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Comportamento de osteoblastos sobre implantes" "tieneTextoCompleto" => true "paginas" => array:1 [ 0 => array:2 [ "paginaInicial" => "e21" "paginaFinal" => "e22" ] ] "autores" => array:1 [ 0 => array:4 [ "autoresLista" => "Pedro Mesquita, António Felino, Helena Fernandes, Américo Afonso" "autores" => array:4 [ 0 => array:3 [ "nombre" => "Pedro" "apellidos" => "Mesquita" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "etiqueta" => "<span class="elsevierStyleSup">¿</span>" "identificador" => "cor0005" ] ] ] 1 => array:2 [ "nombre" => "António" "apellidos" => "Felino" ] 2 => array:2 [ "nombre" => "Helena" "apellidos" => "Fernandes" ] 3 => array:2 [ "nombre" => "Américo" "apellidos" => "Afonso" ] ] "afiliaciones" => array:1 [ 0 => array:2 [ "entidad" => "Faculdade de Medicina Dentária da Universidade do Porto (FMDUP)" "identificador" => "aff0005" ] ] "correspondencia" => array:1 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "cor0005" "etiqueta" => "⁎" "correspondencia" => "Autor para correspondência." ] ] ] ] "textoCompleto" => "<span class="elsevierStyleSections"><p id="par0005" class="elsevierStylePara elsevierViewall"><span class="elsevierStyleBold">Objetivos:</span> As características da superfície dos implantes são importantes pois é o local onde ocorrem as reações biológicas que conduzem, quando as condições são favoráveis, à osteointegração. Fatores como a macro e microtopografia são importantes pois podem condicionar a osteogénese. No presente trabalho procurou-se estudar o comportamento biológico de células osteoblásticas in vitro quando na presença de diferentes superfícies de implantes.</p><p id="par0010" class="elsevierStylePara elsevierViewall"><span class="elsevierStyleBold">Materiais e métodos:</span> Foram utilizados 264 implantes em titânio comercialmente puro divididos em seis grupos. Os dois primeiros formados por implantes maquinados, o 3°, 4° e 5° por implantes jateados e submetidos a ataque ácido, segundo diferentes protocolos, e o 6° por implantes revestidos a spray de plasma de titânio. Os implantes dos seis grupos foram semeados com células de medula óssea humana e cultivados por um período de 33 dias, tendo sido avaliado o comportamento celular ao longo desse tempo através de métodos qualitativos e quantitativos.</p><p id="par0015" class="elsevierStylePara elsevierViewall"><span class="elsevierStyleBold">Resultados:</span> A adesão celular foi avaliada durante as primeiras 24 horas de cultura, com recurso à Microscopia Electrónica de Varrimento (MEV). As células osteobláticas demonstraram capacidade para aderir em todas as superfícies analisadas não se observando, para estes tempos, diferenças significativas nas diferentes superfícies. A morfologia celular e a organização do citoesqueleto foi observada com Microscopia Confocal de Varrimento Laser após coloração imunocitoquímica para o citoesqueleto de F-actina e núcleo. Aos 21 dias é evidente o aumento significativo do número de células em todas as superfícies. As imagens obtidas através de MEV mostram diferenças significativas relativamente ao padrão de crescimento celular para as várias superfícies. As diferenças observadas na atividade da fosfatase alcalina, ao dia 21, para os implantes dos grupos 3, 5 e 6, comparativamente com os valores obtidos para os implantes maquinados do grupo 1 foram estatisticamente significativas. Na fase da cultura analisada (dia 21) não se observaram diferenças significativas na expressão génica dos marcadores osteoblásticos analisados (colagénio tipo <span class="elsevierStyleSmallCaps">I</span>, fosfatase alcalina, osteoprotegerina e BMP-2).</p><p id="par0020" class="elsevierStylePara elsevierViewall"><span class="elsevierStyleBold">Conclusões:</span> A adesão celular à superfície dos implantes e a sua proliferação ocorreu em todos os grupos, independentemente do tipo de tratamento de superfície observando-se, no entanto, diferenças na resposta biológica causadas pelas diferentes características das seis superfícies.</p></span>" "pdfFichero" => "main.pdf" "tienePdf" => true ] "idiomaDefecto" => "pt" "url" => "/16462890/00000054000000S1/v1_201403010116/S1646289013002331/v1_201403010116/pt/main.assets" "Apartado" => array:4 [ "identificador" => "22941" "tipo" => "SECCION" "pt" => array:2 [ "titulo" => "XXXIII CONGRESSO ANUAL DA SPEMD" "idiomaDefecto" => true ] "idiomaDefecto" => "pt" ] "PDF" => "https://static.elsevier.es/multimedia/16462890/00000054000000S1/v1_201403010116/S1646289013002331/v1_201403010116/pt/main.pdf?idApp=UINPBA00004N&text.app=https://www.elsevier.es/" "EPUB" => "https://multimedia.elsevier.es/PublicationsMultimediaV1/item/epub/S1646289013002331?idApp=UINPBA00004N" ]
año/Mes | Html | Total | |
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2024 Octubre | 18 | 0 | 18 |
2024 Septiembre | 16 | 9 | 25 |
2024 Agosto | 25 | 9 | 34 |
2024 Julio | 27 | 2 | 29 |
2024 Junio | 23 | 1 | 24 |
2024 Mayo | 18 | 2 | 20 |
2024 Abril | 11 | 2 | 13 |
2024 Marzo | 22 | 2 | 24 |
2024 Febrero | 34 | 10 | 44 |
2024 Enero | 12 | 2 | 14 |
2023 Diciembre | 15 | 5 | 20 |
2023 Noviembre | 14 | 5 | 19 |
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2023 Febrero | 4 | 3 | 7 |
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2022 Octubre | 7 | 4 | 11 |
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2022 Agosto | 9 | 7 | 16 |
2022 Julio | 10 | 10 | 20 |
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2022 Enero | 11 | 5 | 16 |
2021 Diciembre | 15 | 8 | 23 |
2021 Noviembre | 6 | 6 | 12 |
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2021 Julio | 6 | 9 | 15 |
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2020 Abril | 11 | 3 | 14 |
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2018 Julio | 16 | 6 | 22 |
2018 Junio | 17 | 5 | 22 |
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2017 Noviembre | 13 | 13 | 26 |
2017 Octubre | 10 | 10 | 20 |
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2015 Enero | 16 | 8 | 24 |
2014 Diciembre | 22 | 8 | 30 |
2014 Noviembre | 18 | 2 | 20 |
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2014 Septiembre | 9 | 17 | 26 |
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2014 Julio | 6 | 9 | 15 |
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2014 Marzo | 14 | 8 | 22 |