El género Actinobaculum fue descrito por primera vez en 19971 e incluye las especies A. suis, A. schaalii, A. urinale y A. massiliae, que se han relacionado con infecciones del tracto urinario2 en pacientes ancianos y en pacientes con patología del tracto urinario3. Se han descrito casos de osteomielitis, de endocarditis, de infección de piel y tejidos blandos y de sepsis de origen urinario4–6. A. schaalii es un pequeño cocobacilo grampositivo (fig. 1A) anaerobio facultativo. Su morfología es ligeramente curvada, a veces ramificada y no forma esporas. Es una bacteria inmóvil, que no hemoliza el agar sangre, y el resultado de la prueba de la catalasa es negativo. Su parecido macroscópico con microorganismos del género Streptococcus y rasgos microscópicos del género Corynebacterium pueden confundirlo con flora saprofita mucocutánea (fig. 1B,C). Revisamos los aislados de A. schaalii en el período de 2007 a 2011 en el Hospital General Universitario de Elche (Alicante, España) (tabla 1).

Figura 1.

A) Tinción de Gram. B) Cultivo en agar sangre. C) Cultivo en agar chocolate.

(0.36MB).

En los hemocultivos (BACTEC 924 Beckton-Dickinson) se obtuvo crecimiento en las botellas anaerobias (primera y segunda extracción) tras 48h de incubación. En los subcultivos de las muestras sanguíneas crecieron pequeñas colonias grisáceas, viéndose el crecimiento favorecido por la anaerobiosis. En los urocultivos creció un microorganismo que macroscópicamente parecía un estreptococo. Con el fin de averiguar el perfil bioquímico se realizaron diversas galerías API Coryne y ANA 20A (BioMérieux) siguiendo las instrucciones del fabricante. Las lecturas automáticas del API Coryne dieron códigos numéricos diversos (p.ej., 0010000, 6010621) que se correspondían con Actinomyces turicensis y Gardnerella vaginalis. La lectura automática del API 20A dio diversos códigos numéricos, entre otros: 44500012 (Actinomyces meyery), 44504322 (Bifidobacterium spp.), etc. Las características fenotípicas comunes de las cepas se describen en la tabla 2. La identificación definitiva se obtuvo mediante secuenciación del gen rRNA 16S tanto en el Centro de Referencia (Centro Nacional de Bacteriología de Majadahonda) como en nuestro laboratorio, realizándose la secuenciación de un fragmento de 1.400 pares de bases del gen de la fracción 16s del rRNA (primers: 27F- AGAGTTTGATCMTGGCTCAG; 1492R- TACGGYTACCTTGTTACGACTT). Las secuencias generadas se compararon con las existentes en la base de datos de GenBank, obteniéndose una similitud del 99% con otras secuencias de A. schaalii (Y12329).

Se estudió la sensibilidad, entre otros a penicilina, clindamicina y metronidazol, mediante E-TEST (Biodisk, Suecia) en anaerobiosis. Se estudió la sensibilidad a penicilina, ampicilina, cefotaxima, clindamicina y ciprofloxacino de las cepas aisladas en urocultivos. Todas los aislados fueron sensibles a penicilina (MIC<0,023μg/ml). Las cepas aisladas en hemocultivos fueron resistentes a metronidazol (MIC>256μg/ml). Ocho de los aislados resultaron sensibles a la clindamicina (MIC<0,016μg/ml) y 3 resistentes (MIC>256μg/Ml) según los criterios CLSI (M11-A7 CLSI). Tres de las 5 cepas estudiadas frente a ciprofloxacino fueron resistentes (criterios CLSI: Streptococcus spp.).

A. schaalii produce infecciones comunitarias urinarias y de otras localizaciones principalmente en pacientes mayores y con enfermedades genitourinarias de base. La prueba de nitratos negativa y las condiciones en las que se incuban habitualmente los urocultivos pueden infradiagnosticar una infección urinaria por este microorganismo. El uso de la biología molecular (secuenciación o la PCR a tiempo real)7–10 es esencial para la identificación. En las infecciones producidas por A. schaalii se debe considerar la posibilidad de fallos terapéuticos con tratamientos empíricos con quinolonas o cotrimoxazol8–10, prefiriendo el uso de betalactámicos.