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Son, por tanto, técnicas que precisan una endoscopia y, por ello, resultan agresivas para el enfermo. Los métodos indirectos se basan en el estudio y la detección de ciertas características de la bacteria (p. ej., la capacidad de hidrolizar la urea, propiedad en la que se basa la prueba del aliento) o de la respuesta del sistema inmunitario del huésped frente a la infección (medición de anticuerpos específicos mediante las diversas pruebas serológicas). Este tipo de técnicas no precisan endoscopia y, por tanto, pueden considerarse poco agresivas para el enfermo. Aunque el número de trabajos que evalúan por separado las diversas técnicas diagnósticas es elevado, los estudios comparativos entre estos métodos son relativamente escasos<span class="elsevierStyleSup">2-8</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> El empleo de los diferentes métodos diagnósticos que se revisarán a continuación está dirigido, lógicamente, al tratamiento posterior de la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. De ello se deduce una consecuencia que, aunque parezca obvia, debe ser recalcada: «únicamente deberíamos investigar si existe infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en aquellos pacientes en los que, en caso de confirmarse, pensemos administrar tratamiento erradicador»<span class="elsevierStyleSup">9-12</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">MÉTODOS DIRECTOS</span></p><p class="elsevierStylePara"> Todos precisan de la obtención de una muestra de mucosa gástrica mediante un gastroscopio en la que se pueda demostrar la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>, por lo que también se denominan métodos «invasores». </p><p class="elsevierStylePara"> El número y la localización de las biopsias que deben obtenerse para diagnosticar la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> depende de diversos factores<span class="elsevierStyleSup">13</span>, entre los que destacan el empleo previo de diversos fármacos (fundamentalmente antibióticos o inhibidores de la bomba de protones), la presencia de metaplasia o atrofia gástrica, o si se trata del diagnóstico inicial o tras la administración de tratamiento erradicador. </p><p class="elsevierStylePara"> Con respecto a la localización de las biopsias, la mayoría de los autores recomiendan la toma de éstas en la región antral distal, por ser éste el lugar preferente de colonización de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span><span class="elsevierStyleSup">9</span>. No obstante, y puesto que un pequeño número de pacientes pueden tener la bacteria en una sola de estas localizaciones, se podrían obtener también muestras del cuerpo gástrico<span class="elsevierStyleSup">13,14</span>, lo que estaría especialmente indicado en dos situaciones. En primer lugar, cuando se trate de investigar la infección en pacientes que han recibido tratamiento erradicador (pues la densidad de microorganismos puede ser menor), si bien algunos autores han sugerido que para confirmar la erradicación de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> tras la administración de las «nuevas» terapias triples que emplean omeprazol sólo durante una semana es suficiente la obtención de biopsias únicamente del antro gástrico<span class="elsevierStyleSup">15</span>. En segundo lugar, sería también recomendable obtener biopsias del cuerpo cuando el paciente haya recibido recientemente inhibidores de la bomba de protones<span class="elsevierStyleSup">11-13</span>, pues en esta circunstancia es más fácil detectar el microorganismo en la mucosa del cuerpo gástrico que en el antro, dado que se ha descrito una migración proximal de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en enfermos que reciben este tipo de fármacos<span class="elsevierStyleSup">16</span>. Las biopsias del cuerpo gástrico, en caso de obtenerse, deben localizarse en el tercio superior de la curvatura mayor<span class="elsevierStyleSup">13</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> En relación al número de biopsias necesarias para realizar un diagnóstico correcto de la infección, no existe acuerdo unánime<span class="elsevierStyleSup">9</span>: algunos autores sugieren que es suficiente con una única biopsia, mientras que otros recomiendan obtener dos muestras de cada una de las localizaciones que se biopsien<span class="elsevierStyleSup">13</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Histología</span></p><p class="elsevierStylePara"> La observación de microorganismos de forma espirilar en los cortes histológicos de las biopsias es un método de diagnóstico sencillo de la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. Es característica su localización en íntimo contacto con el epitelio de superficie, en plena barrera mucosa. Tiene la gran ventaja, frente a los demás métodos, de proporcionar simultáneamente información precisa sobre los cambios morfológicos de la mucosa gástrica<span class="elsevierStyleSup">17</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Entre los métodos de tinción utilizados, unos son simples y por lo tanto fáciles de realizar, y otros son más complejos. La elección del método depende más de la experiencia, la preferencia y las posibilidades de cada laboratorio que de una clara ventaja de una técnica de tinción en particular. Ninguna de las tinciones es específica para <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>, pero sí permiten identificarlo reconociendo sus características y localización. </p><p class="elsevierStylePara"> Debido al relativamente elevado coste de la histología, se ha sugerido que esta técnica no debiera emplearse rutinariamente, reservándose para los casos en los que el test rápido de la ureasa (el método directo más barato) fuera negativo<span class="elsevierStyleSup">11,12</span>. De este modo, aunque en el momento de la endoscopia se tomarían biopsias para ambas técnicas, únicamente se remitirían para su estudio histológico en el caso de que la prueba rápida de la ureasa diera un resultado negativo<span class="elsevierStyleSup">9,11,12</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> La <span class="elsevierStyleItalic">tinción de plata de Warthin-Starry,</span> utilizada habitualmente para la identificación de espiroquetas, es muy buena para visualizar el microorganismo, pero es relativamente complicada de realizar, es laboriosa y tiene un elevado coste por el tipo de reactivos utilizados. Ello hace que habitualmente no se utilice como técnica de rutina, reservándose para aquellos casos en que existan dudas diagnósticas. </p><p class="elsevierStylePara"> La <span class="elsevierStyleItalic">tinción con hematoxilina-eosina</span> es la técnica más utilizada para el diagnóstico de las muestras incluidas en parafina. Su principal ventaja consiste en que permite el diagnóstico y la graduación de la lesión histológica asociada, además de ser una técnica fácil de realizar utilizada de forma rutinaria en los laboratorios de anatomía patológica, por lo que no añade costes ni tiempo al procesamiento habitual de las biopsias. Tiene como inconveniente que requiere una experiencia superior a la de otras técnicas para establecer un correcto diagnóstico de la presencia de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> La <span class="elsevierStyleItalic">tinción de Giemsa, </span>a diferencia de la anterior, permite una fácil identificación de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. Por su simplicidad, rapidez y bajo coste esta tinción se considera como una de las de elección<span class="elsevierStyleSup">18</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Se han propuesto otras muchas técnicas con diferentes resultados, como la tinción con naranja de acridina, la de Brown-Hopps, la coloración de Giménez, el acetato de crisil violeta o la tinción con azul de metileno, entre otras. Por último, se han estudiado técnicas de <span class="elsevierStyleItalic">inmunohistoquímica</span><span class="elsevierStyleSup">19</span> e <span class="elsevierStyleItalic">inmunofluorescencia</span><span class="elsevierStyleSup">20</span> utilizando anticuerpos monoclonales o policlonales frente a <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Cultivo</span></p><p class="elsevierStylePara"> Habitualmente se le considera una técnica difícil y tediosa; sin embargo, adoptando una serie de mínimas precauciones la mayoría de los laboratorios consiguen el crecimiento del microorganismo. El cultivo, además de método diagnóstico, tiene la ventaja de tipificar el organismo y determinar su sensibilidad frente a los agentes antibacterianos, lo que tiene importancia desde el punto de vista epidemiológico y para conocer posibles resistencias frente a regímenes terapéuticos. La especificidad del cultivo es del 100%, pero su sensibilidad es menor a la de otras técnicas diagnósticas<span class="elsevierStyleSup">21</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Dado que <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> es muy sensible a la desecación y a las condiciones atmosféricas habituales, es de suma importancia transportar las muestras de modo adecuado y en el espacio de tiempo más breve posible. Las muestras destinadas a cultivo permanecen viables durante aproximadamente 5 h cuando se conservan en suero salino a 4 °C, o durante más de 24 h si se conservan a 4 °C en un medio de transporte específico para <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span><span class="elsevierStyleSup">22</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Se ha descrito una gran cantidad de medios de cultivo para <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>, de los cuales el de Skirrow es uno de los más utilizados<span class="elsevierStyleSup">23</span>. Para obtener un buen crecimiento debe añadirse al medio sangre total o suero (del 1 al 5%)<span class="elsevierStyleSup">21</span>, aunque también puede cultivarse <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en un medio simple con agar y un 6% de sangre de carnero<span class="elsevierStyleSup">24</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Para evitar el sobrecrecimiento bacteriano, relativamente frecuente tanto por contaminantes exógenos como endógenos presentes en la muestra de biopsia<span class="elsevierStyleSup">25</span>, se recomienda la utilización de medios de cultivo selectivos (como el de Skirrow) que añaden al medio nutritivo un suplemento antibiótico<span class="elsevierStyleSup">23,26</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Dadas las características microaerófilas del germen, las placas se deben incubar en una «jarra de anaerobios». La temperatura óptima a la que deben colocarse las placas de cultivo es de 35 a 37 °C. Pueden crecer colonias a partir del tercer o cuarto día, aunque se recomienda que el período de incubación sea al menos de 7 días<span class="elsevierStyleSup">7</span>. La confirmación del diagnóstico se establecerá por las características del microorganismo<span class="elsevierStyleSup">21</span>: gramnegativo y catalasa, oxidasa y ureasa positivo. </p><p class="elsevierStylePara"> En la práctica clínica no es necesaria la realización rutinaria del cultivo previamente a la administración de un primer tratamiento erradicador, puesto que con el tratamiento empírico (sin conocer las resistencias bacterianas) se obtiene la erradicación de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en un elevado porcentaje de pacientes<span class="elsevierStyleSup">9-12</span>. Probablemente tampoco sea necesario realizar un cultivo antes de indicar un segundo tratamiento erradicador tras el fracaso de un primero<span class="elsevierStyleSup">9,11,12</span>, afirmación que se apoya en los siguientes argumentos: el tratamiento empírico se basa en no repetir ningún antibiótico, pues sabemos que cuando fracasa una combinación que contiene claritromicina o metronidazol aparece resistencia a éstos en la mayoría de los casos; ni aun conociendo la sensibilidad bacteriana se alcanza una eficacia erradicadora del 100%, pues la correlación entre sensibilidad antibiótica in vitro e in vivo no es perfecta; el cultivo es una técnica relativamente compleja; realizar cultivo implica la necesidad de someter al paciente a una endoscopia y, por último, se ha obtenido una elevada eficacia al administrar un tratamiento cuádruple empírico en los casos en los que ha fracasado un primer intento erradicador<span class="elsevierStyleSup">27</span>. En resumen, el cultivo estaría más claramente indicado tras un segundo fracaso erradicador, si bien parece recomendable emplearlo de forma rutinaria en algunos centros especializados, para conocer así la prevalencia de resistencias (y su evolución con el paso del tiempo), así como la influencia de éstas en la eficacia terapéutica<span class="elsevierStyleSup">9,11</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Recientemente se ha propuesto un nuevo método diagnóstico con capacidad de demostrar directamente la presencia de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> sin necesidad de realizar una endoscopia, el denominado «enterotest» o «prueba del hilo»<span class="elsevierStyleSup">28</span>, que permite la realización de antibiogramas en las muestras obtenidas. Esta técnica, aunque potencialmente útil en algunas circunstancias, debe ser más ampliamente validada antes de poder recomendarla definitivamente<span class="elsevierStyleSup">9,12</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Estudio microscópico directo de la muestra con tinción de Gram</span></p><p class="elsevierStylePara"> El estudio histológico necesita un mínimo de 48 h y el cultivo, en el mejor de los casos, 3 o 4 días, por lo que no ofrecen un diagnóstico rápido de la infección. La tinción de Gram y la observación en el microscopio de un frotis de la muestra en fresco es una técnica rápida y certera en manos expertas. Se han descrito sensibilidades del 90% y especificidades cercanas al 100%<span class="elsevierStyleSup">29</span>. Si se obtienen muestras simultáneamente de antro y fundus, la sensibilidad de la tinción de Gram es prácticamente del 100%<span class="elsevierStyleSup">29</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Test rápido de la ureasa</span></p><p class="elsevierStylePara"> La capacidad de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> para producir grandes cantidades de ureasa ha servido para desarrollar un método rápido y sencillo de diagnóstico<span class="elsevierStyleSup">30</span>. Para su realización se coloca una muestra de biopsia gástrica en un tubo con urea y un indicador que cambia la coloración del medio al variar el pH. Si la muestra contiene ureasa (y por tanto <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>) se hidroliza la urea y se forman iones amonio, que aumentan el pH de la solución, produciéndose un cambio de color. La rapidez del resultado depende del número de bacterias presentes en la muestra, siendo suficiente una mínima cantidad de microorganismos para que la prueba sea positiva<span class="elsevierStyleSup">31</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Pueden producirse resultados falsos negativos si la cantidad de bacterias en el estómago es pequeña<span class="elsevierStyleSup">32</span>, por lo que la sensibilidad de esta técnica no es óptima. Por otra parte, la frecuencia de falsos positivos es muy reducida, debido a que el número de bacterias contaminantes en la cavidad gástrica suele ser bajo y a que ningún otro microorganismo produce tanta cantidad de ureasa<span class="elsevierStyleSup">7</span>. No obstante, podrían producirse resultados falsos positivos por la presencia de otros gérmenes productores de ureasa en la muestra, como <span class="elsevierStyleItalic">Proteus </span>o<span class="elsevierStyleItalic"> Yersinia</span><span class="elsevierStyleSup">33</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Destacan, entre sus ventajas, que es un método diagnóstico barato y rápido (es la única técnica que nos permite, con frecuencia, conocer en una hora si existe infección). Entre sus inconvenientes fundamentales está su menor sensibilidad si se utiliza para confirmar la desaparición de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> tras haber administrado un tratamiento erradicador<span class="elsevierStyleSup">31</span>, por lo que en esta situación no debe emplearse como único método diagnóstico<span class="elsevierStyleSup">13</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> En los pacientes con úlcera gástrica existe una elevada concordancia entre el test rápido de la ureasa y los métodos histológicos cuando las biopsias se obtienen del cuerpo gástrico; por el contrario, estos métodos no son equivalentes en las muestras del antro, en los que la prueba rápida de la ureasa es menos eficaz en el diagnóstico de infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span><span class="elsevierStyleSup">9,34</span>. Es probable que la mayor presencia en el antro de metaplasia intestinal o atrofia mucosa en los pacientes con úlcera gástrica explique estos resultados, de los que se deduce que en esta enfermedad deben obtenerse biopsias del cuerpo gástrico cuando empleemos el test rápido de la ureasa, o tomarse además muestras para su estudio histológico<span class="elsevierStyleSup">9,34</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Técnicas moleculares</span></p><p class="elsevierStylePara"> La aplicación de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR), capaz de detectar pequeñas cantidades de ADN, ha supuesto un importante avance en el diagnóstico de la infección, alcanzando una elevada sensibilidad y especificidad<span class="elsevierStyleSup">35,36</span>. Estas técnicas también han permitido detectar la presencia de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en saliva y heces de pacientes con gastritis<span class="elsevierStyleSup">37,38</span>. La PCR permite diferenciar entre recrudescencias y verdaderas reinfecciones tras la erradicación de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>, por medio de un estudio del ADN de las cepas del microorganismo. Tiene como inconvenientes la necesidad de disponer de equipamiento sofisticado y personal experimentado, el aún elevado precio de la técnica, su alta sensibilidad (que hace que se puedan detectar formas no viables del germen), el riesgo de contaminación de las muestras negativas con ADN amplificado y la obtención de falsos positivos, la elección empírica de los iniciadores y, sobre todo, la falta de normas sobre los métodos utilizados, lo que dificulta la comparación de los resultados obtenidos por diferentes equipos. Actualmente se reserva esta técnica para estudios de investigación, pero es probable que en un futuro inmediato su empleo sea más extendido. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">MÉTODOS INDIRECTOS</span></p><p class="elsevierStylePara"> Estos métodos utilizan las características del germen (como la capacidad de producir ureasa) y la respuesta inmunológica del huésped (detección de anticuerpos específicos) para establecer el diagnóstico de la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. Por no precisar la realización de una endoscopia, reciben también el nombre de métodos «no invasores». </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Prueba del aliento con urea marcada con <span class="elsevierStyleSup">13</span>C o <span class="elsevierStyleSup">14</span>C</span></p><p class="elsevierStylePara"> La prueba del aliento se basa en la capacidad de la ureasa producida por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> para hidrolizar una solución de urea previamente marcada, bien con <span class="elsevierStyleSup">13</span>C o con <span class="elsevierStyleSup">14</span>C. El CO<span class="elsevierStyleInf">2</span> marcado se absorbe, difunde a la sangre, es transportado a los pulmones y de allí excretado a través del aliento espirado. Tras un ayuno nocturno se recoge una muestra basal de aire espirado, después se administra una «comida de prueba» o más recientemente una solución de ácido cítrico<span class="elsevierStyleSup">39</span> con el fin de retrasar el vaciamiento gástrico, seguida de una solución acuosa con la urea marcada. Posteriormente, se recogen muestras de aire espirado tras determinados períodos de tiempo. Los resultados de cada muestra del aliento son emitidos en unidades delta, definidas como la expresión en tantos por mil de la relación de <span class="elsevierStyleSup">13</span>C o <span class="elsevierStyleSup">14</span>C/<span class="elsevierStyleSup">12</span>C de la prueba con respecto al estándar<span class="elsevierStyleSup">40</span>. Las concentraciones más altas se obtienen entre 20 y 60 min después de la administración de la urea marcada. Para reducir el coste y la duración de la prueba, actualmente existe un protocolo europeo que utiliza el método simplificado con <span class="elsevierStyleSup">13</span>C-urea con sólo dos muestras (basal y a los 30 min)<span class="elsevierStyleSup">41</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Se han propuesto numerosas modificaciones de la técnica de la prueba del aliento y se han publicado multitud de trabajos en relación con su metodología<span class="elsevierStyleSup">42,43</span>, a pesar de que en la actualidad no existe todavía una estandarización definitiva de esta prueba diagnóstica. Así, por ejemplo, aunque se recomienda que el paciente permanezca en ayunas durante las horas previas a la realización de la técnica, no está demostrado que esta actitud sea beneficiosa<span class="elsevierStyleSup">44</span>. La dosis precisa de urea tampoco está definitivamente establecida; así, mientras que las primeras pruebas se realizaron con 250 mg de urea o más, se ha ensayado con éxito la utilización de 100 mg<span class="elsevierStyleSup">45</span> y, más recientemente, 75 mg<span class="elsevierStyleSup">46</span>. Por otra parte, aunque habitualmente se administra, previamente a la ingestión de la urea, una solución de ácido cítrico, tampoco está suficientemente demostrada la superioridad de esta estrategia, ya que diversos autores han obtenido resultados prometedores al emplear protocolos sin «comida de prueba» alguna<span class="elsevierStyleSup">47-50</span>. Habitualmente, se obtienen muestras basales, además de las recogidas tras la ingestión de urea marcada, al haberse postulado que los valores basales pueden oscilar notablemente entre la población; sin embargo, la utilidad de esta actitud tampoco ha sido adecuadamente validada, y algunos estudios sugieren que sería suficiente la obtención de muestras tras la ingestión de urea<span class="elsevierStyleSup">51-53</span>. Por último, la elección precisa del punto de corte representa también un aspecto debatido; así, aunque habitualmente se localiza en 5 unidades delta en el caso de utilizar urea marcada con <span class="elsevierStyleSup">13</span>C, algunos autores han sugerido que los valores situados entre 3 y 5 deben interpretarse con prudencia y confirmarse con otros métodos diagnósticos, lo que concuerda con el hallazgo descrito de que, entre los pacientes con éxito erradicador, el valor de la prueba del aliento tras el tratamiento es mayor en aquellos que sufrirán una recurrencia de la infección<span class="elsevierStyleSup">54-56</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Las mayores ventajas que presenta la utilización de <span class="elsevierStyleSup">13</span>C es que se trata de un isótopo natural estable y no radiactivo, por lo que se puede repetir la prueba tantas veces como sea necesario, incluso en niños y en mujeres embarazadas. El principal inconveniente es que para la lectura del aire espirado se necesita un espectrómetro de masas, lo que supone una elevada inversión inicial<span class="elsevierStyleSup">57</span>. Sin embargo, dado que el isótopo no es radiactivo, si se dispone de un solo espectrómetro para varios centros hospitalarios se pueden enviar las muestras al centro de referencia, abaratándose así la técnica considerablemente. </p><p class="elsevierStylePara"> El <span class="elsevierStyleSup">14</span>C tiene la ventaja frente al <span class="elsevierStyleSup">13</span>C de que los hospitales normalmente tienen el escintillógrafo necesario para realizar la lectura en el aire espirado. Además, la urea marcada con <span class="elsevierStyleSup">14</span>C es más barata. Sin embargo, aunque la dosis de radiación administrada al paciente es baja, es necesaria la licencia para su manejo, precisa un almacenamiento adecuado y no puede realizarse en niños ni en mujeres embarazadas<span class="elsevierStyleSup">58</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Los estudios encaminados a utilizar la prueba del aliento como test cuantitativo no han tenido, hasta el momento, el éxito esperado, aunque algunos autores describen una correlación entre el resultado global de la prueba del aliento (número de unidades delta) con la intensidad de la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> o de la gastritis histológica<span class="elsevierStyleSup">59</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> A diferencia de los métodos diagnósticos basados en el análisis de las muestras obtenidas por biopsia gástrica, y por tanto sujetos a la distribución heterogénea de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en la cavidad gástrica, la prueba del aliento valora la totalidad de la mucosa, con el consiguiente incremento en su sensibilidad; además, resulta una técnica muy específica<span class="elsevierStyleSup">40,45,46,48</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> El empleo de tratamientos con antibióticos, bismuto o inhibidores de la bomba de protones en los días previos a la realización de la prueba es una causa demostrada de resultados falsos negativos<span class="elsevierStyleSup">60</span>. Por ello, se recomienda que pase al menos un mes desde la finalización del tratamiento antibiótico hasta la realización de la prueba<span class="elsevierStyleSup">9</span>, y al menos 14 días desde que concluya la administración de inhibidores de la bomba de protones<span class="elsevierStyleSup">9</span>. Pueden obtenerse también falsos negativos en pacientes sometidos a cirugía gástrica, probablemente como consecuencia de la rápida salida de la urea de la cavidad gástrica en estos pacientes por un vaciamiento gástrico acelerado<span class="elsevierStyleSup">61</span>, y en pacientes a los que se ha realizado una endoscopia en las 4 h anteriores, por el cambio de la presión parcial de oxígeno en la luz gástrica que puede disminuir la actividad ureásica de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. También pueden obtenerse resultados falsos positivos por la existencia en el estómago de otras bacterias productoras de ureasa, lo que puede ocurrir en pacientes con aclorhidria<span class="elsevierStyleSup">62</span>, como consecuencia de la gastritis atrófica o por la toma de inhibidores de la secreción gástrica. </p><p class="elsevierStylePara"> La prueba del aliento diagnostica infección activa y no infección pasada, como puede ocurrir en el caso de la serología. Confirma precozmente la desaparición de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> tras el tratamiento<span class="elsevierStyleSup">63</span>, a diferencia de las técnicas serológicas, que, como veremos, precisan un período prolongado de tiempo para objetivar el efecto de la erradicación. Por todo lo anterior, la prueba del aliento es considerada actualmente como la técnica de elección para confirmar la erradicación de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>, lo que deberá comprobarse al menos 4 semanas después de haber finalizado el tratamiento<span class="elsevierStyleSup">9-14</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Serología</span></p><p class="elsevierStylePara"> Las pruebas serológicas para el diagnóstico de la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> se basan en estudiar la presencia de anticuerpos específicos frente a antígenos de este microorganismo que aparecen como consecuencia de la respuesta inmunitaria, tanto local como sistémica, que se produce tras la infección. Por ello, estas técnicas indican únicamente una exposición previa al microorganismo, pero no discriminan entre personas con infección activa y enfermedad e individuos sanos previamente expuestos a la infección. </p><p class="elsevierStylePara"> Se han estudiado estos anticuerpos específicos utilizando diferentes antígenos de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> y distintas técnicas serológicas<span class="elsevierStyleSup">1,64,65</span>, cuya revisión escapa al propósito de este artículo. Mencionar únicamente que entre las técnicas serológicas ensayadas para detectar <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> destacan dos: el inmunoblot y la técnica de enzimoinmunoensayo (ELISA). El inmunoblot es la mejor técnica para identificar y caracterizar bioquímicamente las preparaciones antigénicas y sus variaciones<span class="elsevierStyleSup">66</span>, pero se trata de una prueba más laboriosa. Por su parte, el ELISA dispone de las siguientes ventajas: permite obtener resultados cuantitativos, la técnica no es compleja y por tanto puede ser realizada por personal relativamente inexperto, se puede automatizar y puede utilizarse como método de cribado con un número limitado de diluciones séricas. En este sentido, las técnicas serológicas son muy útiles para estudios epidemiológicos a gran escala. Los inconvenientes del ELISA serían la difícil selección del antígeno más adecuado para la prueba, la definición del «punto de corte»<span class="elsevierStyleSup">67</span> y la necesidad de su valoración en cada medio. En este sentido, se ha recomendado que toda técnica serológica sea validada localmente antes de proceder a su uso rutinario<span class="elsevierStyleSup">9,11</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Si bien la gran mayoría de los estudios serológicos detectan anticuerpos del tipo IgG (dado que ésta es la principal respuesta sistémica inmunológica frente a <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>), en ocasiones se observan enfermos con infección demostrada por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> que presentan títulos no diagnósticos de IgG y sí en cambio de IgA, aunque los valores de estos últimos suelen ser inferiores<span class="elsevierStyleSup">68,69</span>. Aunque algunos autores han obtenido una mayor sensibilidad diagnóstica mediante la determinación de IgG y de IgA<span class="elsevierStyleSup">68-72</span>, otros señalan que la investigación de la respuesta IgA no parece añadir mayor eficacia a determinación aislada de anticuerpos específicos de clase IgG<span class="elsevierStyleSup">73,74</span>. Por su parte, los anticuerpos de tipo IgM se detectan en menos del 10% de los pacientes infectados por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span><span class="elsevierStyleSup">75</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Una ventaja de las técnicas serológicas es que no se ven afectadas por el tratamiento reciente con antibióticos o inhibidores de la bomba de protones, que pueden «aclarar» temporalmente la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> e inducir un falso resultado negativo con otros métodos diagnósticos. </p><p class="elsevierStylePara"> Se ha evaluado la utilidad de la monitorización de los títulos de anticuerpos frente a <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> para confirmar la erradicación con el tratamiento. En la mayoría de los estudios realizados a largo plazo se observa durante las primeras semanas de seguimiento un descenso en los títulos de anticuerpos en un gran número de pacientes independientemente de cuál fuera el resultado final. A partir de entonces, los títulos se estabilizan o aumentan de nuevo en el grupo de pacientes en los que no se ha logrado la erradicación y disminuyen en aquellos en los que se ha alcanzado el éxito terapéutico. El problema fundamental lo constituye la prolongada latencia existente entre la desaparición de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> y el descenso definitivo de los títulos de anticuerpos; así, dicho descenso se objetiva generalmente a partir del sexto mes de seguimiento<span class="elsevierStyleSup">76-79</span>, lo que limita considerablemente la utilidad de esta técnica para confirmar la erradicación. </p><p class="elsevierStylePara"> Recientemente han aparecido los denominados métodos de serología «rápida», que utilizan sangre capilar en lugar de suero, obtenida mediante punción digital. Aunque, evidentemente, estos métodos gozan de una mayor rapidez y facilidad de empleo, en muchos estudios se han descrito valores subóptimos de sensibilidad y, sobre todo, de especificidad<span class="elsevierStyleSup">80-83</span>. Por todo ello, en la actualidad no debería recomendarse el uso generalizado de dichas serologías «rápidas», conclusión a la que se ha llegado tanto en reuniones de consenso nacionales<span class="elsevierStyleSup">9 </span>como internacionales<span class="elsevierStyleSup">10</span>. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Detección de antígenos de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en heces</span></p><p class="elsevierStylePara"> La reciente detección de antígenos de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> en heces plantea una nueva alternativa diagnóstica de la infección. Esta técnica se ha asociado con una elevada sensibilidad y especificidad, no sólo en el diagnóstico inicial de la infección, sino también en la confirmación de la erradicación después del tratamiento<span class="elsevierStyleSup">84-86</span>, aunque no todos los estudios obtienen resultados óptimos. Su sencillez, rapidez y economía hacen de esta técnica una prometedora alternativa para el diagnóstico «no invasor» de la infección. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">EMPLEO DE LOS MÉTODOS DIAGNÓSTICOS EN DIFERENTES SITUACIONES CLÍNICAS</span></p><p class="elsevierStylePara"> A continuación se enumeran diferentes situaciones encontradas en la práctica clínica, y se propone la actitud diagnóstica más adecuada para cada caso. </p><p class="elsevierStylePara"> Ante un paciente con <span class="elsevierStyleItalic">síntomas dispépticos</span> caben fundamentalmente dos opciones: si se opta por la alternativa «clásica», que consiste en la realización de una endoscopia inicialmente, se deben utilizar los métodos diagnósticos basados en la biopsia, fundamentalmente el test rápido de la ureasa y/o la histología. Sin embargo, otra alternativa propuesta más recientemente, denominada <span class="elsevierStyleItalic">test and treat</span> (diagnosticar la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> y tratarla), se basa en el empleo inicial de una prueba indirecta (serología o prueba del aliento)<span class="elsevierStyleSup">87</span>. Así, se ha sugerido que el tratamiento erradicador de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> podría ser una alternativa válida ante un paciente dispéptico joven y sin signos de «alarma» en el que se ha demostrado la infección<span class="elsevierStyleSup">10</span>. No obstante, esta recomendación debería interpretarse con cautela, pues la relación coste-beneficio de la mencionada estrategia diagnóstico-terapéutica no es constante, sino que depende de diversas variables (p. ej., la prevalencia de la infección o el precio de la endoscopia) que difieren según el medio en que se aplique<span class="elsevierStyleSup">87</span>. Por otra parte, no debemos olvidar que los «modelos de análisis de decisión», en los que se basa fundamentalmente esta recomendación, no deben sustituir a los estudios prospectivos<span class="elsevierStyleSup">87</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Cuando se trata de un enfermo previamente diagnosticado de <span class="elsevierStyleItalic">úlcera duodenal</span> en el que se desconoce si está infectado por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> (ya sea porque el diagnóstico inicial fuera realizado por radiología o porque no se obtuvieran biopsias en la endoscopia), sería suficiente la confirmación de la infección mediante una técnica indirecta (prueba del aliento o serología validada) para posteriormente administrar tratamiento erradicador<span class="elsevierStyleSup">9</span>. No obstante, en el caso de la úlcera duodenal, si se excluye a los pacientes con ingestión de antiinflamatorios no esteroideos y tratamiento reciente con antibióticos o inhibidores de la bomba de protones, la prevalencia de infección es prácticamente del 100%<span class="elsevierStyleSup">88-90</span>, por lo que se ha sugerido que estaría justificado el tratamiento erradicador empírico sin la confirmación previa de la infección<span class="elsevierStyleSup">91</span>, aunque este punto continúa siendo debatido<span class="elsevierStyleSup">9,12</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Ante un enfermo con úlcera duodenal y <span class="elsevierStyleItalic">negatividad </span>de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> por un método diagnóstico basado en la endoscopia (p.ej., histología o test rápido de la ureasa), se debería emplear una técnica diagnóstica indirecta (fundamentalmente una prueba del aliento) para confirmar el mencionado resultado, ya que probablemente se trate de un falso negativo<span class="elsevierStyleSup">9</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Cuando un paciente <span class="elsevierStyleItalic">rechaza la endoscopia</span> o existe <span class="elsevierStyleItalic">contraindicación</span> para la obtención de biopsias (por alteraciones de la coagulación, tratamiento con anticoagulantes, etc.), se deberán emplear, obviamente, los métodos diagnósticos indirectos (serología o prueba del aliento). </p><p class="elsevierStylePara"> Ante una úlcera complicada con <span class="elsevierStyleItalic">hemorragia digestiva</span> el diagnóstico puede realizarse de modo similar a como se haría en la úlcera no complicada, esto es, basado en las biopsias gástricas<span class="elsevierStyleSup">9</span>. No obstante, y puesto que se ha demostrado que estas técnicas (fundamentalmente el test rápido de la ureasa) pueden ser responsables de un elevado número de falsos negativos en los pacientes con sangrado activo<span class="elsevierStyleSup">92</span>, en caso de no detectarse la infección debería confirmarse el resultado con otros métodos indirectos, como la prueba del aliento o la serología<span class="elsevierStyleSup">9,12</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Para <span class="elsevierStyleItalic">confirmar la erradicación</span> de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> tras el tratamiento, la prueba que se vaya a emplear dependerá de la enfermedad de base. Así, en la úlcera duodenal no complicada o en la dispepsia (en caso de que se decida administrar tratamiento en ella) la prueba del aliento es el método diagnóstico de elección<span class="elsevierStyleSup">9,10,14</span>. Sin embargo, en el caso de la úlcera duodenal complicada con hemorragia digestiva, la úlcera gástrica y el linfoma MALT (tejido linfoide asociado a mucosas) se debe realizar una endoscopia y se emplearán, por tanto, los métodos diagnósticos basados en la biopsia<span class="elsevierStyleSup">9-11,14</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> En conexión con el punto anterior, cabría plantearse la siguiente pregunta: <span class="elsevierStyleItalic">¿debe confirmarse el éxito erradicador en todos los casos?</span> Algunos autores han sugerido que sería razonable no confirmar la erradicación en la úlcera duodenal no complicada y en el paciente dispéptico en el que se resuelven los síntomas<span class="elsevierStyleSup">10,11,14</span>. No obstante, se pueden esgrimir diversos argumentos que aconsejan la confirmación rutinaria del éxito erradicador<span class="elsevierStyleSup">9</span>: no comprobar la erradicación sería aceptable únicamente cuando dispongamos de tratamientos con una eficacia cercana al 100%, pues si la probabilidad de éxito es menor, como ocurre actualmente, deberíamos plantear un segundo intento erradicador; los pacientes ulcerosos en los que no se erradica la infección tienen un riesgo considerable de sufrir una complicación (como una hemorragia digestiva); la ausencia de clínica no siempre indica que se ha alcanzado la erradicación, pues es frecuente que el paciente permanezca asintomático a pesar de que persista la infección; confirmar la erradicación constituye la única alternativa para verificar si una terapia erradicadora es eficaz en nuestro medio; sólo si confirmamos la erradicación seremos capaces de detectar si <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> está desarrollando resistencias frente a los antibióticos empleados, con la consiguiente disminución de su eficacia; y, por último, la comprobación de la erradicación es sencilla, pues es suficiente la realización de una prueba del aliento, no siendo necesaria la práctica de una endoscopia. </p><p class="elsevierStylePara"> En el extremo opuesto, las circunstancias en las que siempre <span class="elsevierStyleItalic">deberíamos comprobar la erradicación</span> son: úlceras complicadas (puesto que si no se logra la erradicación habría que administrar un tratamiento de mantenimiento con antisecretores), úlcera gástrica (ya que se deberá realizar una endoscopia de control para confirmar la cicatrización y descartar un cáncer gástrico, momento en que se comprobará la erradicación), linfoma MALT, cuando se ha administrado un tratamiento erradicador poco eficaz o cuando el paciente no ha cumplido bien el tratamiento (puesto que existe una elevada probabilidad de fracaso terapéutico), o cuando la cepa de <span class="elsevierStyleItalic">H</span>. <span class="elsevierStyleItalic">pylori</span> (previamente al tratamiento) sea resistente a los antibióticos<span class="elsevierStyleSup">9-11,14</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Ante un enfermo con úlcera duodenal que <span class="elsevierStyleItalic">continúa con síntomas</span> o comienza de nuevo con ellos un tiempo después de haber confirmado la erradicación de <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> la prueba del aliento sería el método diagnóstico inicial; si es positiva no sería preciso realizar una endoscopia, sino sencillamente habría que administrar un nuevo tratamiento erradicador. </p><p class="elsevierStylePara"> Cuando se pretende realizar un <span class="elsevierStyleItalic">estudio epidemiológico, </span>dado que no es concebible realizar de una forma rutinaria estudios endoscópicos a individuos sanos, son preferibles los métodos indirectos, es decir, la prueba del aliento y, especialmente, las técnicas serológicas. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">CONCLUSION</span></p><p class="elsevierStylePara"> La infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span> tiene una prevalencia muy elevada en la población general, mientras que las indicaciones de tratamiento erradicador, si bien todavía no están definidas con precisión, son mucho más limitadas. De aquí se deriva la consecuencia lógica de investigar si existe infección únicamente en aquellos pacientes en los que, en caso de confirmarse, pensemos administrar tratamiento erradicador. En la actualidad disponemos de un nutrido arsenal diagnóstico dirigido a identificar la infección por <span class="elsevierStyleItalic">H. pylori</span>. Es precisamente por esta profusión de técnicas por lo que debemos conocer con precisión las ventajas e inconvenientes de cada una de ellas, así como su indicación en cada una de las diferentes situaciones clínicas. Sólo así podremos evaluar críticamente los diversos métodos diagnósticos y optimizar su uso en nuestros pacientes concretos. </p>" "tienePdf" => false "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:1 [ "bibliografiaReferencia" => array:92 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib1" "etiqueta" => "1" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "referenciaCompleta" => "Diagnóstico de la infección por Helicobacter pylori. En: Boixeda D, Gisbert JP, Martín de Argila C, editores. Helicobacter pylori: ¿dónde está el límite? Barcelona: Prous Science, 1996; 93-114." 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2018 Mayo | 257 | 0 | 257 |
2018 Abril | 125 | 0 | 125 |
2018 Marzo | 86 | 0 | 86 |
2018 Febrero | 63 | 0 | 63 |
2018 Enero | 50 | 0 | 50 |
2017 Diciembre | 45 | 0 | 45 |
2017 Noviembre | 92 | 1 | 93 |
2017 Octubre | 76 | 0 | 76 |
2017 Septiembre | 45 | 0 | 45 |
2017 Agosto | 39 | 0 | 39 |
2017 Julio | 54 | 0 | 54 |
2017 Junio | 66 | 17 | 83 |
2017 Mayo | 110 | 6 | 116 |
2017 Abril | 67 | 12 | 79 |
2017 Marzo | 63 | 0 | 63 |
2017 Febrero | 170 | 0 | 170 |
2017 Enero | 63 | 0 | 63 |
2016 Diciembre | 61 | 2 | 63 |
2016 Noviembre | 86 | 1 | 87 |
2016 Octubre | 78 | 1 | 79 |
2016 Septiembre | 105 | 0 | 105 |
2016 Agosto | 70 | 1 | 71 |
2016 Julio | 43 | 1 | 44 |
2016 Junio | 56 | 2 | 58 |
2016 Mayo | 67 | 2 | 69 |
2016 Abril | 38 | 1 | 39 |
2016 Marzo | 30 | 0 | 30 |
2016 Febrero | 46 | 2 | 48 |
2016 Enero | 37 | 0 | 37 |
2015 Diciembre | 30 | 0 | 30 |
2015 Noviembre | 49 | 0 | 49 |
2015 Octubre | 71 | 0 | 71 |
2015 Septiembre | 49 | 0 | 49 |
2015 Agosto | 78 | 0 | 78 |
2015 Julio | 65 | 0 | 65 |
2015 Junio | 32 | 0 | 32 |
2015 Mayo | 51 | 1 | 52 |
2015 Abril | 36 | 0 | 36 |
2015 Marzo | 41 | 0 | 41 |
2015 Febrero | 33 | 0 | 33 |
2015 Enero | 14 | 0 | 14 |
2014 Diciembre | 14 | 0 | 14 |
2014 Noviembre | 15 | 0 | 15 |
2014 Octubre | 18 | 0 | 18 |
2014 Septiembre | 11 | 0 | 11 |
2014 Agosto | 9 | 0 | 9 |
2014 Julio | 17 | 0 | 17 |
2014 Junio | 13 | 0 | 13 |
2014 Mayo | 8 | 0 | 8 |
2014 Abril | 9 | 0 | 9 |
2014 Marzo | 12 | 0 | 12 |
2014 Febrero | 8 | 0 | 8 |
2014 Enero | 18 | 0 | 18 |
2013 Diciembre | 35 | 0 | 35 |
2013 Noviembre | 26 | 0 | 26 |
2013 Octubre | 58 | 0 | 58 |
2013 Septiembre | 41 | 0 | 41 |
2013 Agosto | 52 | 0 | 52 |
2013 Julio | 11 | 0 | 11 |
2000 Marzo | 6229 | 0 | 6229 |