Falsa resistencia a imipenema en bacilos gramnegativos mediante un sistema automatizado
False resistance to imipenem in Gram-negative rods with an automatized system
a Departamento de Microbiología y Epidemiología Infecciosa. Hospital Universitario Virgen Macarena.
b Departamento de Microbiología. Facultad de Medicina. Universidad de Sevilla Departamento de Microbiología y Epidemiología Infecciosa. Hospital Universitario Virgen Macarena.
c Departamento de Microbiología. Facultad de Medicina. Universidad de Sevilla.Departamento de Microbiología y Epidemiología Infecciosa. Hospital Universitario Virgen Macarena.
d Departamento de Microbiología. Facultad de Medicina. Universidad de Sevilla. Departamento de Microbiología y Epidemiología Infecciosa. Hospital Universitario Virgen Macarena.
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También se ha descrito resistencia a este antimicrobiano en una proporción variable de <span class="elsevierStyleItalic">Pseudomonas aeruginosa</span><span class="elsevierStyleSup">4</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Acinetobacter baumannii</span><span class="elsevierStyleSup">5</span> y algunos otros BGN no fermentadores (BGNNF)<span class="elsevierStyleSup">6.</span> En el caso de las enterobacterias la resistencia a carbapenemas es aún poco frecuente, aunque ya se ha descrito en aislamientos clínicos de distintas especies, incluyendo <span class="elsevierStyleItalic">Citrobacter freundii</span><span class="elsevierStyleSup">7</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Enterobacter </span>spp.<span class="elsevierStyleSup">8,9</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Escherichia coli</span><span class="elsevierStyleSup">10</span>, <span class="elsevierStyleItalic"> Klebsiella pneumoniae</span><span class="elsevierStyleSup">11</span>, <span class="elsevierStyleItalic">Proteus </span>spp.<span class="elsevierStyleSup">12 </span><span class="elsevierStyleItalic">Providencia rettgeri</span><span class="elsevierStyleSup">9 </span>y <span class="elsevierStyleItalic">Serratia marcescens</span><span class="elsevierStyleSup">13</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> Uno de los inconvenientes que plantea la utilización de sistemas automatizados de identificación y determinación de la sensibilidad es la obtención de resultados erróneos de sensibilidad/resistencia a los antimicrobianos<span class="elsevierStyleSup">14</span>. El factor que más se ha relacionado con la falsa resistencia a imipenema es su inestabilidad en determinadas condiciones físico-químicas<span class="elsevierStyleSup">15-19</span>. La concentración de imipenema en paneles comerciales de sensibilidad puede disminuir hasta un 50% (equivalente a 1 dilución de diferencia) al cabo de 18 meses de su preparación<span class="elsevierStyleSup">20</span>. Otro estudio ha mostrado que en un período entre 5 y 30 meses la concentración final de imipenema en paneles comerciales pasa de ser de un 94,4% a sólo un 13,8% de la concentración original<span class="elsevierStyleSup">21</span>. También se han relacionado con falsa resistencia a imipenema otros factores, como la temperatura de almacenamiento de los paneles<span class="elsevierStyleSup">22-24</span>, el contenido en cationes y aminoácidos del medio utilizado para determinación de la sensibilidad<span class="elsevierStyleSup">25-27</span>, y la concentración del inóculo bacteriano empleado<span class="elsevierStyleSup">28</span>. </p><p class="elsevierStylePara"> El objetivo de este estudio es evaluar la fiabilidad de los valores de concentración mínima inhibitoria (CMI) de imipenema obtenidos con el sistema WalkAway-96 (MicroScan; Dade, EE.UU.) frente a BGN aislados de muestras clínicas cuando éstas son >= 4 mg/l. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Material y métodos</span></p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Cepas bacterianas</span></p><p class="elsevierStylePara"> Se han estudiado 173 aislamientos consecutivos de BGN obtenidos en el laboratorio de Microbiología del Hospital Universitario Virgen Macarena de Sevilla (enero-mayo 1997) para los que la CMI de imipenema fue >= 4 mg/l (paneles Urine-Combo 6I, U6I) ó >= 8 mg/l (paneles Neg-Combo 6I, N6I). Los aislamientos se obtuvieron de orina (48%), aspirado bronquial (24%), exudado de herida (8%) y otras muestras (20%). Las especies bacterianas estudiadas fueron: <span class="elsevierStyleItalic">A. baumannii</span> (61), <span class="elsevierStyleItalic">P. aeruginosa </span>(29), <span class="elsevierStyleItalic">Proteus mirabilis</span> (31), <span class="elsevierStyleItalic">S. maltophilia</span> (11), <span class="elsevierStyleItalic">Morganella morganii </span>(8), <span class="elsevierStyleItalic">Salmonella </span>spp (6), <span class="elsevierStyleItalic">Enterobacter cloacae</span> (4), <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span> (4), <span class="elsevierStyleItalic">C. freundii</span> (3), <span class="elsevierStyleItalic">S. marcescens </span>(3)<span class="elsevierStyleItalic">, Yersinia enterocolitica </span>(3), <span class="elsevierStyleItalic">Myroides odoratum </span>(2), <span class="elsevierStyleItalic">K. pneumoniae </span>(2), <span class="elsevierStyleItalic">S. liquefaciens </span>(2), <span class="elsevierStyleItalic">Alcaligenes xylosoxidans</span> (1), <span class="elsevierStyleItalic">E. aerogenes </span>(1), <span class="elsevierStyleItalic"> P. vulgaris </span>(1) y <span class="elsevierStyleItalic"> Providencia stuartii</span> (1). </p><p class="elsevierStylePara"> La identificación de los microorganismos se realizó con el sistema WalkAway-96 utilizando paneles U6I (para BGN aislados de orina) y paneles N6 (para BGN aislados de otras muestras), complementados, para BGNNF, con el sistema API 20NE (API bio-Mérieux, La Balme, Les Grottes, Francia). Una vez identificados, los microorganismos se conservaron a -30ºC en caldo de soja tripticasa (TSB; Difco, Detroit, Michigan, EE.UU.) con glicerol al 10% hasta ser utilizados en estudios posteriores. </p><p class="elsevierStylePara"> Como cepas de control para la determinación de sensibilidad a imipenema mediante microdilución (ver más adelante) se utilizaron <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span> ATCC 25922 y <span class="elsevierStyleItalic">P. aeruginosa</span> ATCC 27853. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Determinación de la sensibilidad a imipenema </span></p><p class="elsevierStylePara"> Para determinar las CMI de imipenema mediante el sistema WalkAway-96 se emplearon los mismos paneles que para la identificación. Los paneles U6I tienen tres pocillos con 1,4 y 8 mg/l de imipenema, respectivamente, mientras que los paneles N6I tienen dos pocillos con 4 y 8 mg/l de imipenema, respectivamente. Los paneles se inocularon utilizando el sistema PROMPT (DADE, MicroScan, EE.UU.) siguiendo las instrucciones del fabricante. La lectura se realizó con el sistema WalkAway-96. Cuando el sistema interpretaba una CMI de imipenema >= 4 mg/l (paneles U6I) o >= 8 mg/l (paneles N6I), se realizó también una lectura visual del correspondiente panel. </p><p class="elsevierStylePara"> Como método de referencia para la determinación de la CMI de imipenema se empleó microdilución en caldo Mueller-Hinton (Difco) ajustado con cationes (CAMHB) siguiendo las normas del <span class="elsevierStyleItalic">National Committee for Clinical Laboratory Standards </span>(NCCLS)<span class="elsevierStyleSup">29</span>. El rango de concentraciones de imipenema (Merk Sharp & Dhome, Madrid, España) evaluadas fue de 128 a 0,015 mg/l. Los inóculos se prepararon a partir de un cultivo de 20 horas en agar Columbia suplementado con sangre de oveja al 5% (bioMérieux). Las placas de microdilución se incubaron a 35ºC en atmósfera aerobia durante 18-20 horas. La CMI se definió como la menor concentración de antibiótico que producía a simple vista una inhibición del crecimiento bacteriano. En el caso de <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> spp. resultó complejo determinar el punto final del crecimiento, por la existencia de un crecimiento residual en los pocillos con concentraciones superiores a la CMI de referencia, que se definió en el pocillo donde se producía una disminución brusca del tamaño del botón bacteriano. Debido a esta dificultad, para los aislamientos de esta especie también se determinó la CMI de imipenema empleando tiras de E-test (Biodisk, Solna, Suecia) en placas de agar Mueller-Hinton, siguiendo las instrucciones del fabricante. Para comparar los valores de CMI determinados por microdilución con los obtenidos por E-test, estos últimos se redondearon a la siguiente dilución más alta en base 2. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Criterios de evaluación </span></p><p class="elsevierStylePara"> Los resultados obtenidos por el sistema WalkAway-96 se consideraron discrepantes con los obtenidos por microdilución (método de referencia) cuando existían 2 o más diluciones de diferencia. Cuando la CMI de imipenema determinada por WalkAway-96 fue >8 mg/l y la determinada por microdilución fue >= 16 mg/l, se consideró que no existía ninguna dilución de diferencia entre ambos métodos, mientras que si la CMI determinada por microdilución fue ¾ 8 mg/l y la determinada por WalkAway-96 fue > 8 mg/l, se consideró que esta última era de 16 mg/l (el valor más próximo a > 8 mg/l). </p><p class="elsevierStylePara"> Para los resultados discordantes observados al comparar las categorías clínicas obtenidas con ambos métodos, establecidas según los puntos de corte del NCCLS, se definieron los siguientes tipos de error: error máximo o falsa sensibilidad (sensible por WalkAway-96 y resistente por microdilución); error mayor o falsa resistencia (resistente por WalkAway-96 y sensible por microdilución), y error menor (intermedio por un método y sensible o resistente por el otro). En las cepas de <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> spp. (n=32), se evaluaron también las discrepancias en las CMI de imipenema obtenidas al comparar WalkAway-96 con microdilución, WalkAway-96 con E-test y E-test con microdilución. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Resultados</span></p><p class="elsevierStylePara"> En la tabla 1 se recoge el número de cepas, por especies, con CMI de imipenema de 4,8 y >8 mg/l, respectivamente, determinadas por WalkAway-96 con paneles U6I y N 6I. Mediante la técnica de referencia empleada para la determinación de la sensibilidad, se comprobó que la CMI de imipenema frente a las 69 enterobacterias estudiadas fue en todos los casos inferior a 8 mg/l (para 2 cepas de <span class="elsevierStyleItalic">P. mirabilis</span> la CMI fue de 4 mg/l, para 10 cepas de <span class="elsevierStyleItalic">P. mirabilis </span>y de <span class="elsevierStyleItalic">E. cloacae </span>fue de 2 mg/l y para los restantes 56 aislamientos fue ¾ 1 mg/l. Los porcentajes de BGNNF intermedios y resistentes a imipenema incluidos en el estudio fueron del 22,1% (23/104) y del 33,6% (35/104), respectivamente. Los porcentajes de aislamientos intermedios de <span class="elsevierStyleItalic">P. aeruginosa</span> y <span class="elsevierStyleItalic">A. baumannii </span>de este estudio fueron del 10,3% (3/29) y del 32,8% (20/61), valores coincidentes con los de aislamientos resistentes en ambas especies, que también fueron del 10,3% (3/29) y del 32,8% (20/61) respectivamente. La CMI de imipenema frente a las 11 cepas de <span class="elsevierStyleItalic">S. maltophilia </span>fue >= 32 mg/l. <img src="28185001.JPG"></img><img src="28185002.JPG"></img></p><p class="elsevierStylePara"> Como se recoge en la tabla 2, al utilizar los paneles U6I el porcentaje de discrepancias para las CMI de imipenema fue del 74% para BGNNF y del 83% para enterobacterias, oscilando dichos valores entre el 0% (<span class="elsevierStyleItalic">S. maltophilia,</span> n=1) y el 100% (<span class="elsevierStyleItalic">M.morganii</span>, n=5 y <span class="elsevierStyleItalic">Salmonella</span> spp., n=1). </p><p class="elsevierStylePara"> Las discrepancias globales para BGNNF con paneles N6I fueron del 16% (tabla 3). En enterobacterias, y con este mismo tipo de paneles, las discrepancias observadas fueron globalmente del 95% (en concreto, del 100% de todas las especies estudiadas, excepto en <span class="elsevierStyleItalic">M.morganii</span> [67%]). </p><p class="elsevierStylePara"> Al considerar los 32 aislamientos de <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> spp. estudiados (tablas 2 y 3) se obtuvo un 78% de resultados discrepantes al comparar WalkAway-96 y microdilución (75% para paneles U6I y 100% para paneles N6I), un 94% al comparar WalkAway-96 y E-test y un 16% al comparar E-test con microdilución. <img src="28185003.JPG"></img></p><p class="elsevierStylePara"> Al evaluar las diferencias en las categorías clínicas determinadas por WalkAway-96 y microdilución, en ningún caso se produjeron errores máximos (tablas 2 y 3). El porcentaje de errores mayores obtenidos con paneles U6I fue menor para BGNNF que para enterobacterias (6% y 12%, respectivamente), mientras que con los paneles N6I fueron del 12% (BGNNF) y del 50% (enterobacterias). En el 11% de BGNNF y el 25% de enterobacterias se detectaron errores menores con los paneles U6I y en el 39% y 45% de ambos grupos de bacterias con los paneles N6I. </p><p class="elsevierStylePara"><span class="elsevierStyleBold">Discusión</span></p><p class="elsevierStylePara"> Los sistemas automatizados han supuesto un importante avance en la identificación y la determinación de la sensibilidad a los antimicrobianos de muchas de las bacterias aisladas a partir de muestras clínicas<span class="elsevierStyleSup">14</span>. El uso de estos sistemas conlleva una serie de inconvenientes de los que, quizá, el de mayor importancia es la obtención de falsos datos de sensibilidad. Este problema se ha descrito sobre todo para los ß-lactámicos, y en particular para compuestos poco estables, como imipenema<span class="elsevierStyleSup">14</span>. El porcentaje de discrepancias (>= 2 diluciones de error) del sistema WalkAway-96 al determinar el valor de CMI de imipenema frente a las enterobacterias evaluadas en este estudio fue superior al 80%, con independencia del tipo de panel utilizado. Dichas discrepancias siempre se debieron a que la CMI obtenida por WalkAwy-96 era mayor que la obtenida por el método de referencia. De hecho, ninguna de la 13 especies de enterobacterias evaluadas fue intermedia o resistente a imipenema. Por esta razón creemos que debe mantenerse una actitud crítica en aquellos casos en los que WalkAway-96 indique una CMI de imipenema >= 4 mg/l frente a alguna enterobacteria. Los resultados de este estudio señalan la necesidad de confirmar este hallazgo mediante una técnica de referencia. </p><p class="elsevierStylePara"> Considerando el total de enterobacterias aisladas y evaluadas a lo largo del período de estudio, las especies para las que con más frecuencia se obtuvo con WalkAway-96 una CMI de imipenema falsamente elevada fueron: <span class="elsevierStyleItalic">Y. enterocolitica </span>(50,0% [3/6]), <span class="elsevierStyleItalic">S. liquefaciens </span>(50,0% [2/4]), <span class="elsevierStyleItalic">Proteus </span>spp. (27,6% [32/196]), <span class="elsevierStyleItalic">P. stuartii </span>(25% [1/4]), y <span class="elsevierStyleItalic">M. morganii </span>(16,3%[8/29]). Aunque en el caso de <span class="elsevierStyleItalic">Salmonella </span>spp. este error se observó en un 7,2% de casos, debemos recordar la gran frecuencia de aislamientos de esta especie en nuestro entorno (83 aislamientos durante el período de estudio). Por el contrario, el hallazgo es muy poco frecuente en <span class="elsevierStyleItalic">E. coli</span>, especie para la que el porcentaje de CMI de imipenema errónea fue de sólo el 0,4% (4/1.004). </p><p class="elsevierStylePara"> Las discrepancias obtenidas para BGNNF variaron significativamente en función del tipo de panel utilizado: 74% el usar paneles U6I y 16% al usar paneles N6I. El menor porcentaje de discrepancias (0%) se observó con <span class="elsevierStyleItalic">S. maltophilia</span>, lo que debe relacionarse con el hecho de la resistencia intrínseca de esta especie a carbapenemas<span class="elsevierStyleSup">3</span>. En <span class="elsevierStyleItalic">A. baumannii</span> los porcentajes de discrepancias variaron entre el 13% con paneles N6I y el 50% con paneles U6I. En esta última especie el método de referencia indicó que los valores de CMI de imipenema frente a muchas de las cepas evaluadas estaban cercanos a los puntos de corte intermedio y resistente (CMI de imipenema entre 4 y 64 mg/l para el 85,2% de las cepas), por lo que pequeñas variaciones en el valor de CMI tendrán un gran impacto en la correspondiente categoría clínica. Los datos obtenidos con <span class="elsevierStyleItalic">S. maltophilia</span> y con <span class="elsevierStyleItalic">A. baumannii</span> indican claramente que la determinación de la CMI de imipenema con el sistema WalkAway-96 es más fiable frente a microorganismos resistentes que frente a los sensibles. </p><p class="elsevierStylePara"> Las causas de las discrepancias observadas en este estudio no han podido determinarse con precisión. Pueden descartarse los errores de lectura por el sistema WalkAway-96, ya que en todos los casos los valores de CMI determinados mediante inspección visual de los paneles coincidieron con los determinados por el sistema automatizado. En nuestra experiencia, y empleando los mismos paneles evaluados en este estudio, también hemos, observado altas tasas de falsa resistencia de <span class="elsevierStyleItalic">Salmonella</span> spp. a aztreonam (datos no mostrados), lo que indica que los problemas observados con imipenema pueden afectar también a otros ß- lactámicos. En este mismo sentido, Ferraro y Jorgensen<span class="elsevierStyleSup">14</span> han descrito falsa resistencia a aztreonam en <span class="elsevierStyleItalic">Proteus </span>spp. y <span class="elsevierStyleItalic">Morganella</span> spp. Según estos autores, este problema deriva de la interpretación como crecimiento bacteriano de opacidades mínimas en los pocillos con aztreonam, como consecuencia de la elongación bacteriana previa a la lisis celular. Zimmer et al<span class="elsevierStyleSup">30</span>, sin embargo, al evaluar la falsa resistencia de BGN a aztreonam obtenida al usar paneles comerciales (MicroScan) comprobaron que ésta se debía fundamentalmente al empleo de inóculos elevados (1,5-2,4 x 10<span class="elsevierStyleSup">6 </span>unidades formadoras de colonias/ml). Por el momento se desconoce la importancia que estos dos factores (elongación bacteriana prelítica y sobreinoculación de los paneles) podrían tener en los resultados obtenidos en este estudio con imipenama. En el caso particular de <span class="elsevierStyleItalic">Proteus </span>spp., las discrepancias obtenidas podrían deberse a la dificultad para determinar el punto final de crecimiento en los paneles comerciales, observado también en el método usado como referencia (microdilución). Otros autores también han constatado las dificultades para establecer la CMI de imipenema frente a <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> spp. al usar métodos de dilución en medio líquido. En nuestra experiencia, y teniendo en cuenta el acuerdo entre los valores de CMI obtenidos por microdilución y por E-test, la definición del valor de CMI de imipenema frente a <span class="elsevierStyleItalic">Proteus</span> spp. mediante la lectura visual de los paneles de microdilución es suficientemente fiable, y permite establecer un valor de referencia adecuado para evaluar los resultados obtenidos con WalkAway-96 frente a este microorganismo. De acuerdo con los resultados publicados por otros autores, y dado que nuestros resultados indican que la CMI obtenida con paneles comerciales es superior a la de referencia, es muy posible que la principal causa de las discrepancias observadas en este estudio deriven de la inestabilidad de imipenema en los paneles comerciales. Son necesarios nuevos estudios destinados a aclarar éstos u otros factores. En cualquier caso, sería necesario establecer por parte del fabricante las medidas de control que garanticen la calidad de los resultados obtenidos al emplear los paneles actualmente en uso. </p><p class="elsevierStylePara"> Conviene reseñar que a pesar del elevado porcentaje de discrepancias en los valores de CMI de imipenema, determinados por WalkAway-96, éstas no han supuesto en ningún caso la obtención de falsas sensibilidades (la peor de las circustancias desde el punto de vista clínico), aunque sí de un número significativo de falsas resistencias (entre el 10% y el 55%), casi siempre en especies (<span class="elsevierStyleItalic">Proteus </span>y <span class="elsevierStyleItalic">Morganella</span>) para las que las CMI de referencia presentan valores más altos, y en las que pequeños errores cuantitativos suponen el paso de categoría clínica de sensible a resistente. Las distintas concentraciones de imipenema en los dos tipos de paneles empleados explican las diferencias en los porcentajes de errores mayores obtenidos. Como se ha señalado anteriormente, dichos errores mayores son consecuencia, con toda probabilidad, de CMI de imipenema falsamente elevadas, lo que determina que ligeros incrementos en los paneles con pocillos de 4 y 8 mg/l de imipenema (N6I) fácilmente se traducen en saltos de categoría de sensible a resistente, mientras que ligeros incrementos en el pocillo de 1 mg/l (sólo disponible en paneles U6I) pocas veces supondrán un cambio de categoría clínica. </p><p class="elsevierStylePara"> En conclusión, sugerimos que los valores de CMI de imipenema >= 4 mg/l determinados con el sistema WalkAway-96 frente a BGN en los que la resistencia a imipenema es poco frecuente o excepcional, deben confirmarse mediante una técnica de referencia. </p>" "tienePdf" => false "PalabrasClave" => array:1 [ "en" => array:1 [ 0 => array:4 [ "clase" => "keyword" "titulo" => "Keywords" "identificador" => "xpalclavsec205850" "palabras" => array:1 [ 0 => "Imipenem, gram-negative rods, susceptibility testing" ] ] ] ] "tieneResumen" => true "resumen" => array:1 [ "en" => array:1 [ "resumen" => "<p class="elsevierStylePara">Background. The aim of this study was to evaluate the reliability of MIC values of imipenem against gramnegative rods obtained with the automated system WalkAway-98 (MicroScan, Dade, USA). </p> <p class="elsevierStylePara"> Material and Methods. One-hundred and seventy three consecutive clinical isolates of Gram-negative rods for which the MIC of imipenem were >=4 mg/l (Urine-Combo 6I panels, U6I) or >=8 mg/l (Neg-Combo 6I panels, N6I) were evaluated, including 104 non-fermenting gram-negative rods (NFGNR) and 69 enterobacteria. Panels were inoculated and read according to manufacturer's instructions. Microdilution, according to NCCLS guidelines, was used as the method of reference. MIC of imipenem determined by WalllAway-96 and microdilution differing >=2 dilution steps from those obtained with mirodilution were considered as discrepant results. Discrepancies in clinical categories were also evaluated by calculating three types of errors: very major (false susceptibility), major (false resistance) and minor (either susceptible or resistant by one method and intermediate by the other one). </p> <p class="elsevierStylePara"> Results. The percentages of discrepancies in the MIC of imipenem determined with U6I panels were 74% and 84% for NFGNR and enterobacteria, respectively. No very major errors were detected. Major errors were observed for 6% and 12% of the strains with U6I panels in NFGNR and enterobacteria, respectively, and in 12% (NFGNR) and 50% (enterobacteria) with N61 panels. With U61 panels minor errors were observed in 11% and 25% of NFGNR and enterobacteria, respectively, while with N61 panels minor error were observed in 39% and 45% of both groups, respectively. </p> <p class="elsevierStylePara"> Conclusions. MIC of imipenem >=4 mg/l obtained with the WalkAway-96 system against gramnegative rods, particularly in the case of enterobacteria, should be confirmed with a reference susceptibility method. </p>" ] ] "bibliografia" => array:2 [ "titulo" => "Bibliografía" "seccion" => array:1 [ 0 => array:1 [ "bibliografiaReferencia" => array:30 [ 0 => array:3 [ "identificador" => "bib1" "etiqueta" => "1" "referencia" => array:1 [ 0 => array:2 [ "contribucion" => array:1 [ 0 => array:3 [ "titulo" => "Comparative in vitro activity of MK0787 (N-formimidoyl thienamycin) against 540 blood culture isolates." 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Información del artículo
ISSN: 0213005XIdioma original: Español
Datos actualizados diariamente
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|---|---|---|---|
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| 2024 Septiembre | 22 | 0 | 22 |
| 2024 Agosto | 23 | 0 | 23 |
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