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Vol. 25. Núm. 1.
Páginas 16-22 (enero 2007)
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Evaluación de una técnica de PCR cuantitativa para el diagnóstico clínico de la histoplasmosis importada
Assessment of a quantitative PCR method for clinical diagnosis of imported histoplasmosis
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María José Buitrago, Alicia Gómez-López, Araceli Monzón, Juan Luis Rodríguez-Tudela, Manuel Cuenca-Estrella
Autor para correspondencia
mcuenca-estrella@isciii.es

Correspondencia: Dr. M. Cuenca-Estrella. Servicio de Micología. Centro Nacional de Microbiología. Instituto de Salud Carlos III. Ctra. Majadahonda-Pozuelo, km 2. 28220 Majadahonda. Madrid. España.
Servicio de Micología. Centro Nacional de Microbiología. Instituto de Salud Carlos III. Madrid. España
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Objetivos

Valoración de la utilidad de una técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) cuantitativa en tiempo real (PCR-TR) para el diagnóstico de histoplasmosis en muestras clínicas.

Métodos

Para el diseño de los iniciadores y de las sondas se analizaron las secuencias de las regiones ITS (internal transcriber spacers) del ADN ribosómico de 20 cepas de Histoplasma capsulatum. Se empleó la tecnología LightCycler (Roche Applied Science) y la sonda fue diseñada mediante el sistema Fluoresce Resonance Energy Transfer (FRET). Se realizaron estudios de reproducibilidad, sensibilidad y especificidad. Además, se incluyó un sistema de control interno para reconocer falsos negativos por inhibición de la reacción de PCR. Tras ello, se testó la técnica en 22 muestras clínicas procedentes de 14 pacientes diagnosticados de histoplasmosis probada. Además se analizaron 30 muestras de control, procedentes de enfermos con otras micosis, de pacientes con neutropenia febril y de voluntarios sanos.

Resultados

El límite de detección de la técnica fue de 1 fg de ADN fúngico por μl de muestra. Así mismo fue reproducible y muy específica. La técnica fue positiva en 11 de los 14 enfermos (78,6%) y en 17 de las 22 muestras analizadas (77,3%). Por muestras, el 100% de las muestras respiratorias y de los aspirados de médula ósea fueron positivos, pero sólo el 70% de los sueros (p<0,01). La cantidad media de ADN detectado en suero fue de 23,1 fg/μl, mientras que en muestras respiratorias y aspirados medulares fue de 4,85 μ 103 fg/μl (p<0,01). La técnica de PCR-TR fue positiva en suero de 3 enfermos por el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH) positivos, en los que la detección de anticuerpos por inmunodifusión fue negativa. La especificidad fue del 100%, ya que ninguna de las muestras de control dio un resultado positivo.

Conclusión

Esta técnica de PCR-TR es un método sensible y específico para el diagnóstico rápido de histoplasmosis, sobre todo en muestras respiratorias y aspirados de médula ósea. La sensibilidad en suero es inferior, pero puede ser complementaria al cultivo y a la serología en enfermos VIH positivos.

Palabras clave:
Histoplasma capsulatum
Serología
VIH positivo
Diagnóstico molecular
Objective

Evaluation of the usefulness of a quantitative real-time polymerase chain reaction-based (RT-PCR) technique for clinical diagnosis of histoplasmosis.

Methods

Primers and probes were designed on the basis of sequences from the ITS regions of ribosomal DNA of 20 clinical strains of Histoplasma capsulatum. LightCycler procedures (Roche Applied Science) were used with probes marked by fluorescence resonance energy transfer (FRET). Reproducibility, sensitivity, and specificity were analyzed. In addition, an internal control was designed to identify false negative results by PCR inhibition. The RT-PCR assay was tested in 22 clinical samples from 14 patients with proven histoplasmosis. In addition, 30 samples from patients with febrile neutropenia or mycoses other than histoplasmosis, and from healthy volunteers were analyzed as controls.

Results

The limit of detection of the assay was 1 fg of genomic DNA per μl of sample. The PCR-based technique was reproducible and highly specific. Positive results were obtained in 11/14 (78.6%) patients and in 17/22 (77.3%) clinical samples. RT-PCR was positive in 100% of respiratory secretions and bone marrow samples, but only 70% of sera (p<0.01). Mean fungal DNA value was 23.1 fg/μl in serum and 4.85 μ 103 fg/μl in respiratory and bone marrow samples. RT-PCR results were positive in serum from three HIV patients for which antibody detection by immunodiffusion was negative. Specificity was 100%, since PCR results were negative for all the control samples.

Conclusion

Thes RT-PCR technique is a sensitive, specific method for early diagnosis of histoplasmosis, particularly when respiratory secretions or bone marrow samples are analyzed. The reliability is lower in serum, but it can be used as an additional, complementary technique to culture and serology in HIV patients.

Key words:
Histoplasma capsulatum
Serology
HIV+
Molecular diagnosis
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Bibliografía
[1.]
G.S. Deepe.
Histoplasma capsulatum.
Principles and Practice of Infectious Diseases, pp. 2718-2733
[2.]
L. Guelfand, P. Cahn.
Histoplasmosis.
Tratado SEIMC de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica, pp. 659-664
[3.]
A. Flor, D. Estivill, R. Pérez, J. Ordeig, F. Ramos, J. Soler-Bel, et al.
Histoplasmosis pulmonar aguda en un viajero español a Nicaragua: ejemplo de enfermedad importada.
Revista Iberoamericana de Micología, 20 (2003), pp. 24-28
[4.]
J. Gascón, J.M. Torres, P. Luburich, J.R. Ayuso, A. Xaubet, M. Corachán.
Imported histoplasmosis in Spain.
J Trav Med, 7 (2000), pp. 89-91
[5.]
J. Gascón, J.M. Torres, M. Jiménez, T. Mejías, F. Triviño, F. Gobbi, et al.
Histoplasmosis infection in Spanish travelers to Latin America.
European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 24 (2005), pp. 839-841
[6.]
E. García-Vázquez, M. Velasco, J. Gascón, M. Corachán, T. Mejías, M. Torres-Rodríguez.
Infección por Histoplasma capsulatum en un grupo de cooperantes en Guatemala.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 23 (2005), pp. 274-276
[7.]
N. Benito, E. García-Vázquez, A. Blanco, M. De Górgolas, I. Gadea, P. Escalonilla, et al.
Histoplasmosis diseminada en pacientes con sida. Estudio de 2 casos y revisión de la bibliografía española.
Enferm Infecc Microbiol Clin, 16 (1998), pp. 316
[8.]
M.I. De José, M. Orio, A. Bilbao, J. García, F. Baquero.
Histoplasmosis diseminada.
An Pediatr (Barc), 63 (2005), pp. 249-252
[9.]
S. Díaz, J.L. García, C. Villasante, J. Villamor.
Histoplasmosis diseminada en un paciente afecto de síndrome de inmunodeficiencia adquirida.
Med Clin (Barc), 90 (1988), pp. 54
[10.]
A.A. Panackal, R.A. Hajjeh, M.S. Cetron, D.W. Warnock.
Fungal infections among returning travelers.
Clin Infect Dis, 35 (2002), pp. 1088-1095
[11.]
J. Wheat.
Endemic mycoses in AIDS - A clinical review.
Clin Microbiol Rev, 8 (1995), pp. 146-159
[12.]
L.J. Wheat.
Current diagnosis of histoplasmosis.
Trends in Microbiology, 11 (2003), pp. 488-494
[13.]
J. Guarro, J. Gene, A.M. Stchigel.
Developments in fungal taxonomy.
Clin Microbiol Rev, 12 (1999), pp. 454
[14.]
L.J. Wheat, R.B. Kohler, R.P. Tewari.
Diagnosis of disseminated histoplasmosis by detection of Histoplasma capsulatum antigen in serum and urine specimens.
N Engl J Med, 314 (1986), pp. 83-88
[15.]
L.J. Wheat, T. Garringer, E. Brizendine, P. Connolly.
Diagnosis of histoplasmosis by antigen detection based upon experience at the histoplasmosis reference laboratory.
Diag Microbiol Infect Dis, 43 (2002), pp. 29-37
[16.]
R. Bialek, J. Fischer, A. Feucht, L.K. Najvar, K. Dietz, J. Knobloch, et al.
Diagnosis and monitoring of murine histoplasmosis by a nested PCR assay.
J Clin Microbiol, 39 (2001), pp. 1506-1509
[17.]
R. Bialek, A. Feucht, C. Aepinus, G. Just-Nubling, V.J. Robertson, J. Knobloch, et al.
Evaluation of two nested PCR assays for detection of Histoplasma capsulatum DNA in human tissue.
J Clin Microbiol, 40 (2002), pp. 1644-1647
[18.]
A. Bracca, M.E. Tosello, J.E. Girardini, S.L. Amigot, C. Gómez, E. Serra.
Molecular detection of Histoplasma capsulatum var. capsulatum in human clinical samples.
J Clin Microbiol, 41 (2003), pp. 1753-1755
[19.]
H.LD. Guedes, A.J. Guimares, M.D. Muniz, C.V. Pizzini, A.J. Hamilton, J.M. Peralta, et al.
PCR assay for identification of Histoplasma capsulatum based on the nucleotide sequence of the M antigen.
J Clin Microbiol, 41 (2003), pp. 535-539
[20.]
V. Rickerts, R. Bialek, K. Tintelnot, V. Jacobi, G. Just-Nubling.
Rapid PCR-based diagnosis of disseminated histoplasmosis in an AIDS patient.
European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases, 21 (2002), pp. 821-823
[21.]
J. Martagon-Villamil, N. Shrestha, M. Sholtis, C.M. Isada, G.S. Hall, T. Bryne, et al.
Identification of Histoplasma capsulatum from culture extracts by real-time PCR.
J Clin Microbiol, 41 (2003), pp. 1295-1298
[22.]
C.M. Tang, J. Cohen, D.W. Holden.
An Aspergillus fumigatus alkaline protease mutant constructed by gene disruption is deficient in extracellular elastase activity.
Mol Microbiol, 6 (1992), pp. 1663-1671
[23.]
K.J. Sambrook, E.F. Fritsch, T. Maniatis.
Molecular cloning. A laboratory manual.
2nd ed., Cold Spring Harbour Laboratory Press, (1989),
[24.]
S. Burggraf, B. Olgemoller.
Simple technique for internal control of real-time amplification assays.
Clin Chemistry, 50 (2004), pp. 819-825
[25.]
D.O. Freedman, L.H. Weld, P.E. Kozarsky, T. Fisk, R. Robins, F. Von Sonnenburg, et al.
Spectrum of disease and relation to place of exposure among ill returned travelers.
N Engl J Med, 354 (2006), pp. 119-130
[26.]
C. Farina, M. Rizzi, L. Ricci, E. Gabbi, S. Caligaris, A. Goglio.
Imported and autochthonous histoplasmosis in Italy: new cases and old problems.
Rev Iberoam Micol, 22 (2005), pp. 169-171
[27.]
B.C. Leimann, C.V. Pizzini, M.M. Muniz, P.C. Albuquerque, P.C. Monteiro, R.S. Reis, et al.
Histoplasmosis in a Brazilian center: clinical forms and laboratory tests.
Rev Iberoam Micol, 22 (2005), pp. 141-146
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