metricas
covid
Buscar en
Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Toda la web
Inicio Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica La asociación entre Fusobacterium nucleatum y el cáncer colorrectal: una revis...
Información de la revista
Vol. 40. Núm. 5.
Páginas 224-234 (mayo 2022)
Visitas
11284
Vol. 40. Núm. 5.
Páginas 224-234 (mayo 2022)
Original
Acceso a texto completo
La asociación entre Fusobacterium nucleatum y el cáncer colorrectal: una revisión sistemática y metaanálisis
The association between Fusobacterium nucleatum and cancer colorectal: a systematic review and meta-analysis
Visitas
11284
Paola Villar-Ortegaa, Manuela Expósito-Ruizb, Miguel Gutiérrez-Sotoc, Miguel Ruiz-Cabello Jiménezd, José María Navarro-Maríe, José Gutiérrez-Fernándeza,e,
Autor para correspondencia
josegf@go.ugr.es

Autor para correspondencia.
a Departamento de Microbiología, Universidad de Granada-Instituto de Investigación BioSanitaria-ibs-Granada, Granada, España
b Departamento de Bioestadística de FIBAO. Hospital Universitario Virgen de las Nieves-Instituto de Investigación BioSanitaria-ibs-Granada, Granada, España
c Departamento de Urgencias, Hospital de Montilla, Montilla, Córdoba, España
d UGC de Digestivo, Hospital Universitario Virgen de las Nieves-Instituto de Investigación BioSanitaria-ibs-Granada, Granada, España
e Laboratorio de Microbiología, Hospital Universitario Virgen de las Nieves-Instituto de Investigación BioSanitaria-ibs-Granada, Granada, España
Contenido relacionado
Enferm Infecc Microbiol Clin. 2022;40:221-310.1016/j.eimc.2022.02.003
Juan Corredoira, Blanca Ayuso
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Resumen
Texto completo
Bibliografía
Descargar PDF
Estadísticas
Figuras (5)
Mostrar másMostrar menos
Tablas (3)
Tabla 1. Revisión sistemática de la bibliografía publicada en la base de datos MEDLINE PubMed hasta el día 1 de enero de 2020 sobre la relación entre Fusobacterium nucleatum y el cáncer colorrectal
Tabla 2. Relación de los 18 estudios que compararon, en Casos y Controles-1, la positividad de marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular
Tabla 3. Relación de 9 estudios que compararon, en Casos y Controles-2, la positividad de los marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular
Mostrar másMostrar menos
Resumen
Introducción

Se desconocen los factores etiológicos exactos del cáncer colorrectal (CCR), aunque se ha intentado relacionar con factores genéticos y ambientales. La posible asociación con Fusobacterium nucleatum podría abrir posibilidades en el diagnóstico precoz.

Objetivo

Revisar los estudios que analizan la asociación entre F. nucleatum y el CCR.

Métodos

Se utilizaron las publicaciones disponibles en la base de datos MEDLINE PubMed hasta el día 1 de enero de 2020, que incluían los términos «cáncer colorrectal» y «Fusobacterium nucleatum». Se realizó un metaanálisis con el software Stata.

Resultados

Un total de 57 artículos fueron incluidos en la revisión sistemática. El metaanálisis indicó una mayor presencia de F. nucleatum en muestras de tejido tumoral de CCR, con respecto a muestras control de tejido sano, con una odds ratio de 4,558 (IC 95%: 3,312-6,272), y cuando se utilizaron muestras control de adenomas colorrectales, con una odds ratio de 3,244 (IC 95%: 2,359-4,462).

Conclusión

Hay una mayor presencia de F. nucleatum en el CCR. Sin embargo, se necesitan estudios que demuestren esta relación.

Palabras clave:
Cáncer colorrectal
Fusobacterium nucleatum
Microbiota
Disbiosis
Inflamación crónica
Abstract
Introduction

The etiological factors of colorectal cancer (CRC) are not precisely known, although genetic and environmental factors have been implicated. A possible association with Fusobacterium nucleatum may provide opportunities for an early diagnosis.

Objective

To review studies that address the association between F. nucleatum and CRC.

Methods

The MEDLINE PubMed database was searched using the terms «colorectal cancer» and «Fusobacterium nucleatum», retrieving publications published up to January 1 2020. Stata software was used for a meta-analysis.

Results

The systematic review included 57 articles. Meta-analysis results indicated a more frequent presence of F. nucleatum in CRC tumor tissue samples in comparison to control samples of healthy tissue, with an odds ratio of 4.558 (95% CI: 3.312-6.272), and in comparison, to control samples of colorectal adenomas, with an odds ratio of 3.244 (95% CI: 2.359-4.462).

Conclusion

There is a more frequent presence of F. nucleatum in the CRC. However, further studies are needed to verify this relationship.

Keywords:
Colorectal cancer
Fusobacterium nucleatum
Microbiota
Dysbiosis
Chronic inflammation
Texto completo
Introducción

La etiología del cáncer colorrectal (CCR) es multifactorial e incluyen alteraciones genéticas y epigenéticas1. También podrían intervenir factores extrínsecos como la disbiosis intestinal2, pero existe una variabilidad interindividual, debido a múltiples factores genéticos y ambientales3, por ello resultaría de especial interés investigar la existencia de un denominador microbiano común. Fusobacterium nucleatum (FN) ha sido una de las bacterias más estudiadas4–6. Es una bacteria anaerobia, gramnegativa, que reside en la cavidad oral como microbiota comensal, pero también es un patógeno oportunista en las enfermedades periodontales, principalmente en gingivitis y periodontitis7. Su poder patógeno reside en sus factores de virulencia, entre los que destacan: la presencia de fimbrias, lipopolisacáridos, factores inhibidores de la quimiotaxis de los leucocitos polimorfonucleares y la elaboración de metabolitos tóxicos tisulares8. Sin embargo, el más importante es la adhesina FadA, ya que se ha demostrado que es el mayor estimulante de la inflamación al crear un ambiente proinflamatorio crónico que activaría señales oncogénicas, estimulando las células epiteliales9,10. Estudios recientes han demostrado un aumento de FadA en el tejido neoplásico del CCR, junto con otros marcadores proinflamatorios como COX-2, IL-8, IL-6, IL1ß y TNF-α11.

La posibilidad de que FN pueda formar parte del proceso de carcinogénesis podría abrir posibilidades en el diagnóstico precoz. Por lo tanto, estaría justificado analizar exhaustivamente la evidencia actual sobre la relación entre FN y el CCR. El objetivo de este trabajo fue integrar la información disponible sobre la relación entre FN y el CCR, a través de un metaanálisis.

Material y métodos

El metaanálisis tuvo un componente cualitativo (revisión sistemática) y otro cuantitativo. La revisión sistemática fue una descripción de los trabajos publicados que considera los estudios individuales como «sujetos» de estudio. Así, se realizó una búsqueda sistemática de todos los artículos publicados, en inglés o español, en revistas indexadas en MEDLINE, ISI Web of Knowledge y Cochrane Library. Los términos de búsqueda utilizados fueron «colorectal cancer» y «Fusobacterium nucleatum». Los criterios de selección fueron el límite temporal, ya que la búsqueda se restringió a todos los artículos publicados, en formato paper y/o electrónico, antes de enero de 2020, el tipo de estudio, seleccionando los estudios de investigación, y el idioma, limitados a los redactados en inglés y en español. Se utilizó como criterios de exclusión los trabajos sobre la relación de FN con otras enfermedades diferentes al CCR, la relación del CCR con bacterias diferentes a FN y el aislamiento de FN en especies diferentes al ser humano; así como las revisiones. Se requirió que los pacientes con CCR estuvieran incluidos en los estudios, y que el objetivo del estudio fuera la búsqueda directa o indirecta de FN y que intentara establecer una posible asociación entre la infección y el CCR. Se utilizó un sistema de calidad interno, que verificó la fiabilidad del método anterior elegido, basado en la revisión detenida de cada publicación con rastreo de la bibliografía de las publicaciones para evitar las pérdidas.

El componente cuantitativo se refirió a la agrupación estadística de los resultados, actuando los estudios individuales como los sujetos de la investigación, obteniéndose, en cada publicación y en conjunto con las demás, la significación estadística del análisis, el intervalo de confianza al 95%, la odds ratio (OR) y los pesos de los trabajos. Para estimar la medida ponderada se utilizó el modelo de efectos aleatorios por el método de DerSimonian y Laird12, el cual se ve menos afectado ante la heterogeneidad entre los estudios. Para valorar la heterogeneidad se utilizó la prueba del inverso de la varianza. Además, se calculó el índice de inconsistencia I2 de Higgins, cuyo valor indica el porcentaje de variabilidad debida a la heterogeneidad entre estudios. Valores por encima del 75% indican un nivel de heterogeneidad fuerte, y sugeriría la necesidad de realizar estudios adicionales. Las pruebas de Begg13 y Egger14 se usaron para detectar sesgo de publicación. El análisis de los datos se realizó con el software Stata Release, versión 14.

ResultadosRevisión sistemática

La búsqueda de los artículos recuperó 199 publicaciones, de los que se seleccionaron 57 trabajos (tabla 1 y fig. 1) que fueron publicados entre 2011 y 2019, al menos en su versión on-line. Se han denominado Controles-1 las muestras control de zona no tumoral (40 trabajos-70,2%: 15 tejidos adyacentes no tumorales; 4 muestras fecales; 2 muestras sanguíneas; una muestra salival; 18 muestras de tejidos sin tumor) y Controles-2 las obtenidas de adenomas (16-28,1%). La columna Prueba-1 indica la prueba descrita por los autores para detectar el microorganismo. Además, algunos de los trabajos incluyen el uso de pruebas de laboratorio adicionales, que se ha denominado Prueba-2. Para finalizar, se han recogido, también, la conclusión más importante de los artículos de investigación (columna «Comentarios artículo»).

Tabla 1.

Revisión sistemática de la bibliografía publicada en la base de datos MEDLINE PubMed hasta el día 1 de enero de 2020 sobre la relación entre Fusobacterium nucleatum y el cáncer colorrectal

Autor  AñoPublicación física  Sexo total (m:h)  CasosCCR  SexoCasosCCR(m:h)  Control-1:No CCR (n)  SexoControl-1  DescripciónGrupoControl-1  Control-2:Adenomas (n)  SexoControl-2  ¿Qué se analiza?  Prueba 1  Prueba 2  FN+/totalCasos  FN+/totalControl-1  FN+/totalControl-2  Comentarios artículos 
Castellarin et al.15  2012  NC  11  NC  99  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  RNA  PCR  NC  11/11  9/11  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en tejido normal 
Rubinstein et al.16  2013  NC  51  NC  14  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  RNAm  PCR  NC  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FadA en CCR que en tejido normal 
Kostic et al.4  2013  NC  27  NC  31  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  28  NC  DNA y RNA  PCR  FISH  27/27  15/31  24/28  FN crea un estado proinflamatorio que favorece la progresión a CCR 
Warren et al.17  2013  NC  65  NC  65  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  rRNA  Metatranscriptómica  NC  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en tejido sano adyacente 
Flanagan et al.18  2014  NC  122  NC  174  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  52  NC  DNA  PCR  NC  70/122  33/174  12/52  FN puede usarse como marcador para el CCR 
Mira-Pascual et al.19  2014  NC  NC  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  DNA y RNA  PCR  Pirosecuenciación  2/7  0/5  NC  El aumento de niveles de las bacterias estudiadas se correlaciona con el CCR 
Tahara et al.20  2014  NC  149  NC  89  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  78/149  27/89  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Ito et al.21  2015  NC  511  225:286  20  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  456  39:59  DNA  PCR  NC  286/511  3/20  142/456  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Mima et al.22  2015  NC  598  NC  558  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  76/598  19/558  NC  FN crea un estado proinflamatorio que favorece la progresión a CCR 
Yu et al.10  2015  NC  42  NC  52  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  47  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Fukugaiti et al.23  2015  4:13  2:5  10  2:8  Heces  NC  NC  DNA  PCR  FISH  7/7  9/10  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Nosho et al.24  2016  NC  511  225:286  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  44/511  NC  NC  Menor porcentaje de positivos para FN en la cohorte japonesa 
Repass et al.25  2016  NC  40  NC  40  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en tejido normal 
Li et al.26  2016  46:55  101  46:55  101  46:55  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  FISH  88/101  NC  NC  Mayor cantidad de FN en CCR se asocia con menor tiempo de supervivencia 
Yu et al.27  2016  NC  93  NC  20  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  112  NC  DNA  PCR  NC  62/93  4/20  47/112  FN puede jugar un papel en la vía serrada de la carcinogénesis para CCR 
Mima et al.28  2016  NC  1.102  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  138/1.102  NC  NC  Aumenta la proporción de FN desde los CCR del recto a los cecales 
Yu et al.5  2017  NC  74  NC  54  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  DNA  PCR  NC  39/74  2/54  NC  FN promueve la progresión de CCR a través de la modulación de las vías de la autofagia 
Suehiro et al.29  2017  NC  158  NC  60  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  19  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Media de copias de FN: 17,5 en el grupo control, 122 adenoma, 317 CCR 
Liang et al.30  2017  NC  203  NC  236  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  DNA  PCR  Secuenciación metagenómica  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Wong et al.31  2017  NC  104  NC  102  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  103  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Mayor cantidad de FN en los adenomas con respecto a los controles p=0,022 
Mehta et al.32  2017  NC  1.019  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  125/1.019  NC  NC  La asociación de la dieta con CCR es modificada por FN 
Chen et al.33  2017  NC  98  40:58  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  FISH  NC  61/98  NC  NC  FN invasivo activa la vía de señalización beta-catenina 
Ye et al.34  2017  NC  25  NC  25  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  4/25  2/25  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Amitay et al.35  2017  220:280  46  15:31  231  121:110  Tejidos de sujetos sin tumor  223  84:139  DNA  PCR  NC  25/46  58/231  53/223  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Park et al.36  2017  82:78  160  82:78  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  107/160  NC  NC  La mayor cantidad de FN en muestras tumorales se correlaciona con la presencia de macrófagos intratumorales 
Eklöf et al.37  2017  NC  39  19:20  65  30:35  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  DNA  PCR  NC  27/39  15/65  NC  Mayor cantidad de FN en CCR que en controles 
Bullman et al.38  2017  NC  77  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  RNA  PCR  FISH  45/77  NC  NC  La reducción de FN con antibióticos produce una menor proliferación cancerígena 
Drewes et al.39  2017  NC  58  NC  34  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  RNA  PCR  FISH  17/58  1/34  NC  Mayor cantidad de bacterias en CCR que en tejido sano 
Yamaoka et al.40  2018  NC  100  NC  72  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR    75/100  46/72  NC  Mayor cantidad de FN en CCR que en controles 
Guevara et al.6  2018  NC  37  NC  37  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  Anticuerpos anti-FN  ELISA  NC  37/37  12/37  NC  La proteína Fap2 de FN es antigénica 
Dai et al.41  2018  206:320  255  92:163  271  114:157  Heces  NC  NC  DNA  Metagenómica  NC  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en controles 
Liu et al.42  2018  NC  2.759  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  951/2.759  NC  NC  Asociación positiva de dietas empíricas inflamatorias (EDIP) con CCR FN+ 
Chen et al.43  2018  NC  25  NC  NC  No hay tejido control  NC  DNA  FISH  Inmunofluorescencia  NC  NC  NC  Mayor expresión de TOX y CD4+ en tejidos FN− comparados con los FN+. Correlación negativa entre la abundancia de FN y la expresión de TOX 
Guo et al.44  2018  NC  215  NC  156  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  La relación FN/Bifidobacterium tuvo una sensibilidad del 84,6% y una especificidad del 92,3% en detectar CCR 
Komiya et al.45  2018  NC  14  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  8/14  NC  NC  Muestras de FN en tejido tumoral y en saliva 
Lee et al.46  2018  NC  246  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Altos niveles de FN se asocian con una menor supervivencia en las metástasis de CCR 
Rezasoltani et al.47  2018  NC  NC  NC  31  15:16  Tejidos de sujetos sin tumor  87  33:54  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Relación significativa entre el tamaño del pólipo y la cuantificación de FN 
Hamada et al.48  2018  609:432  1.041  609:432  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  135/1.041  NC  NC  La asociación de FN con el CCR es diferente dependiendo de si el tumor tiene alterada la vía de los microsatélites 
Oh et al.49  2018  231:362  593  231:362  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  204/593  NC  NC  El pronóstico del tumor en relación con FN depende de la localización del CCR 
Proença et al.50  2018  NC  43  NC  70  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  27  NC  DNA  PCR  NC  33/43  23/70  14/27  FN es un factor de riesgo para CCR 
Zhang et al.51  2019  41:53  94  41:53  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  Microarray  21/90  NC  NC  FN induce la expresión del gen BIRC3 en CCR 
Saito et al.52  2019  30:51  24  7:17  10  7:3  Tejidos de sujetos sin tumor  47  16:31  rRNA  PCR  NC  14/24  NC  28/47  FN puede asociarse con CCR y adenomas, y es un potencial marcador diagnóstico para ambos 
Guo et al.53  2019  NC  46  NC  36  NC  Sangre  NC  NC  DNA  Secuenciación genómica  NC  NC  NC  NC  Mayor presencia de FN en los tejidos tumorales que en las muestras sanguíneas 
Feng et al.54  2019  13:12  15  8:7  10  5:5  Tejidos de sujetos sin tumor  NC  NC  DNA  PCR  Western blot  10/15  5/10  NC  La expresión de la proteína CREB se correlaciona con la metástasis de CCR ya sea en FN+ como FN− 
Tunsjø et al.55  2019  NC  25  NC  22  NC  Tejidos de sujetos sin tumor  25  NC  DNA  PCR  Secuenciación 16S rRNA  15/25  5/25  4/22  PCR para la detección de FN podría ser incluida como biomarcador de CCR 
Bundgaard-Nielsen et al.56  2019  141:132  99  55:44  76  35:41  Tejidos adyacentes no tumorales  96  51:47  DNA  PCR  Secuenciación 16S rRNA  23/99  NC  3/96  No hay evidencia de que FN intervenga en el desarrollo de adenomas, pero puede tener un papel en la transición de adenoma a CCR 
Guven et al.57  2019  NC  71  NC  77  NC  Saliva de controles no cancerosos  NC  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Mayor cantidad de FN en la saliva de los pacientes con CCR en comparación con los controles 
Yachida et al.58  2019  NC  258  NC  291  NC  Heces  67  NC  DNA  Electroforesis capilar  Estudio metagenómico y metabolómico  NC  NC  NC  La abundancia de FN se correlaciona con la progresión tumoral desde carcinoma intramucoso a estadios más avanzados 
Leung et al.59  2019  10:9  19  10:9  19  10:9  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  NC  NC  NC  Mayor porcentaje de FN en CCR que en tejido normal 
Kunzmann et al.60  2019  60:130  190  60:130  190  60:130  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  61/190  129/190  NC  FN es más abundante en el tejido tumoral que en tejido circundante 
Butt et al.61  2019  NC  485  NC  485  NC  Sangre  NC  NC  Anticuerpos anti-FN  Serología  NC  NC  NC  NC  Los anticuerpos dirigidos contra FN no tienen asociación con el riesgo de desarrollar CCR 
De Carvalho et al.62  2019  NC  152  NC  57  NC  Tejidos adyacentes no tumorales  NC  NC  DNA  PCR  NC  35/152  6/57  NC  La detección de DNA de FN se asocia con la localización proximal de los tumores, positividad para la mutación MSI, BRAF, pérdida de MLH1, MSH2 y PMS2. También con menor supervivencia 
Chen et al.63  2019  36:55  91  36:55  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  25/91  NC  NC  Mayor cantidad de FN en el tejido del CCR se asocia con un menor tiempo de supervivencia 
Mima et al.64  2019  208:304  256  208:304  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  140/256  NC  NC  Mayor cantidad de FN y otras bacterias asociadas al CCR aumentan el riesgo de rotura anastomótica tras la cirugía 
Liang et al.65  2019  NC  274  NC  353  NC  Heces  353  NC  DNA  PCR  Prueba inmunohistoquímica fecal  71/274  97/385  145/353  Identificación del marcador m3 para el diagnóstico de CCR 
Haruki et al.66  2019  423:301  724  423:301  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA  PCR  NC  99/724  NC  NC  Asociación inversa entre la cantidad de FN y la expresión tumoral de BECN1 
Chen et al.67  2019  NC  148  NC  NC  NC  No hay tejido control  NC  NC  DNA y RNA  PCR  FISH  88/148  NC  NC  FN se encuentra en mayor cantidad en los CCR con metástasis 

CCR: cáncer colorrectal; FN: Fusobacterium nucleatum; NC: no consta información.

Figura 1.

Diagrama de flujo de la revisión sistemática.

(0.18MB).

Se comprobó un aumento del número de los trabajos publicados con el paso de los años, pero no fue hasta 2017 cuando aumentó significativamente esta investigación. El sexo de los casos se describió en 20 (35,1%) trabajos; en los Controles-1 en 11 (19,3%) estudios y en los Controles-2 en 5 (31,2%) trabajos. Hasta el año 2015 ningún trabajo describió el sexo de los participantes en el estudio. Los trabajos más recientes sí tienden a indicar el sexo de la población estudiada. Cuando se analiza la distribución de los estudios con datos cuantitativos, para los Casos, Controles-1 y Controles-2, estos aparecen indicados en 40 (70,2%), 22 (38,6%%) y 10 (25%) artículos, respectivamente.

Análisis cuantitativo

En cuanto al número de positivos en las muestras de CCR, los mayores porcentajes de positivos se obtuvieron en los estudios de Castellarin et al.15, Kostic et al.4, Fukugaiti et al.23 y Guevara et al.6, en los que la totalidad de las muestras de CCR analizadas obtuvieron un resultado positivo en las pruebas de laboratorio. Por el contrario, el menor porcentaje de resultados positivos se encontró en el estudio de Nosho et al.24, donde solo un 8,6% de las muestras arrojaron un resultado positivo. En cuanto al número de muestras de los Casos en cada trabajo, es muy variado. Así el menor número se encontró en los estudios de Mira-Pascual et al.19 y Fukugaiti et al.23, con un total de 7 casos analizados cada uno. El mayor tamaño muestral para los Casos se correspondió con el estudio de Liu et al.42, con un análisis de 2.759 muestras. Cabe destacar que solo hay 4 (7%) trabajos que superen los 1.000 individuos con CCR, y que fueron llevados a cabo entre los años 2017 y 2018.

En la tabla 2 se reflejan los estudios (18 de los 40, 45%) que compararon, en Casos y Controles-1, la positividad de marcadores de infección por FN con datos cuantitativos de muestras de tejidos colónicos con pruebas de biología molecular. Por su peso, destacan los estudios Mima et al.28, Flanagan et al.18 y Tahara et al.20. Todos estos artículos tienen un peso superior al 10%. La estimación global de la OR de los resultados individuales obtenidos en estos trabajos dio un resultado de 4,558 (IC 95%: 3,312-6,272), que nos permite concluir que hay asociación significativa (p<0,001) entre FN y el CCR cuando se utilizaron los Controles-1. Para calcular la heterogeneidad se llevó a cabo la prueba del inverso de la varianza, con un valor de χ2exp.=30,54, con 17 grados de libertad y p=0,023, por lo que las diferencias encontradas entre los estudios no fueron debidas al azar. El estudio de heterogeneidad se corroboró utilizando la I2 de Higgins, con un resultado de I2=44,3% (tabla 2 y fig. 2). No hubo sesgo de publicación evidente, tal y como se indica en las pruebas de Begg y Egger que no fueron significativas (p=0,767 y p=0,210, respectivamente) (fig. 3).

Tabla 2.

Relación de los 18 estudios que compararon, en Casos y Controles-1, la positividad de marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular

Estudio  OR  IC 95%  % peso 
Castellarin et al., 2011  6,053  0,258-142,040  0,96 
Kostic et al., 2013  58,548  3,282-1.044,602  1,14 
Flanagan et al., 2014  5,752  3,413-9,693  10,85 
Mira-Pascual et al., 2014  5,000  0,192-130,024  0,90 
Tahara et al., 2014  2,523  1,449-4,393  10,46 
Ito et al., 2015  7,203  2,085-24,884  4,62 
Mima et al., 2015  4,130  2,463-6,926  10,91 
Yu et al., 2017  28,971  6,567-127,806  3,55 
Yu et al., 2016  8,000  2,465-25,968  4,96 
Ye et al., 2017  2,190  0,363-13,219  2,61 
Amitay et al., 2017  3,551  1,850-6,815  9,34 
Yamaoka et al., 2018  1,696  0,876-3,282  9,24 
Eklöf et al., 2017  7,500  3,074-18,297  6,97 
Drewes et al., 2017  13,683  1,730-108,242  2,06 
Proença et al., 2018  6,743  2,838-16,026  7,20 
Feng et al., 2019  2,000  0,388-10,309  3,04 
Tunsjø et al., 2019  6,000  1,693-21,262  4,50 
De Carvalho et al., 2019  2,543  1,007-6,421  6,68 
D+L pooled OR  4,558  3,312-6,272  100,00 

Heterogeneidad χ2=30,54 (g.l.=17) p=0,023.

I2 (variación en OR atribuible a la heterogeneidad)=44,3%.

Estimación de la varianza entre estudios Tau-cuadrado=0,1736.

Test de OR=1: z=9,31, p=0,000.

Figura 2.

Forest plot de los 18 estudios que compararon, en Casos y Controles-1, la positividad de marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular.

(0.27MB).
Figura 3.

Funnel plot de los 18 estudios que compararon, en Casos y Controles-1, la positividad de marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular.

(0.06MB).

En la tabla 3 se reflejan los estudios (9 de los 16, 56,25%) que compararon, en Casos y Controles-2 (adenomas colorrectales), la positividad de marcadores genéticos de infección por FN con datos cuantitativos de muestras de tejidos colónicos con pruebas de biología molecular. Destacan por su peso los trabajos de Ito et al.21, Flanagan et al.18, Yu et al.27 y Amitay et al.35, con un peso superior al 12%. La estimación global de la OR de los resultados individuales obtenidos en estos trabajos dio un resultado de 3,244 (IC 95%: 2,359-4,462), lo cual muestra una asociación estadísticamente significativa entre la presencia de FN y el CCR (p<0,001). Para analizar la heterogeneidad se llevó a cabo la prueba del inverso de la varianza, con un valor de χ2exp.=12,33, con 8 grados de libertad y p=0,137, lo cual muestra que existe homogeneidad entre los estudios comparados. Además, la I2 de Higgins mostró un valor del 35,1%, indicando un bajo nivel de heterogeneidad (tabla 3 y fig. 4).

Tabla 3.

Relación de 9 estudios que compararon, en Casos y Controles-2, la positividad de los marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular

Estudio  OR  IC 95%  % peso 
Kostic et al., 2013  10,102  0,517-197,311  1,11 
Flanagan et al., 2014  4,487  2,145-9,388  12,37 
Ito et al., 2015  2,811  2,158-3,661  29,36 
Yu et al., 2016  2,766  1,562-4,899  16,85 
Amitay et al., 2017  3,819  1,980-7,366  14,35 
Proença et al., 2018  3,064  1,089-8,623  7,54 
Saito et al., 2019  0,950  0,350-2,580  7,97 
Tunsjø et al., 2019  6,750  1,755-25,956  4,86 
Bundgaard-Nielsen et al., 2019  9,382  2,713-32,442  5,59 
D+L pooled OR  3,244  2,359- 4,462  100,00 

Heterogeneidad χ2=12,33 (g.l.=8) p=0,137.

I2 (variación en OR atribuible a la heterogeneidad)=35,1%.

Estimación de la varianza entre estudios Tau-cuadrado=0,0719.

Test de OR=1: z=7,24 p=0,000.

Figura 4.

Forest plot de los 8 estudios que compararon, en Casos y Controles-2, la positividad de marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular.

(0.13MB).

No hubo sesgo de publicación evidente, tal y como se indica en las pruebas de Begg y Egger que no fueron significativas (p=0,108 y p=0,441, respectivamente) (fig. 5).

Figura 5.

Funnel plot de los 8 estudios que compararon, en Casos y Controles-2, la positividad de marcadores de infección por Fusobacterium nucleatum en muestras de biopsia intestinal mediante biología molecular.

(0.06MB).
Discusión

En este estudio se observa que la relación entre FN y el CCR es un tema que suscita interés, ya que hay un crecimiento exponencial de los trabajos que investigan esta relación. En cuanto al tamaño muestral de los estudios, 31 (54,4%) contaban con un número de muestras de casos inferior a 100, y solo 4 (7%) presentaban más de 1.000 muestras. Igualmente, en los trabajos publicados, solo 22 (55%) presentaban datos numéricos para los Controles-1 y 10 (17,5%) para los Controles-2. No obstante, en los últimos años se ha ido corrigiendo este hecho y en los estudios más actuales la tendencia es publicar los valores correspondientes. Ante todo, es necesario que los estudios que se lleven a cabo en el futuro presenten los datos numéricos cuantitativos para la positividad de FN en las muestras, ya que aporta una evidencia sólida y tratable estadísticamente sobre su asociación con el CCR. Otro hecho importante es la influencia del sexo en los resultados, que apenas ha sido estudiada en este campo, ya que en muchos estudios se prescinde de estos datos. El desglose por sexos de esta relación podría poner en evidencia si este podría considerarse un factor de riesgo en relación con la presencia de FN, ya que las enfermedades crónicas no transmisibles se relacionan con el estilo de vida de hombres y mujeres. En esta revisión sistemática solo se indica el sexo de los pacientes en 20 (35,1%) estudios del total de 57 artículos recopilados.

De forma semejante podrían estudiarse en futuros trabajos otras variables, como la dieta, ya que es un factor que algunos estudios, como el de Hussan et al.68, han recogido y evidenciado que una dieta rica en fibra se relaciona con un menor riesgo de desarrollar CCR a pesar de tener un mayor número de muestras positivas de FN en la mucosa colónica, lo que parecería contradictorio.

También cabe destacar que la mayoría de las muestras analizadas en los trabajos procedían de tejidos, es decir, las muestras de CCR procedían del tejido tumoral y las muestras de los controles procedían de tejido sano, ya que, en principio, su estudio debe aportar una información más completa. De lo publicado hasta la fecha, se ha deducido que existe una importante presencia de FN en el tejido del CCR en comparación con tejidos sanos adyacentes15,18,20,28,69, con un aumento gradual de FN desde la mucosa sana hasta el adenoma y de este al adenocarcinoma, lo que sugiere que FN puede jugar un papel importante desde las etapas más iniciales de la génesis tumoral colónica4,10,18,70; que hay una asociación entre esta presencia y la invasión de ganglios linfáticos por el CCR15,26,71 y que FN acompaña a las células tumorales en las metástasis38. De esta forma se ha explicado que la cantidad de FN en el CCR se relaciona con el estadio, resistencia a la quimioterapia, mayor recurrencia y menor supervivencia, siendo un factor predictivo independiente10,26,28,38,70,72,73.

Solo 4 (7%) trabajos llevaron a cabo los análisis en muestras fecales, uno (1,8%) en muestras sanguíneas y otro (1,8%) en muestras salivares, concluyendo que existe una sobreabundancia de FN en las heces de pacientes con CCR. FN es 132 veces más abundante en las heces de pacientes con CCR y su determinación se ha señalado como un marcador útil para detectar el CCR29–31, mostrando una sensibilidad y especificidad del 80,2% y 80,7%, respectivamente, que aumentan al 92-93% cuando se combina con la detección de sangre oculta en heces74. Sería de interés comprobar la asociación de FN y el CCR simultáneamente en muestras de tejido, fecales, salivares y sanguíneas, ya que en caso de aumentar los estudios y descubrir asociación significativa tendría un gran interés diagnóstico para el paciente puesto que son muestras relativamente fáciles de recoger y sin necesidad de llevar a cabo una colonoscopia para su obtención.

En base a todos los estudios realizados hasta la actualidad se podría aceptar la participación de FN en el mecanismo de carcinogénesis del CCR, ya que existe una asociación estadísticamente significativa entre la presencia de FN y el CCR; sin embargo, para determinar que esta bacteria es el verdadero origen del tumor deberían cumplirse los criterios de causalidad75, principalmente la temporalidad, dirección y asociación. En este caso no se puede demostrar el criterio de temporalidad, por el cual el efecto debe ser precedido por la causa. La mayoría de los estudios que investigan la asociación entre FN y el CCR son retrospectivos, por lo que no se puede saber si la bacteria estaba presente antes de desarrollar el tumor o fue adquirida después; entonces, se necesita más evidencia para confirmar esta causalidad.

Múltiples estudios, entre los que destacan por su peso en el metaanálisis los de Mima et al.28, Flanagan et al.18 y Tahara et al.20, confirman que existe una relación entre FN y el CCR cuando se compara tejido sano procedente de Controles-1 y los Casos de CCR, si bien es necesario clarificar esta asociación, ya que, entre otras cosas, actualmente no hay estudios prospectivos que demuestren que la presencia de la bacteria preceda al desarrollo del tumor. En la actualidad se conoce que el sustrato etiopatogénico se corresponde con la activación de un estado inflamatorio crónico derivado de la adhesión de la bacteria a través de un mecanismo de disbiosis intestinal. Todo este proceso lleva a un inicio de vías asociadas con la carcinogénesis colorrectal, destacando la vía Wnt/-beta-catenina cuya disregulación causa fallos en el crecimiento celular y progresión tumoral76. El estudio en profundidad de la activación de estas vías proinflamatorias y los mecanismos por los cuales se producen abrirá múltiples posibilidades diagnóstico-terapéuticas en uno de los tumores más incidentes de la actualidad, lo cual traería consigo un notable beneficio en el curso de esta enfermedad. Nuestro metaanálisis indica una mayor presencia de FN en muestras de tejido tumoral colorrectal con respecto a tejido sano con una OR de 4,558 y un intervalo de confianza al 95% de 3,312-6,272, lo que confirma la asociación significativa entre la presencia de FN en las muestras de tejido con el desarrollo de CCR; no obstante, es necesario clarificar el sentido de esta relación con estudios prospectivos que confirmen la temporalidad de la asociación, hecho que otros metaanálisis como el de Hussan et al.68 también mencionan en su trabajos.

Por otra parte, estudios recientes como el de Yu et al.70 describen el papel de FN en la quimiorresistencia en pacientes con CCR, indicando que un aumento de la cantidad de FN en el tejido tumoral se relaciona con una mayor tasa de quimiorresistencia. Por este motivo sería interesante la realización de más investigaciones sobre el tiempo de supervivencia de los pacientes en relación con la concentración de FN en el tejido tumoral, ya que este hecho podría significar la existencia de más dianas terapéuticas en esta enfermedad como el tratamiento erradicador de la bacteria.

En el caso de la comparación entre los Controles-2 (adenomas colorrectales) y los Casos de CCR, es importante destacar que no todos los artículos utilizaban muestras de los mismos tipos de adenomas colorrectales, estudiando una amplia variedad de tipos histológicos dentro de la denominación de adenoma colorrectal. Además, actualmente hay menos trabajos que relacionen la presencia de FN con los adenomas colorrectales, por tanto, la escasez de artículos unida a la falta de uniformidad de criterios para la selección de las muestras indica que en un futuro debería estudiarse esta asociación con más profundidad, debiéndose analizar también si FN contribuye más que a la formación del adenoma a la malignización de este.

Hay múltiples artículos, entre los que destacan Mima et al.28, Yu et al.5 y Lee et al.46, entre otros, que relacionan la supervivencia del CCR en función de la presencia o ausencia de FN, si bien no hay trabajos que demuestren que con la erradicación de la bacteria pudiera obtenerse un mejor pronóstico en el tratamiento del tumor o una mejora en el tratamiento quimioterápico. Tampoco hay estudios que relacionen el tener una buena higiene dental con la presencia de CCR, ya que al ser FN una bacteria colonizadora de la cavidad oral, podría estudiarse la relación entre su cantidad en dicha cavidad y en la mucosa colónica.

La principal limitación de esta revisión sistemática es la inclusión de trabajos publicados en MEDLINE PubMed y no en otras bases de datos ni las tesis doctorales sobre el tema. Por este motivo asumimos que, aunque escasa, se ha podido perder información publicada, que, por otro lado, presumiblemente podría ser poco relevante. En cuanto a la limitación del idioma, solo se han incluido trabajos publicados en inglés y en español, aunque la mayoría de las revistas indexadas en MEDLINE estaban publicadas en inglés, y solo se excluyeron por este motivo 2 trabajos. Incluso la asociación de mayor frecuencia de FN en las muestras de CCR no implica una causalidad que pueda permitir una estrategia preventiva. Podría ser una consecuencia del tejido tumoral que facilitara la infección posterior por FN.

Conclusiones

En base a los resultados de esta revisión sistemática y metaanálisis encontramos que existe asociación entre la presencia de FN y el CCR. Finalmente, para obtener una conclusión definitiva, es necesario que se desarrollen nuevos estudios comparativos, con un número suficiente de pacientes, que utilicen la combinación de varias técnicas microbiológicas para un mismo sujeto y muestra, y analicen simultáneamente tejidos neoplásico y sano, mediante técnicas estandarizadas y con una adecuada sensibilidad.

Conflicto de intereses

Los autores declaran no tener ningún conflicto de intereses.

Bibliografía
[1]
L.A. Torre, F. Bray, R.L. Siegel, J. Ferlay, J. Lortet-Tieulent, A. Jemal.
Global cancer statistics, 2012.
CA Cancer J Clin., 65 (2015), pp. 87-108
[2]
D. Furman, J. Campisi, E. Verdin, P. Carrera-Bastos, S. Targ, C. Franceschi, et al.
Chronic inflammation in the etiology of disease across the life span.
Nat Med., 25 (2019), pp. 1822-1832
[3]
V.S. Benson, J. Patnick, A.K. Davies, M.R. Nadel, R.A. Smith, W.S. Atkin.
International Colorectal Cancer Screening Network Colorectal cancer screening: a comparison of 35 initiatives in 17 countries.
Int J Cancer., 122 (2008), pp. 1357-1367
[4]
A.D. Kostic, E. Chun, L. Robertson, J.N. Glickman, C.A. Gallini, M. Michaud, et al.
Fusobacterium nucleatum potentiates intestinal tumorigenesis and modulates the tumor-immune microenvironment.
Cell Host Microbe., 14 (2013), pp. 207-215
[5]
J. Yu, Q. Feng, S.H. Wong, D. Zhang, Q.Y. Liang, Y. Qin, et al.
Metagenomic analysis of faecal microbiome as a tool towards targeted non-invasive biomarkers for colorectal cancer.
[6]
L.A. Guevara Jr., A.C.F. Afable, P.J.O. Belza, K.J.S. Dy, S.J.Q. Lee, T.T. Sy-Ortin, et al.
Immunogenicity of a Fap2 peptide mimotope of Fusobacterium nucleatum and its potential use in the diagnosis of colorectal cancer.
Infect Agent Cancer., 13 (2018), pp. 11
[7]
Zerón, A. Gutiérrez de Velasco, D. Porras Lira.
Fusobacterium nucleatum ¿Un patógeno periodontal promotor de carcinogénesis colorrectal?.
Revista ADM., 73 (2016), pp. 280-285
[8]
J.P. Nougayrède, S. Homburg, F. Taieb, M. Boury, E. Brzuszkiewicz, G. Gottschalk, et al.
Escherichia coli induces DNA double-strand breaks in eukaryotic cells.
Science., 313 (2006), pp. 848-851
[9]
M. Xu, M. Yamada, M. Li, H. Liu, S.G. Chen, Y.W. Han.
FadA from Fusobacterium nucleatum utilizes both secreted and nonsecreted forms for functional oligomerization for attachment and invasion of host cells.
J Biol Chem., 282 (2007), pp. 25000-25009
[10]
Y.N. Yu, T.C. Yu, H.J. Zhao, T.T. Sun, H.M. Chen, H.Y. Chen, et al.
Berberine may rescue Fusobacterium nucleatum-induced colorectal tumorigenesis by modulating the tumor microenvironment.
Oncotarget., 6 (2015), pp. 32013-32026
[11]
A. Idrissi Janati, I. Karp, H. Sabri, E. Emami.
Is a Fusobacterium nucleatum infection in the colon a risk factor for colorectal cancer?: a systematic review and meta-analysis protocol.
[12]
R. DerSimonian, N. Laird.
Meta-analysis in clinical trials.
Control Clin Trials., 7 (1986), pp. 177-188
[13]
C.B. Begg, M. Mazumdar.
Operating characteristics of a rank correlation test for publication bias.
Biometrics., 50 (1994), pp. 1088-1101
[14]
M. Egger, G. Davey Smith, M. Schneider, C. Minder.
Bias in meta-analysis detected by a simple, graphical test.
BMJ., 315 (1997), pp. 629-634
[15]
M. Castellarin, R.L. Warren, J.D. Freeman, L. Dreolini, M. Krzywinski, J. Strauss, et al.
Fusobacterium nucleatum infection is prevalent in human colorectal carcinoma.
Genome Res., 22 (2012), pp. 299-306
[16]
M.R. Rubinstein, X. Wang, W. Liu, Y. Hao, G. Cai, Y.W. Han.
Fusobacterium nucleatum promotes colorectal carcinogenesis by modulating E-cadherin/β-catenin signaling via its FadA adhesin.
Cell Host Microbe., 14 (2013), pp. 195-206
[17]
R.L. Warren, D.J. Freeman, S. Pleasance, P. Watson, R.A. Moore, K. Cochrane, et al.
Co-occurrence of anaerobic bacteria in colorectal carcinomas.
Microbiome., 1 (2013), pp. 16
[18]
L. Flanagan, J. Schmid, M. Ebert, P. Soucek, T. Kunicka, V. Liska, et al.
Fusobacterium nucleatum associates with stages of colorectal neoplasia development, colorectal cancer and disease outcome.
Eur J Clin Microbiol Infect Dis., 33 (2014), pp. 1381-1390
[19]
L. Mira-Pascual, R. Cabrera-Rubio, S. Ocon, P. Costales, A. Parra, A. Suarez, et al.
Microbial mucosal colonic shifts associated with the development of colorectal cancer reveal the presence of different bacterial and archaeal biomarkers.
J Gastroenterol., 50 (2015), pp. 167-179
[20]
T. Tahara, E. Yamamoto, H. Suzuki, R. Maruyama, W. Chung, J. Garriga, et al.
Fusobacterium in colonic flora and molecular features of colorectal carcinoma.
Cancer Res., 74 (2014), pp. 1311-1318
[21]
M. Ito, S. Kanno, K. Nosho, Y. Sukawa, K. Mitsuhashi, H. Kurihara, et al.
Association of Fusobacterium nucleatum with clinical and molecular features in colorectal serrated pathway.
Int J Cancer., 137 (2015), pp. 1258-1268
[22]
K. Mima, Y. Sukawa, R. Nishihara, Z.R. Qian, M. Yamauchi, K. Inamura, et al.
Fusobacterium nucleatum and T cells in colorectal carcinoma.
JAMA Oncol., 1 (2015), pp. 653-661
[23]
M.H. Fukugaiti, A. Ignacio, M.R. Fernandes, U. Ribeiro Júnior, V. Nakano, M.J. Avila-Campos.
High occurrence of Fusobacterium nucleatum and Clostridium difficile in the intestinal microbiota of colorectal carcinoma patients.
Braz J Microbiol., 46 (2015), pp. 1135-1140
[24]
K. Nosho, Y. Sukawa, Y. Adachi, M. Ito, K. Mitsuhashi, H. Kurihara, et al.
Association of Fusobacterium nucleatum with immunity and molecular alterations in colorectal cancer.
World J Gastroenterol., 22 (2016), pp. 557-566
[25]
J. Repass, N. Maherali, K. Owen, Reproducibility Project: Cancer Biology, Reproducibility project cancer biology.
Registered report: Fusobacterium nucleatum infection is prevalent in human colorectal carcinoma.
Elife., 5 (2016), pp. e10012
[26]
Y.Y. Li, Q.X. Ge, J. Cao, Y.J. Zhou, Y.L. Du, B. Shen, et al.
Association of Fusobacterium nucleatum infection with colorectal cancer in Chinese patients.
World J Gastroenterol., 22 (2016), pp. 3227-3233
[27]
J. Yu, Y. Chen, X. Fu, X. Zhou, Y. Peng, L. Shi, et al.
Invasive Fusobacterium nucleatum may play a role in the carcinogenesis of proximal colon cancer through the serrated neoplasia pathway.
Int J Cancer., 139 (2016), pp. 1318-1326
[28]
K. Mima, R. Nishihara, Z.R. Qian, Y. Cao, Y. Sukawa, J.A. Nowak, et al.
Fusobacteriumnucleatum in colorectal carcinoma tissue and patient prognosis.
Gut., 65 (2016), pp. 1973-1980
[29]
Y. Suehiro, K. Sakai, M. Nishioka, S. Hashimoto, T. Takami, S. Higaki, et al.
Highly sensitive stool DNA testing of Fusobacterium nucleatum as a marker for detection of colorectal tumours in a Japanese population.
Ann Clin Biochem., 54 (2017), pp. 86-91
[30]
Q. Liang, J. Chiu, Y. Chen, Y. Huang, A. Higashimori, J. Fang, et al.
Fecal bacteria act as novel biomarkers for noninvasive diagnosis of colorectal cancer.
Clin Cancer Res., 23 (2017), pp. 2061-2070
[31]
S.H. Wong, T.N.Y. Kwong, T.C. Chow, A.K.C. Luk, R.Z.W. Dai, G. Nakatsu, et al.
Quantitation of faecal Fusobacterium improves faecal immunochemical test in detecting advanced colorectal neoplasia.
Gut., 66 (2017), pp. 1441-1448
[32]
R.S. Mehta, R. Nishihara, Y. Cao, M. Song, K. Mima, Z.R. Qian, et al.
Association of dietary patterns with risk of colorectal cancer subtypes classified by Fusobacteriumnucleatum in tumor tissue.
JAMA Oncol., 3 (2017), pp. 921-927
[33]
Y. Chen, Y. Peng, J. Yu, T. Chen, Y. Wu, L. Shi, et al.
Invasive Fusobacterium nucleatum activates beta-catenin signaling in colorectal cancer via a TLR4/P-PAK1 cascade.
Oncotarget., 8 (2017), pp. 31802-31804
[34]
X. Ye, R. Wang, R. Bhattacharya, D.R. Boulbes, F. Fan, L. Xia, et al.
Fusobacterium nucleatum subspecies animalis influences proinflammatory cytokine expression and monocyte activation in human colorectal tumors.
Cancer Prev Res (Phila)., 10 (2017), pp. 398-409
[35]
E.L. Amitay, S. Werner, M. Vital, D.H. Pieper, D. Höfler, I.J. Gierse, et al.
Fusobacterium and colorectal cancer: causal factor or passenger? Results from a large colorectal cancer screening study.
Carcinogenesis., 38 (2017), pp. 781-788
[36]
H.E. Park, J.H. Kim, N.Y. Cho, H.S. Lee, G.H. Kang.
Intratumoral Fusobacterium nucleatum abundance correlates with macrophage infiltration and CDKN2A methylation in microsatellite-unstable colorectal carcinoma.
Virchows Arch., 471 (2017), pp. 329-336
[37]
V. Eklöf, A. Löfgren-Burström, C. Zingmark, S. Edin, P. Larsson, P. Karling, et al.
Cancer-associated fecal microbial markers in colorectal cancer detection.
Int J Cancer., 141 (2017), pp. 2528-2536
[38]
S. Bullman, C.S. Pedamallu, E. Sicinska, T.E. Clancy, X. Zhang, D. Cai, et al.
Analysis of Fusobacterium persistence and antibiotic response in colorectal cancer.
Science., 358 (2017), pp. 1443-1448
[39]
J.L. Drewes, J.R. White, C.M. Dejea, P. Fathi, T. Iyadorai, J. Vadivelu, et al.
High-resolution bacterial 16S rRNA gene profile meta-analysis and biofilm status reveal common colorectal cancer consortia.
NPJ Biofilms Microbiomes., 3 (2017), pp. 34
[40]
Y. Yamaoka, Y. Suehiro, S. Hashimoto, T. Hoshida, M. Fujimoto, M. Watanabe, et al.
Fusobacterium nucleatum as a prognostic marker of colorectal cancer in a Japanese population.
J Gastroenterol., 53 (2018), pp. 517-524
[41]
Z. Dai, O.O. Coker, G. Nakatsu, W.K.K. Wu, L. Zhao, Z. Chen, et al.
Multi-cohort analysis of colorectal cancer metagenome identified altered bacteria across populations and universal bacterial markers.
[42]
L. Liu, F.K. Tabung, X. Zhang, J.A. Nowak, Z.R. Qian, T. Hamada, et al.
Diets that promote colon inflammation associate with risk of colorectal carcinomas that contain Fusobacterium nucleatum.
Clin Gastroenterol Hepatol., 16 (2018), pp. 1622-1631
[43]
T. Chen, Q. Li, J. Wu, Y. Wu, W. Peng, H. Li, et al.
Fusobacterium nucleatum promotes M2 polarization of macrophages in the microenvironment of colorectal tumours via a TLR4-dependent mechanism.
Cancer Immunol Immunother., 67 (2018), pp. 1635-1646
[44]
S. Guo, L. Li, B. Xu, M. Li, Q. Zeng, H. Xiao, et al.
A simple and novel fecal biomarker for colorectal cancer: ratio of Fusobacterium nucleatum to probiotics populations, based on their antagonistic effect.
Clin Chem., 64 (2018), pp. 1327-1337
[45]
Y. Komiya, Y. Shimomura, T. Higurashi, Y. Sugi, J. Arimoto, S. Umezawa, et al.
Patients with colorectal cancer have identical strains of Fusobacterium nucleatum in their colorectal cancer and oral cavity.
Gut., 68 (2019), pp. 1335-1337
[46]
D.W. Lee, S.W. Han, J.K. Kang, J.M. Bae, H.P. Kim, J.K. Won, et al.
Association between Fusobacterium nucleatum, pathway mutation, and patient prognosis in colorectal cancer.
Ann Surg Oncol., 25 (2018), pp. 3389-3395
[47]
S. Rezasoltani, H. Asadzadeh Aghdaei, H. Dabiri, A. Akhavan Sepahi, M.H. Modarressi, E. Nazemalhosseini Mojarad.
The association between fecal microbiota and different types of colorectal polyp as precursors of colorectal cancer.
Microb Pathog., 124 (2018), pp. 244-249
[48]
T. Hamada, X. Zhang, K. Mima, S. Bullman, Y. Sukawa, J.A. Nowak, et al.
Fusobacterium nucleatum in colorectal cancer relates to immune response differentially by tumor microsatellite instability status.
Cancer Immunol Res., 6 (2018), pp. 1327-1336
[49]
H.J. Oh, J.H. Kim, J.M. Bae, H.J. Kim, N.Y. Cho, G.H. Kang.
Prognostic impact of Fusobacterium nucleatum depends on combined tumor location and microsatellite instability status in stage II/III colorectal cancers treated with adjuvant chemotherapy.
J Pathol Transl Med., 53 (2019), pp. 40-49
[50]
M.A. Proença, J.M. Biselli, M. Succi, F.E. Severino, G.N. Berardinelli, A. Caetano, et al.
Relationship between Fusobacterium nucleatum, inflammatory mediators and microRNAs in colorectal carcinogenesis.
World J Gastroenterol., 24 (2018), pp. 5351-5365
[51]
S. Zhang, Y. Yang, W. Weng, B. Guo, G. Cai, Y. Ma, et al.
Fusobacterium nucleatum promotes chemoresistance to 5-fluorouracil by upregulation of BIRC3 expression in colorectal cancer.
J Exp Clin Cancer Res., 38 (2019), pp. 14
[52]
K. Saito, S. Koido, T. Odamaki, M. Kajihara, K. Kato, S. Horiuchi, et al.
Metagenomic analyses of the gut microbiota associated with colorectal adenoma.
PLoS One., 14 (2019), pp. e0212406
[53]
M. Guo, E. Xu, D. Ai.
Inferring bacterial infiltration in primary colorectal tumors from host whole genome sequencing data.
Front Genet., 10 (2019), pp. 213
[54]
Y.Y. Feng, D.Z. Zeng, Y.N. Tong, X.X. Lu, G.D. Dun, B. Tang, et al.
Alteration of microRNA-4474/4717 expression and CREB-binding protein in human colorectal cancer tissues infected with Fusobacterium nucleatum.
PLoS One., 14 (2019), pp. e0215088
[55]
H.S. Tunsjø, G. Gundersen, F. Rangnes, J.C. Noone, A. Endres, V. Bemanian.
Detection of Fusobacterium nucleatum in stool and colonic tissues from Norwegian colorectal cancer patients.
Eur J Clin Microbiol Infect Dis., 38 (2019), pp. 1367-1376
[56]
C. Bundgaard-Nielsen, U.T. Baandrup, L.P. Nielsen, S. Sørensen.
The presence of bacteria varies between colorectal adenocarcinomas, precursor lesions and non-malignant tissue.
BMC Cancer., 19 (2019), pp. 399
[57]
D.C. Guven, O. Dizdar, A. Alp, F.N. Akdoğan Kittana, D. Karakoc, E. Hamaloglu, et al.
Analysis of Fusobacterium nucleatum and Streptococcus gallolyticus in saliva of colorectal cancer patients.
Biomark Med., 13 (2019), pp. 725-735
[58]
S. Yachida, S. Mizutani, H. Shiroma, S. Shiba, T. Nakajima, T. Sakamoto, et al.
Metagenomic and metabolomic analyses reveal distinct stage-specific phenotypes of the gut microbiota in colorectal cancer.
Nat Med., 25 (2019), pp. 968-976
[59]
P.H.M. Leung, R. Subramanya, Q. Mou, K.T. Lee, F. Islam, V. Gopalan, et al.
Characterization of mucosa-associated microbiota in matched cancer and non-neoplastic mucosa from patients with colorectal cancer.
Front Microbiol., 10 (2019), pp. 1317
[60]
A.T. Kunzmann, M.A. Proença, H.W. Jordao, K. Jiraskova, M. Schneiderova, M. Levy, et al.
Fusobacterium nucleatum tumor DNA levels are associated with survival in colorectal cancer patients.
Eur J Clin Microbiol Infect Dis., 38 (2019), pp. 1891-1899
[61]
J. Butt, M. Jenab, M. Pawlita, K. Overvad, A. Tjonneland, A. Olsen, et al.
Antibody responses to Fusobacterium nucleatum proteins in prediagnostic blood samples are not associated with risk of developing colorectal cancer.
Cancer Epidemiol Biomarkers Prev., 28 (2019), pp. 1552-1555
[62]
A.C. De Carvalho, L. de Mattos Pereira, J.G. Datorre, W. Dos Santos, G.N. Berardinelli, M.M. Matsushita, et al.
Microbiota profile and impact of Fusobacterium nucleatum in colorectal cancer patients of Barretos Cancer Hospital.
Front Oncol., 9 (2019), pp. 813
[63]
Y. Chen, Y. Lu, Y. Ke, Y. Li.
Prognostic impact of the Fusobacterium nucleatum status in colorectal cancers.
Medicine (Baltimore)., 98 (2019), pp. e17221
[64]
K. Mima, Y. Sakamoto, K. Kosumi, Y. Ogata, K. Miyake, Y. Hiyoshi, et al.
Mucosal cancer-associated microbes and anastomotic leakage after resection of colorectal carcinoma.
Surg Oncol., 32 (2020), pp. 63-68
[65]
J.Q. Liang, T. Li, G. Nakatsu, Y.X. Chen, T.O. Yau, E. Chu, et al.
A novel faecal Lachnoclostridium marker for the non-invasive diagnosis of colorectal adenoma and cancer.
Gut., 69 (2020), pp. 1248-1257
[66]
K. Haruki, K. Kosumi, T. Hamada, T.S. Twombly, J.P. Väyrynen, S.A. Kim, et al.
Association of autophagy status with amount of Fusobacterium nucleatum in colorectal cancer.
J Pathol., 250 (2020), pp. 397-408
[67]
S. Chen, T. Su, Y. Zhang, A. Lee, J. He, Q. Ge, et al.
Fusobacterium nucleatum promotes colorectal cancer metastasis by modulating KRT7-AS/KRT7.
Gut Microbes., 11 (2020), pp. 511-525
[68]
H. Hussan, S.K. Clinton, K. Roberts, M.T. Bailey.
Fusobacterium's link to colorectal neoplasia sequenced: A. systematic review future insights.
World J Gastroenterol., 23 (2017), pp. 8626-8650
[69]
K. Yamamura, Y. Baba, K. Miyake, K. Nakamura, H. Shigaki, K. Mima, et al.
Fusobacterium nucleatum in gastroenterological cancer: Evaluation of measurement methods using quantitative polymerase chain reaction and a literature review.
Oncol Lett., 14 (2017), pp. 6373-6378
[70]
T. Yu, F. Guo, Y. Yu, T. Sun, D. Ma, J. Han, et al.
Fusobacterium nucleatum promotes chemoresistance to colorectal cancer by modulating autophagy.
[71]
X. Yan, L. Liu, H. Li, H. Qin, Z. Sun.
Clinical significance of Fusobacterium nucleatum, epithelial-mesenchymal transition, and cancer stem cell markers in stage III/IV colorectal cancer patients.
Onco Targets Ther., 10 (2017), pp. 5031-5046
[72]
A. Ramos, M.T. Hemann.
Drugs, bugs, and cancer: Fusobacterium nucleatum promotes chemoresistance in colorectal cancer.
[73]
A. Bashir, A.Y. Miskeen, A. Bhat, K.M. Fazili, B.A. Ganai.
Fusobacterium nucleatum: an emerging bug in colorectal tumorigenesis.
Eur J. Cancer Prev, 24 (2015), pp. 373-385
[74]
C.M. Dejea, E.C. Wick, E.M. Hechenbleikner, J.R. White, J.L. Mark Welch, B.J. Rossetti, et al.
Microbiota organization is a distinct feature of proximal colorectal cancers.
Proc Natl Acad Sci U.S.A., 111 (2014), pp. 18321-18326
[75]
A. Bradford-Hill.
The environment and disease: association and causation.
Proc R Soc Med., 58 (1965), pp. 295-300
[76]
C. Mantilla, Suárez-Mellado, A. Duque-Jaramillo, M.C. Navas.
Mecanismos de señalización por β-catenina y su papel en la carcinogénesis.
CES Med., 29 (2015), pp. 109-128
Copyright © 2021. Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica
Descargar PDF
Opciones de artículo
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos