Octubre	76	22	98
2016 Septiembre	48	25	73
2016 Agosto	32	14	46
2016 Julio	34	6	40
2016 Junio	46	22	68
2016 Mayo	42	29	71
2016 Abril	37	36	73
2016 Marzo	55	22	77
2016 Febrero	43	24	67
2016 Enero	29	34	63
2015 Diciembre	30	26	56
2015 Noviembre	31	21	52
2015 Octubre	55	23	78
2015 Septiembre	41	18	59
2015 Agosto	31	10	41
2015 Julio	33	6	39
2015 Junio	12	11	23
2015 Mayo	18	10	28
2015 Abril	23	11	34
2015 Marzo	17	21	38
2015 Febrero	12	9	21
2015 Enero	28	6	34
2014 Diciembre	26	6	32
2014 Noviembre	27	5	32
2014 Octubre	31	13	44
2014 Septiembre	40	6	46
2014 Agosto	28	13	41
2014 Julio	33	15	48
2014 Junio	35	11	46
2014 Mayo	37	5	42
2014 Abril	65	25	90
2014 Marzo	151	73	224

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