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Vol. 83. Núm. 4.
Páginas 303-312 (octubre - diciembre 2013)
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Vol. 83. Núm. 4.
Páginas 303-312 (octubre - diciembre 2013)
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Importancia médica del glucocáliz endotelial
Medical significance of endothelial glycocalyx
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Alberto C. Frati-Munari
Autor para correspondencia
afratim@hotmail.com

Puente de Piedra 150-1-929. Toriello Guerra, Tlalpan 14050. México DF, México. Teléfono: +5666 5847.
Departamento de Medicina Interna, Hospital Médica Sur, México DF, México
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Tabla 1. Funciones del glucocáliz endotelial
Tabla 2. Factores que dañan el glucocáliz endotelial
Tabla 3. Consecuencias del deterioro del glucocáliz endotelial
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Resumen

El glucocáliz endotelial es una capa constituida por glucosaminoglicanos, proteoglicanos y glucoproteínas que cubre al endotelio vascular en su cara luminal. Tiene múltiples funciones: transducción de las fuerzas mecánicas de tensión, regulación de la permeabilidad vascular de líquidos y moléculas y de la activación de la coagulación y de la fibrinólisis, protege de la adhesión de leucocitos y plaquetas al endotelio. En general, el glucocáliz protege a la pared vascular de ataques patogénicos. La lesión del glucocáliz puede ocurrir por fuerzas de tensión anormales, especies reactivas de oxígeno, hipernatremia, hiperglucemia, hipercolesterolemia y moléculas inflamatorias, lo que causa disfunción endotelial, incremento en la permeabilidad, filtración de lipoproteínas al subendotelio, activación de la coagulación e incremento de la adherencia de leucocitos y plaquetas al endotelio vascular. La participación del deterioro del glucocáliz endotelial puede ser importante en la fisiopatología de diversas enfermedades vasculares.

Palabras clave:
Glucocáliz
Disfunción endotelial
Enfermedad venosa crónica
Aterosclerosis
Sulodexida
México
Abstract

Endothelial glycocalyx is a layer composed by glycosaminoglycans, proteoglycans and glycoproteins attached to the vascular endothelial luminal surface. It has several physiological roles: shear stress mechanotransduction to the endothelial cells, regulation of fluids and macromolecules vascular permeability, of coagulation cascade activation and fibrinolysis, and protects the endothelium from platelets and leukocytes adhesion. In general, glycocalyx protects vascular wall against pathogenic insults. The glycocalyx may be damaged by abnormal shear stress, reactive oxygen species, hypernatremia, hyperglycemia, hypercholesterolemia and inflammatory molecules, resulting in endothelial dysfunction, enhanced vascular permeability, lipoproteins leakage to subendothelial space, activation of plasma coagulation, and increased adherence of platelets and leukocytes to the endothelial cells. Shredding of glycocalyx appears as an important initial step in the pathophysiology of vascular diseases.

Keywords:
Glycocalyx
Endothelial dysfunction
Chronic venous disease
Atherosclerosis
Sulodexide
Mexico
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Introducción

Desde hace algunos siglos, con el microscopio de luz y posteriormente con el electrónico se ha observado que las células están limitadas externamente por la membrana celular. En las últimas décadas, en algunas células animales y en bacterias se ha observado que este límite externo está cubierto por una tenue capa formada principalmente por mucopolisacáridos, y que se ha denominado glucocáliz o glucocálix.

La razón por la que no se había observado antes es que tanto la preparación para la microscopia de luz, como la fijación habitual del tejido para su observación con microscopio electrónico, a base de glutaraldehido y tetraóxido de osmio permiten preservar las proteínas y los lípidos, mientras que los hidratos de carbono desaparecen. En cambio, con otros métodos de fijación, por ejemplo con rojo de rutenio que estabiliza los grupos aniónicos, también se preservan los hidratos de carbono y se pone de manifiesto el glucocáliz1.

Se ha demostrado la existencia del glucocáliz en bacterias1, en plaquetas2,3 y en diversas células, entre otras en la mucosa intestinal4, en células linfoblastoides5, leucocitos6 y endotelio vascular.

El endotelio vascular

El endotelio vascular es una capa unicelular que recubre en su cara luminal a todas las venas, arterias y capilares, donde por si solo forma su pared. Actualmente sabemos que el endotelio, además de ser una barrera física entre la sangre y la capa media de los vasos o los tejidos en el caso de los capilares, tiene un papel fundamental en el mantenimiento de la homeostasis vascular. Las células endoteliales producen óxido nítrico (NO) el cual mantiene el tono basal de vasodilatación de arterias y venas, y la prostaciclina (PGI2) que también es vasodilatadora; el equilibrio se mantiene con la producción de sustancias vasoconstrictoras como la endotelina, el tromboxano A2 y el anión superóxido. Estas células producen sustancias antitrombóticas que se encuentran en la superficie (en el glucocáliz) como el heparán sulfato y el proteoglicano trombomodulina, que regulan la fibrinólisis ya que producen activador tisular del plasminógeno y su inhibidor (PAI-1), regulan la proliferación celular a través de la producción de sustancias estimulantes del crecimiento (factor de crecimiento derivado de plaquetas, factor de crecimiento básico derivado de fibroblastos y endotelina-1) y de inhibidores del crecimiento (factor de crecimiento transformador ß, NO y PGI2)7,8. El NO es un radical libre oxidante (especie reactiva de oxígeno [ROS]) pero también regula a la alza o a la baja la producción de ROS mitocondrial en las células endoteliales9.

Aunque existen diversos métodos para valorar la función endotelial, la mayoría se basan en la medición de la respuesta vasodilatadora mediada por endotelio (básicamente mediada por NO), ya sea por la aplicación de acetilcolina o más comúnmente por el estímulo en la secreción de NO debido a un incremento de las fuerzas de tensión. Esta es la prueba de vasodilatación mediada por flujo de la arteria braquial, en la que se aplica una presión ligeramente superior a la sistólica con el manguillo de esfigmomanómetro y se mide la dilatación arterial que ocurre al liberar la presión del manguillo. Esta prueba es reproducible y se ha demostrado que un resultado anormal se relaciona con incremento en el riesgo de eventos cardiovasculares agudos y se asocia claramente con la presencia de los distintos factores de riesgo cardiovascular10–12.

La pérdida de las propiedades fisiológicas del endotelio o disfunción endotelial, como la producida por aumento o distorsión de la presión tangencial de la sangre sobre las paredes vasculares (fuerzas de tensión o shear stress), reduce la capacidad vasodilatadora dependiente del endotelio y también afecta otras funciones endoteliales como las que regulan la coagulación y la capacidad antioxidante13. Se observa disfunción endotelial sistémica en: tabaquismo, dislipidemia (elevación de colesterol-LDL, lipoproteínas de baja densidad oxidadas [LDL0x]), hiperglucemia, prediabetes y síndrome metabólico, diabetes mellitus, hipertensión arterial, hiperhomocisteinemia, así como en sujetos con enfermedad coronaria, enfermedad vascular cerebral, insuficiencia cardíaca y disfunción eréctil14–16. También se ha demostrado disfunción endotelial en enfermedades inflamatorias sistémicas como el lupus eritematoso y la enfermedad indiferenciada del tejido conectivo17.

La relación de la disfunción endotelial con la enfermedad coronaria ha sido ampliamente estudiada. Se ha demostrado que el grado de disfunción guarda una relación significativa con la extensión del daño aterosclerótico, tanto con el número de arterias coronarias afectadas como con el grado de obstrucción arterial18. El incremento del estrés oxidativo parece ser importante en la génesis de la disfunción endotelial que ocurre en la diabetes mellitus19 y en las enfermedades cardiovasculares20. La opinión generalizada es que los distintos factores de riesgo cardiovascular causan disfunción endotelial y que esta precede a la aterosclerosis y es importante en su patogénesis21.

La disfunción endotelial también aparece como un mecanismo potencial en las complicaciones microvasculares de la diabetes mellitus, especialmente en la nefropatía diabética19,22.

Además, el endotelio vascular desempeña un papel importante en la enfermedad venosa crónica. Por ejemplo, se ha demostrado en individuos normales y en pacientes con enfermedad venosa crónica que el incremento en la presión venosa causa un aumento significativo de diversas moléculas de origen endotelial mediadoras de la inflamación como: molécula de adhesión leucocito-endotelio-1, molécula de adhesión intercelular-1 y molécula de adhesión de células vasculares-1 entre otras. La magnitud del incremento en la concentración de estas moléculas, y del factor de von Willebrand, es mayor en pacientes con várices y alteraciones cutáneas que en aquellos con un padecimiento más leve (várices sin alteraciones cutáneas)23. Diversas evidencias llevan a la hipótesis de que las células endoteliales por medio de las moléculas de adhesión modulan la respuesta inflamatoria por medio del reclutamiento de leucocitos24.

Muchas de las alteraciones endoteliales inician con cambios en el glucocáliz.

El glucocáliz endotelialEstructura

El glucocáliz endotelial es una capa que recubre la cara luminal del endotelio de arterias, venas y capilares. Al microscopio electrónico puede observarse como un material amorfo o grumoso si se usa rojo de rutenio, o formando una malla de finos filamentos si se usa azul alciano (fig. 1A y B). Su espesor es variable dependiendo del método y del vaso estudiado, mide de 20 a 500nm, o aun mayor25–28. En las células endoteliales en cultivo el glucocáliz aparece desde la primera semana y mide 0.3-1μm29.

Figura 1.

Representación del glucocáliz endotelial como se ve al microscopio electrónico con rojo de rutenio (A) y con azul alciano (B), sus dimensiones son variables según el vaso estudiado. (Dibujos basados en micrografías de Governeur et al.38 y de Becker et al.33).

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El espesor del glucocáliz también puede estimarse in vivo. En virtud de que in vivo el glucocáliz no se puede ver, la medición es indirecta y se basa en el hecho de que esta capa limita la proximidad de los eritrocitos y de macromoléculas a las células endoteliales. La observación del espacio que está entre el endotelio y la columna de eritrocitos equivale a la amplitud del glucocáliz. Con este principio, en humanos se ha medido en los vasos sublinguales y retinianos30. Con el mismo fundamento, se ha estimado in vivo el volumen sistémico del glucocáliz, substrayendo del volumen intravascular total calculado con infusión de dextrano 40 que penetra el glucocáliz, el volumen circulante calculado con eritrocitos marcados o con infusión de dextrano 70 que no penetra el glucocáliz30.

El glucocáliz está formado por 3 tipos de componentes: proteoglicanos, glucosaminoglicanos (GAG) y glucoproteínas (fig. 2).

Figura 2.

Esquema de la composición del glucocáliz. Del interior de las células endoteliales sale el cor proteínico de los proteoglicanos, a manera de columna vertebral a la que están unidos glucosaminoglicanos (GAG) sulfatados; el hialuronano es un GAG no sulfatado que no forma parte de proteoglicanos; nótese que las glucoproteínas son mucho más cortas que los proteoglicanos y que poseen azúcares ramificados (los GAG no son ramificados). Existen moléculas adheridas a los GAG como la superóxido-dismutasa extracelular (SODec), la lipoproteinlipasa (LPL) y la antitrombina iii (AT-III). Modificada de Reitsma et al.27.

(0.26MB).

Los proteoglicanos están formados por una cadena proteínica a la que están unidas múltiples moléculas de GAG. Los proteoglicanos más abundantes en el glucocáliz son sindecanos-1,-2 y -4, glipicano-1 y perlecano, se producen en las células endoteliales y uno de sus extremos se encuentra en el citoplasma de estas células, para anclar y sostener el glucocáliz. Los GAG que forman parte de los proteoglicanos son principalmente heparán sulfato, condroitín sulfato, dermatán sulfato y escasa proporción de queratán sulfato. El hialuronano (ácido hialurónico) es un GAG no sulfatado que no forma parte de proteoglicanos y que se encuentra de manera abundante en la porción más superficial del glucocáliz. Los GAG se producen en las células endoteliales y tal vez también provengan del plasma circulante. Las glucoproteínas del glucocáliz están formadas por una proteína corta y cadenas laterales de azúcares ramificados. También se anclan en el citoplasma de las células endoteliales que las producen. Estas glucoproteínas pueden ser: a) moléculas de adhesión endotelial que reclutan células circulantes y son importantes en la señalización celular, como la familia de las selectinas (selectina-E, selectina-P), integrinas diversas, moléculas de adhesión intercelular-1 y -2, moléculas de adhesión de célula vascular-1, moléculas de adhesión de célula endotelial/plaquetas-1; b) complejos funcionales que participan en la regulación de la coagulación, fibrinólisis y hemostasia, como el complejo de glucoproteína ib-ix-v que se une al factor de von Willebrand27.

Además, en la porción más luminal el glucocáliz está incrustado en proteínas, como la albúmina, y probablemente GAG y proteoglicanos provenientes del plasma que en conjunto con el glucocáliz forman la «capa de superficie endotelial». Múltiples evidencias sugieren que esta capa es una estructura dinámica cuyas propiedades dependen no solamente de los constituyentes del glucocáliz, sino también de sus interacciones con el microambiente local31–33.

Funciones y sus alteraciones

Se han identificado varias funciones del glucocáliz endotelial (tabla 1).

Tabla 1.

Funciones del glucocáliz endotelial

Protector, sensor y transductor de las fuerzas mecánicas del torrente sanguíneoRegulación de la permeabilidad de agua y solutosRegulación de la filtración glomerularRegulación de la permeabilidad de macromoléculas (proteínas)Regulación del hematocrito capilar y del flujo sanguíneo capilarBarrera a la filtración de lipoproteínasPrevención de adhesión de plaquetas al endotelioPrevención de adhesión de leucocitos al endotelioRegulación local de la coagulación (prevención de trombosis, activación de fibrinólisis) 
En la transducción de fuerzas mecánicas

Múltiples evidencias señalan que el glucocáliz es un mediador entre las fuerzas mecánicas tangenciales del torrente sanguíneo (fuerzas de tensión) y las células endoteliales. La aplicación de fuerza de tensión, estática o pulsátil, a las células endoteliales en cultivo produce un aumento en la concentración de NO que se previene con el tratamiento previo con enzimas que degradan el glucocáliz (heparinasa, hialuronidasa)34,35. Diversos modelos teóricos predicen que cuando la capa de superficie endotelial está intacta, la fuerza de tensión de los fluidos que actúan en la superficie se disipa en esta capa, de modo que la membrana plasmática de las células endoteliales no la recibe en forma directa. La fuerza de tensión probablemente cause una torsión o desplazamiento del cor proteínico relativamente rígido de los proteoglicanos que se transmite al citoesqueleto cortical de actina de las células endoteliales, lo que iniciaría la señalización para la síntesis de NO y el tráfico de moléculas. Parte de estos cambios intracelulares se han demostrado con microscopia confocal32,36.

La fuerza de tensión normal es útil para mantener sano el glucocáliz. En cultivo de células endoteliales se ha observado que la exposición a una fuerza de tensión normal incrementa el contenido de hialuronano y GAG sulfatados del glucocáliz, orienta la alineación de las células en dirección al flujo y suprime la proliferación37–39.

En la regulación de la permeabilidad

Con la aplicación de enzimas que degradan el glucocáliz y con dextranos de distintos pesos moleculares se ha observado que esta estructura es mediadora de los cambios de permeabilidad del agua inducidos por fuerza de tensión, protege del edema (fig. 3) y regula la filtración de proteínas40–43. La carga electronegativa de los GAG influye en estas propiedades44.

Figura 3.

El glucocáliz endotelial protege del edema miocárdico. La infusión de hialuronidasa reduce significativamente el grosor del glucocáliz endotelial de los capilares miocárdicos de la rata, mientras que aumenta el grosor del espacio pericapilar por el edema. Se muestran los valores de las medianas (p<0.001 vs. el control sin tratamiento). Con datos de van den Bergh et al.26.

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Recientemente se demostró que la sobrecarga de sodio reduce el grosor del glucocáliz, permitiendo que este penetre a las células endoteliales, lo que resultaría en incremento de la rigidez vascular y en la disminución de la liberación de NO45. Se ha postulado que, a través de este mecanismo, el glucocáliz dañado y la sobrecarga frecuente de sal podrían participar en la génesis de la hipertensión arterial46.

En los capilares fenestrados del intestino delgado, estómago y riñones de la rata no solo se demostró la presencia del glucocáliz, sino también la existencia en los poros de tapones filamentosos, que fueron denominados fascinae fenestrae47. Los mismos autores sugirieron que estos tapones en las fenestras son el sitio primario de la barrera de filtración glomerular48. El glucocáliz es la primera de las 4 capas (glucocáliz, endotelio fenestrado, membrana basal glomerular, membrana hendida de podocitos) que intervienen en la selectividad de la filtración glomerular49.

En la regulación del flujo sanguíneo capilar

El glucocáliz interviene en la regulación de la concentración de los eritrocitos en la red capilar, como se demostró in vivo con la infusión de heparinasa que fue seguida por elevación sostenida del hematocrito capilar y una disociación de la típica relación entre la respuesta vasomotora y la distribución de eritrocitos en los capilares50. Experimentos en ratones mostraron que la hiperglucemia aguda, además de incrementar la permeabilidad del glucocáliz endotelial, también causa una rápida disminución de la densidad de capilares con flujo de glóbulos rojos51.

En la adhesión de los leucocitos e inflamación

El glucocáliz también sirve para prevenir la adhesión de leucocitos al endotelio. La degradación del glucocáliz con heparitinasa incrementa la adhesión leucocitaria, como dependiente de dosis (fig. 4)52,53. Por otra parte, el hialuronano del glucocáliz es importante en la activación de los neutrófilos, interactuando con el contrarreceptor CD44 de los neutrófilos en la adhesión estimulada por el factor de necrosis tumoral–α54.

Figura 4.

La aplicación de heparitinasa, que degrada el heparán sulfato del glucocáliz, causa un incremento dependiente de dosis de la adhesión leucocitaria a las paredes venulares cremasterianas del ratón. Se señalan los datos a los 60min de la aplicación de la enzima. Con datos de Constantinescu et al.53.

(0.1MB).

Las citosinas proinflamatorias pueden lesionar el glucocáliz e incrementar la permeabilidad endotelial a las macromoléculas. En este campo, Henry y Duling55 en el músculo cremasteriano del hámster demostraron que la infusión de factor de necrosis tumoral-α reduce el espesor de la capa de superficie endotelial de capilares, arteriolas y vénulas y aumenta la penetración de dextrano 70, dextrano 580, albúmina e inmunoglobulina G e incrementa la adhesión de leucocitos al endotelio. Se ha postulado que el adelgazamiento del glucocáliz expone moléculas de adhesión en la superficie de las células endoteliales (o en las glucoproteínas de la profundidad del glucocáliz) y que el efector de esta degradación es la activación de proteasas, una de las cuales podría ser una metaloproteinasa de la matriz (MMP), ya que las MMP se almacenan en vesículas en las células endoteliales, tienen alta afinidad por heparán sulfato y dividen el sindecano-1. Además, podrían participar otras proteasas y liasas en la degradación de los GAG del glucocáliz. Esta propuesta se apoya en la activación de proenzimas de MMP en la superficie de las células endoteliales, concomitante con la caída del glucocáliz y con el incremento de la adhesión de leucocitos al endotelio56. Este aspecto es muy importante, ya que es el paso inicial para la diapédesis y la inflamación vascular.

Una serie de investigaciones acerca de la influencia de la inflamación en el glucocáliz, con la aplicación del potente agente quimiotàctico N-formilmetionil-leucil-fenilalanina, demuestran que este agente causa: a) una notable pérdida de elementos del glucocáliz con disminución importante del espesor de la capa de superficie endotelial en las arteriolas, capilares y vénulas; b) incremento de la adhesión leucocitaria en las vénulas poscapilares; c) disminución del flujo sanguíneo en arteriolas, capilares y vénulas debido a obstrucción de las vénulas por leucocitos adheridos a las células endoteliales; d) incremento de la resistencia al flujo en los capilares por disminución de la deformabilidad de los leucocitos activados que es parcialmente compensada cuando la dimensión del glucocáliz ha disminuido lo suficiente para ampliar el diámetro capilar. Estos cambios están mediados por proteína G y por MMP; la administración de doxiciclina estabiliza el glucocáliz por inhibición de la activación de las MMP. La reperfusión postisquemia también disminuye la dimensión del glucocáliz e incrementa la adhesión leucocitaria57–59.

En la isquemia

En la isquemia–reperfusión aparece un rápido aumento de la penetración de dextrano-70 al glucocáliz que depende de ROS, ya que mejora con la adición de superóxido-dismutasa/catalasa exógenas60. El efecto del estrés oxidativo parece ocurrir directamente en los constituyentes del glucocáliz, ya que la exposición in vitro de los GAG a ROS derivadas de leucocitos, como el anión superóxido y los radicales hidroxilo, resulta en fragmentación de los GAG con pérdida de algunos de sus componentes61.

En cobayos y humanos se demostró que la isquemia causa desgaste del glucocáliz, en los primeros a través de disminución de su grosor observado con microscopio electrónico y en los segundos por un incremento considerable de las concentraciones de sindecano-1 y heparán sulfato en la sangre arterial de pacientes bajo bypass cardiopulmonar durante cirugía de aorta, durante el paro cardíaco, en la reperfusión y en la isquemia regional cardiopulmonar e infrarrenal62. En el infarto miocárdico por isquemia–reperfusión experimental participa la proteína C reactiva y la activación del complemento (complejo de ataque a la membrana [MAC]). Se sabe que la proteína C reactiva se une a las células apoptóticas, favoreciendo su fagocitosis y activa al complemento aunque atenúa la formación de MAC protegiendo a las células sanas63. La administración intravenosa de sulodexida (compuesta de GAG), que restaura el glucocáliz, reduce la isquemia, el área de infarto, el depósito de proteína C reactiva y de MAC en el miocardio afectado. Es interesante que la elevación de los niveles plasmáticos de sC5b-9 (MAC) en diabéticos con infarto del miocardio parece tener implicaciones pronósticas64–66.

En la coagulación

Además del incremento en la adherencia de la plaquetas al endotelio al adelgazar el glucocáliz, el heparán sulfato del glucocáliz (y también de la matriz extracelular) activa la antitrombina e inhibe el factor Xa ejerciendo una acción anticoagulante local. Desde hace años se conoce que el dermatán sulfato ejerce una actividad antitrombótica, ya que interactúa con el cofactor ii (HC II) de la heparina, llevando a la inactivación enzimática de la trombina sin una modificación importante del tiempo de sangrado67–69. Los estudios en animales y humanos sugieren que en respuesta a la lesión endotelial el HC II se une específicamente al dermatán sulfato de la pared vascular inhibiendo la trombosis70,71.

En los lípidos y la aterosclerosis

La lipoproteinlipasa (LPL) es la enzima limitante en la hidrólisis de los triglicéridos en las VLDL y en los quilomicrones y, por lo tanto, controla la liberación de ácidos grasos a los tejidos. El sitio primario de la acción de la LPL es la cara luminal de la célula endotelial (glucocáliz) en donde está anclada en su forma dimérica al heparán sulfato, probablemente del sindecano-1. La forma dimérica es más activa que la monomérica, que es la forma circulante. La LPL se sintetiza en miocitos y adipocitos y llega al glucocáliz a través de las células endoteliales72.

Un elegante experimento en ratones mostró que la degradación del glucocáliz del endotelio capilar por heparitinasa o por hiperlipidemia inducida por dieta va seguida de filtración de lipoproteínas al espacio subendotelial73. La infusión intravenosa de LDL0x en el hámster produce una disminución aguda del 60% del espesor del glucocáliz y un aumento simultáneo de las plaquetas adheridas al endotelio. Ambos cambios se bloquean con la administración concomitante de superóxido-dismutasa y de catalasa74. La infusión de LDLox también incrementa la adhesión de leucocitos al endotelio vascular, lo que puede inhibirse parcialmente con la administración de GAG (heparán sulfato y heparina). Los pacientes con hipercolesterolemia heterocigota tienen disminución del volumen sistémico del glucocáliz75.

Se ha investigado la relación entre el glucocáliz y la aterosclerosis en ratones. Al respecto se ha observado que: a) las regiones más susceptibles de aterosclerosis, como la bifurcación de la carótida, tienen un glucocáliz más delgado que las regiones menos atacadas por aterosclerosis, como la carótida común; b) estas regiones también tienen una mayor relación íntima/media a expensas de engrosamiento de la íntima (de la matriz subendotelial); y c) la dieta aterogénica en ratones Apo E3 resultó en hipercolesterolemia, así como en menor grosor del glucocáliz y mayor engrosamiento de la íntima que en los ratones controles76. Este estudio apoya la influencia de las turbulencias de las fuerzas de tensión y la hipercolesterolemia en el glucocáliz y en el grosor de la íntima, y sugiere el papel protector del glucocáliz en la aterosclerosis.

En la hiperglucemia y la diabetes mellitus

En cerdos se demostró que la hiperglucemia inducida por una infusión de glucosa atenúa la vasodilatación arterial reactiva, respuesta similar a la obtenida con hialuronidasal77. La hiperglucemia aguda y la hiperglucemia crónica incrementan la permeabilidad del glucocáliz endotelial78. Además, en voluntarios sanos se demostró que la hiperglucemia aguda obtenida con una pinza hiperglucémica normoinsulinémica fue capaz de reducir el volumen sistémico del glucocáliz, de causar disfunción endotelial y activar la coagulación sanguínea (fig. 5A y B). Estos cambios pudieron prevenirse con la infusión de un potente antioxidante, la N-acetilcisteína, apoyando el papel del estrés oxidativo en el deterioro del glucocáliz y de la disfunción endotelial79. La presencia de marcadores de un estado protrombótico, como elevación de fibrinógeno, dímero-D y PAI-1 se encuentra incluso en personas con intolerancia a la glucosa80.

Figura 5.

A) La hiperglucemia aguda en individuos sanos degrada el glucocáliz endotelial, ya que reduce su volumen sistémico e incrementa la concentración de hialuronano circulante, y causa disfunción endotelial medida por dilatación mediada por flujo. B) En el mismo experimento se demostró activación de la coagulación, ya que incrementaron los niveles circulantes de fragmentos 1+2 de protrombina y de dímero D. La degradación del glucocáliz se previno con el antioxidante N-acetilcisteína (NAC). Con datos de Nieuwdorp et al.79.

(0.3MB).

Además, en pacientes con diabetes mellitus tipo 1 se observó un menor volumen sistémico del glucocáliz con relación a los individuos sanos; este volumen fue aun menor en los diabéticos con microalbuminuria, apoyando la relación entre la diabetes y el deterioro del glucocáliz y entre este y la presencia de microalbuminuria (fig. 6)81. Las dimensiones del glucocáliz también están significativamente disminuidas en individuos con diabetes tipo 2 (fig. 7)82.

Figura 6.

El volumen sistémico del glucocáliz está disminuido en los diabéticos tipo 1 y lo está aun más en los diabéticos con microalbuminuria. Se ilustran los valores medios. Con datos de Nieuwdorp et al.81.

(0.1MB).
Figura 7.

La dimensión del glucocáliz observada en los vasos sublinguales de individuos con diabetes mellitus tipo 2 es menor que en los controles sanos. Después de 2 meses de tratamiento con sulodexida (SDX) por vía oral las dimensiones del glucocáliz se incrementaron hasta alcanzar valores normales. Se ilustran los valores medios. Con datos de Broekhuizen et al.82.

(0.1MB).

En las tablas 2 y 3 se resumen las causas de deterioro del glucocáliz y las consecuencias de este daño.

Tabla 2.

Factores que dañan el glucocáliz endotelial

Trastornos de las fuerzas mecánicas de tensiónEnzimas: heparinasa, hialuronidasa, neuraminidasa, metaloproteinasas de la matriz y otras proteasasEspecies reactivas de oxígenoHipernatremiaDieta aterogénica (hipercolesterolemia)Lipoproteínas de baja densidad oxidadasHiperglucemia aguda, hiperglucemia crónica, diabetes mellitus tipo 1 y tipo 2Factor de necrosis tumoral-α 
Tabla 3.

Consecuencias del deterioro del glucocáliz endotelial

Edema pericapilarIncremento de la permeabilidad a macromoléculasIncremento del hematocrito capilarDisfunción endotelialDisminución de la liberación de óxido nítrico en respuesta a las fuerzas de tensiónFiltración de lipoproteínas (LDL) al espacio subendotelialAdhesión de leucocitos al endotelioAdhesión de plaquetas al endotelioActivación de la coagulación plasmática 
Conclusiones

La tenue estructura del endotelio que lo cubre en su cara luminal, el glucocáliz, tiene un importante papel en la fisiología vascular, ya que regula la permeabilidad de líquidos y moléculas y la distribución del flujo sanguíneo en la microcirculación. Además, participa con las células endoteliales en la coordinación de la vasomoción, previene la formación local de coágulos a través de acciones anticoagulantes y profibrinolíticas locales, evita la adhesión de las plaquetas y leucocitos a la pared vascular y en general defiende a la pared vascular en contra de diversas condiciones nocivas.

La degradación del glucocáliz endotelial puede darse por estímulos físicos como la presión sobre la pared vascular (shear stress) o químicos, como la hiperglucemia, la hipernatremia, la hipercolesterolemia, el estrés oxidativo y ciertas moléculas inflamatorias. El daño del glucocáliz origina una alteración de sus funciones, incluyendo incremento de la permeabilidad a líquidos, solutos y lipoproteínas, así como aumento de la adherencia leucocitaria a la pared vascular y disfunción endotelial. Los factores que deterioran el glucocáliz frecuentemente existen en enfermedades micro y macrovasculares (diabetes mellitus, aterosclerosis), lo que lleva a pensar que esta estructura podría ser importante en la fisiopatología de estos padecimientos. Así, aparece la posibilidad de terapéuticas dirigidas a proteger o restaurar el glucocáliz endotelial como un tratamiento diferente en estas enfermedades.

Bibliografía
[1]
K. Echandi, F. Hernández.
Comparación de dos métodos de fijación para la estabilización de glicocalix bacteriano.
Rev Biomed, 9 (1998),
[2]
O. Behnke.
Electron microscopical observations on the surface coating of human platelets.
J Ultrastruct Res, 24 (1968), pp. 51-69
[3]
J.R. O’Brien.
Some effects of mucopolysaccharide stains on platelet aggregation.
J Clin Path, 23 (1970), pp. 784-788
[4]
A. Boom, W.T.h. Daems, J.H. Luft.
On the fixation of intestinal absorptive cells.
J Ultrastruct Res, 48 (1974), pp. 350-360
[5]
C. Rosenfeld, U. Paintrand, C. Choquet, et al.
Cyclic variations in the ruthenium red stained coat cells from a synchronized human lymphoblastoid line.
Exp Cell Res, 79 (1973), pp. 465-468
[6]
A.V. Maksimenko, A.D. Turashev.
No-reflow phenomenon and endothelial glycocalyx of microcirculation.
Biochem Res Int, 2012 (2012), pp. 859231
[7]
J. Loscalzo.
Nitric oxide and vascular disease.
N Engl J Med, 333 (1995), pp. 251-253
[8]
J. Deanfield, A. Donald, C. Ferri, et al.
Endothelial function and dysfunction. Part I. Methodological issues for assessment in the different vascular beds: A statement by Working Group on Endothelin and Endothelial Factors of the European Society of Hypertension.
J Hyperten, 23 (2005), pp. 7-17
[9]
D.X. Zhang, D.D. Gutterman.
Mitochondrial reactive species-mediated signaling in endothelial cells.
Am J Physiol Heart CircPhysiol, 292 (2006), pp. H2023-H2031
[10]
J. VerdejoParís.
Función endotelial.
Arch Cardiol Mex, 76 (2006), pp. S164-S169
[11]
L. Ghiadoni, D. Versari, C. Giannarelli, et al.
Non-invasive diagnostic tools for investigating endothelial dysfunction.
Curr Pharm Des, 14 (2008), pp. 3715-3722
[12]
D.S. Celermajer, K.E. Sorensen, C. Bull, et al.
Endothelium-dependent dilation in the systemic arteries of asymptomatic subjects relates to coronary risk factors and their interaction.
J Am Coll Cardiol, 15 (1994), pp. 1468-1474
[13]
P. Vanhoutte.
Ageing and endothelial dysfunction.
Eur Heart J, 4 (2004), pp. A8-A17
[14]
A.M. Seller, V. Schachinger, J. Minners.
Long-term cigarette smoking impairs endothelium-dependent coronary artery vasodilator function.
Circulation, 92 (1995), pp. 1094-1110
[15]
A.A. Quyyumi, D. Mulcahy, N.P. Andrews, et al.
Coronary vascular nitric oxide activity in hypertension and hypercholesterolemia. Comparison of acetylcholine and substance P.
Circulation, 95 (1997), pp. 104-110
[16]
H. Brunner, J.R. Cockcroft, J. Deanfield, et al.
Endothelial function and dysfunction. Part II. Association with cardiovascular risk factors and diseases. A statement by Working Group on Endothelin and Endothelial Factors of the European Society of Hypertension.
J Hypertens, 23 (2005), pp. 233-246
[17]
C. Tani, M. Mosca, A. d’Ascanio, et al.
[Chronic inflammation and endothelial dysfunction: An analysis of a cohort of patients with SLE and UCTD].
Reumatismo, 58 (2006), pp. 212-218
[18]
T. Neunteufl, R. Katzenschlager, A. Hassan, et al.
Systemic endothelial dysfunction is related to the extent and severity of coronary artery disease.
Atherosclerosis, 129 (1997), pp. 111-118
[19]
M. Brownlee.
The pathobiology of diabetic complications. A unifying mechanism.
Diabetes, 54 (2005), pp. 1615-1625
[20]
Y. Higashi, K. Noma, M. Yoshizumi, et al.
Endothelial function and oxidative stress in cardiovascular diseases.
Circ J, 73 (2009), pp. 411-418
[21]
A. Avogaro, G.P. Fadini, A. Gallo, et al.
Endothelial dysfunction in type 2 diabetes mellitus.
Nutr Metab Cardiovasc Dis, 16 (2006), pp. S39-S45
[22]
J.C. Kavalliede, L. Gnudi.
Endothelial factors and diabetic nephropathy.
Diabetes Care, 34 (2011), pp. S291-S296
[23]
M. Saharay, D.A. Shields, S.N. Georgiannos, et al.
Endothelial activation in patients with chronic venous disease.
Eur J Vasc Endovasc Surg, 15 (1998), pp. 342-349
[24]
G.B. Nash, C.D. Buckley, G.E. Rainger.
The local physicochemical environment conditions the proinflammatory response of endothelial cells and thus modulates leukocyte recruitment.
FEBS Letters, 569 (2004), pp. 13-17
[25]
J.H. Luft.
Fine structure of capillary and endocapillary layer as revealed by ruthenium red.
Fed Proc, 25 (1966), pp. 1773-1783
[26]
B.M. Van den Bergh, H. Vink, J.A. Spaan.
The endothelial glycocalyx protects against myocardial edema.
[27]
S. Reitsma, D.W. Slaaf, H. Vink, et al.
The endothelial glycocalyx: Composition, functions, and visualization.
Pflugers Arch, 454 (2007), pp. 345-359
[28]
W.Y. Ben, B. Cai, M. Zeng, et al.
Quantification of the endothelial surface glycocalyx on rat and mouse blood vessel.
Microvasc Res, 83 (2012), pp. 337-346
[29]
K. Bai, W. Wang.
Spatio-temporal development of the endothelial glycocalyx layer and its mechanical property in vitro.
J Roy Soc Interface, (2012),
[30]
M. Nieuwdorp, M.C. Meuwese, H.L. Mooij, et al.
Measuring endothelial glycocalyx dimensions in humans: A potential novel tool to monitor vascular vulnerability.
J Appl Physiol, 104 (2008), pp. 845-852
[31]
M. Nieuwdorp, M.C. Meuwese, H. Vink, et al.
The endothelial glycocalyx: A potential barrier between health and vascular disease.
Curr Opin Lipidol, 16 (2005), pp. 507-511
[32]
J.M. Tarbell, M.Y. Pahakis.
Mechanotransduction and glycocalyx.
J Intern Med, 259 (2006), pp. 339-350
[33]
B.F. Becker, D. Chappell, D. Bruegger, et al.
Therapeutic strategies targeting the endothelial glycocalyx: Acute deficits, but great potential.
Cardiovasc Res, 87 (2010), pp. 300-310
[34]
J.A. Florian, J.R. Kosky, K. Ainslie, et al.
Heparan sulfate proteoglycan is a mechanosensor on endotelial cells.
[35]
S. Mochizuki, H. Vink, O. Hiramatsu, et al.
Role of hyaluronic acid glycosaminoglycans in shear-induced endothelium-derived nitric oxide release.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 285 (2003), pp. H722-H726
[36]
M.M. Thi, J.M. Tarbell, S. Weinbaum, et al.
The role of the glycocalyx in reorganization of the actin cytoskeleton under fluid shear stress: A bumper-car model.
PNAS, 101 (2004), pp. 16483-16488
[37]
T. Arisaka, M. Mitsumata, M. Kawasumi, et al.
Effects of shear stress on glycosaminoglycan syntesis in vascular endothelial cells.
Ann NY Acad Sci, 748 (1995), pp. 543-554
[38]
M. Governeur, B. van den Berg, M. Nieuwdorp, et al.
Vasculoprotective properties of the endothelial glycocalyx: Effects of fluid shear stress.
J Intern Med, 259 (2006), pp. 393-400
[39]
A.I. Barakat.
Dragging along: The glycocalyx and vascular endothelial cell mechanotransduction.
Circ Res, 102 (2008), pp. 747-748
[40]
S.V. Lopez-Quintero, R. Amaya, M. Pahakis, et al.
The endothelial glycocalyx mediates shear-induced changes in hydraulic conductivity.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 296 (2009), pp. H1451-H1456
[41]
P.M.A. Van Haaren, E. van Bavel, H. Vink, et al.
Localization of the permeability barrier to solutes in isolated arteries by confocal microscopy.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 285 (2003), pp. H2848-H2856
[42]
H.H. Huxley, D.A. Williams.
Role of a glycocalyx on coronary arteriole permeability to proteins: Evidence from enzyme treatments.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 278 (2000), pp. H1177-H1185
[43]
M. Jacob, D. Bruegger, M. Rehm, et al.
The endothelial glycocalyx affords compatibility of Starling's principle and high cardiac interstitial albumin levels.
Cardiovasc Res, 73 (2007), pp. 575-586
[44]
P.M.A. Van Haaren, E. vanBavel, H. Vink, et al.
Charge modification of endothelial surface layer modulates the permeability barrier of isolated rat mesenteric small arteries.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 289 (2005), pp. H2503-H2507
[45]
H. Oberleithner, W. Peters, K. Kusche-Vihrog, et al.
Salt overload damages the glycocalyx sodium barrier of vascular endothelium.
Pflugers Arch, 462 (2011), pp. 519-528
[46]
K. Kusche-Vihrog, H. Oberleithner.
An emerging concept of vascular salt sensitivity.
F1000 Biol Rep, 4 (2012), pp. 20
[47]
J. Rostgaard, K. Qvortrup.
Electron microscopic demonstrations of filamentous molecular sieve plugs in capillary fenestrae.
Microvasc Res, 53 (1997), pp. 1-13
[48]
J. Rostgaard, K. Qvortrup.
Sieve plugs in fenestrae of glomerular capillaries-site of filtration barrier.
Cells Tissue Organs, 170 (2002), pp. 132-138
[49]
B. Haraldsson, J. Sörensson.
Why do not all have proteinuria? An update of our current understanding of glomerular barrier.
Physiology, 19 (2004), pp. 7-10
[50]
C. Desjardins, B.R. Duling.
Heparinase treatment suggests a role for the endothelial cell glycocalyx in regulation of capillary hematocrit.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 258 (1990), pp. H647-H654
[51]
C.J. Zuurbier, C. Demirci, A. Koeman, et al.
Short-term hyperglycemia increases endothelial glycocalyx permeability and acutely decreases lineal density of capillaries with flowing red blood cells.
J Appl Physiol, 99 (2005), pp. 1471-1476
[52]
A.W. Mulivor, H.H. Lipowsky.
Role of glycocalyx in leukocyte-endothelial cell adhesion.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 283 (2002), pp. H1282-H1291
[53]
A.A. Constantinescu, H. Vink, J.A.E. Spaan.
Endothelial cell glycocalyx modulates immobilization of leukocytes at the endothelial surface.
Arterioscler Thromb Vasc Biol, 23 (2003), pp. 1541-1547
[54]
L.M. Butler, G.E. Rainger, G.B. Nash.
A role for the endothelial glycosaminoglycan hyaluronan in neutrophil recruitment by endothelial cells cultured for prolonged periods.
Exp Cell Res, 315 (2009), pp. 3433-3441
[55]
C.B.S. Henry, B.R. Duling.
TNF-α increases entry of macromolecules into luminal endothelial cell glycocalyx.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 279 (2000), pp. H2815-H2823
[56]
H.H. Lipowsky.
Protease activity and the role of the endothelial glycocalyx in inflammation.
Drug Discov Today Dis Models, 8 (2011), pp. 57-62
[57]
A.W. Mulivor, H.H. Lipowsky.
Inflammation -and ischemia- induced shedding of venular glycocalyx.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 286 (2004), pp. H1672-H1680
[58]
A.W. Mulivor, H.H. Lipowsky.
Inhibition of glycan shedding and leukocyte- endothelial adhesion in postcapillary venules by suppression of matrix metalloprotease activity with doxycycline.
Microcirculation, 16 (2009), pp. 657-666
[59]
H.H. Lipowsky, L. Gao, A. Lescanic.
Shedding of the endothelial glycocalyx in arterioles, capillaries, and venules and its effect on capillary hemodynamics during inflammation.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 301 (2011), pp. H2235-H2245
[60]
I. Rubio-Gayosso, S.H. Platts, B.R. Duling.
Reactive oxygen species mediate modification of glycocalyx during ischemia-reperfusion injury.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 290 (2006), pp. H2247-H2256
[61]
R. Moseley, R.J. Waddington, G. Embery.
Degradation of glycosaminoglycans by reactive oxigen species derived from stimulated polymorfonucleal leukocytes.
Biochem Biophys Acta, 1362 (1997), pp. 221-231
[62]
M. Rehm, D. Bruegger, F. Christ, et al.
Shedding of the endothelial glycocalyx in patients undergoing major vascular surgery with global and regional ischemia.
Circulation, 116 (2007), pp. 1896-1906
[63]
D. Gershov, S. Kim, N. Brot, et al.
C-reactive protein bind to apotptotic cells, protect the cells from assembly of terminal complement components, and sustains an anti-inflammatory innate immune response: Implication for systemic autoimmunity.
J Exper Med, 192 (2000), pp. 1353-1363
[64]
T.D. Barret, J.K. Hennan, R.M. Marks, et al.
C-reactive-protein-associated increase in myocardial infarct size after ischemia/reperfusion.
J Pharmacol Exp Ther, 303 (2002), pp. 1007-1013
[65]
D.A. Lauver, E.A. Booth, A.J. White, et al.
Sulodexide attenuates myocardial ischemia/reperfusion injury and the deposition of C-reactive protein in areas of infarction without affecting hemostasis.
J Pharmacol Exp Ther, 312 (2005), pp. 794-800
[66]
L.G. Mellbin, M. Bjerre, S. Thiel, et al.
Complement activation and prognosis in patients with type 2 diabetes and myocardial infarction. A report from DIGAMI 2 trial.
Diabetes Care, 35 (2012), pp. 911-917
[67]
L. Iacoviello, M.C. D.Ádamo, K. Pawlak, et al.
Antithrombotic activity of dermatan sulphates, heparins and their combination in animal model of arterial thrombosis.
Thromb Haemost, 76 (1996), pp. 1102-1107
[68]
J.M. Trowbridge, R.L. Gallo.
Dermatan sulfate: New functions from an old glycosaminoglycan.
Glycobiology, 12 (2002), pp. 117R-125R
[69]
A.M. Tovar, D.A. de Mattos, M.P. Stelling, et al.
Dermatan sulfate is the predominant antithrombotic glycosaminoglycan in vessel walls: Implications for a posible physiological function of heparin cofactor II.
Biochem Biophys Acta, 15 (2005), pp. 45-53
[70]
L. He, T.K. Giri, C.P. Vicente, et al.
Vascular dermatan sulfate regulates the antithromboytic activity of heparin cofactor II.
Blood, 111 (2008), pp. 4118-4125
[71]
D.M. Tollefsen.
Heparin cofactor II modulates the response to vascular injury.
Arterioscler Thromb Vasc Biol, 27 (2007), pp. 54-460
[72]
R.D. Rosemberg, N.W. Shworak, J. Liu, et al.
Heparan sulfate proteoglycans of the cardiovascular system. Specific structures emerge but how is synthesis regulated?.
J Clin Invest, 100 (1997), pp. S67-S75
[73]
A.A. Constantinescu, J.A.E. Spaan, E.K. Arkenbout, et al.
Degradation of the endotelial glycocalyx is associated with chylomicron leakage in mouse cremaster muscle microcirculation.
Thromb Haemost, 105 (2011), pp. 790-801
[74]
H. Vink, A.A. Constantinescu, J.A.E. Spaan.
Oxidized lipoproteins degrade the endothelial surface layer. Implications for platelet-endothelial cell adhesion.
Circulation, 101 (2000), pp. 1500-1502
[75]
M.C. Meuwese, H.L. Mooij, M. Nieuwdorp, et al.
Partial recovery of the endothelial glycocalyx upon rosuvastatin therapy in patients with heterozygous familial hypercholesterolemia.
J Lipid Res, 50 (2009), pp. 148-153
[76]
B.M. Van den Berg, J.A.E. Spaan, T.M. Tolf, et al.
Atherogenic region and diet diminish glycocalyx dimension and increase intima-to-media ratios at murine carotid artery bifurcation.
Am J Physiol Heart Circ Physiol, 290 (2006), pp. H915-H920
[77]
R. Kelly, T. Ruane-O’Hora, M.I.M. Noble, et al.
Differential inhibition by hyperglycaemia of shear stress- but not acetylcholine-mediated dilatation in the artery of anaesthetized pig.
J Physiol, 573 (2006), pp. 133-145
[78]
C.J. Zuurbier, C. Demirci, A. Koeman, et al.
Short term hyperglycemia increases endothelial glycocalyx permeability and acutely decreases lineal density of capillaries with flowing red blood cells.
J Appl Physiol, 99 (2005), pp. 1471-1476
[79]
M. Nieuwdorp, T.W. van Haeften, M.C.L.G. Gouverneur, et al.
Loss of endotelial glycocalyx during acute hyperglycemia coincides with endothelial dysfunction and coagulation activation in vivo.
Diabetes, 55 (2006), pp. 480-486
[80]
H. Lucas-Luciardi, S.G. Berman, S. Chain, et al.
Determinación de marcadores séricos de trombosis e inflamación en sujetos con intolerancia a la glucosa: evidencia de un estado protrombótico.
Arch Cardiol Mex, 82 (2012), pp. 1-6
[81]
M. Nieuwdorp, H.L. Mooij, J. Kroon, et al.
Endothelial glycocalyx damage coincides with microalbuminuria in type 1 diabetes.
Diabetes, 55 (2006), pp. 1127-1132
[82]
L.N. Broekhuizen, B.A. Lemkes, H.L. Mooij, et al.
Effect of sulodexide on endothelial glycocalyx and vascular permeability in patients with type 2 diabetes mellitus.
Diabetologia, 53 (2010), pp. 2646-2655
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