covid
Buscar en
Revista Española de Reumatología
Toda la web
Inicio Revista Española de Reumatología El óxido nítrico y el cartílago articular
Información de la revista
Vol. 27. Núm. 3.
Páginas 99-106 (marzo 2000)
Compartir
Compartir
Más opciones de artículo
Vol. 27. Núm. 3.
Páginas 99-106 (marzo 2000)
Acceso a texto completo
El óxido nítrico y el cartílago articular
Nitric oxide and articular cartilage
Visitas
13054
Francisco J Blanco Garcíaa, Francisco J de Torob, Fausto Galdo Fernándezc
a Médico adjunto. Laboratorio de Investigación del Cartílago. Servicio de Reumatología. Hospital Juan Canalejo. A Coruña.
b Profesor Titular. Departamento de Ciencias Morfológicas. Universidade Da Coruña. A Coruña.
c Jefe de Servicio. Laboratorio de Investigación del Cartílago. Servicio de Reumatología. Hospital Juan Canalejo. A Coruña.
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Texto completo
Bibliografía
Estadísticas
Texto completo

En 1987 dos grupos de investigadores, uno inglés y otro norteamericano, llegaron1,2, de forma independiente pero simultánea, a la conclusión de que el factor relajante derivado del endotelio (EDRF), descubierto en 1980 por Furchgott y Zawadski, era el óxido nítrico (NO). Desde entonces esta molécula ha sido investigada ampliamente y se le han atribuido diferentes funciones: actúa como un mensajero neurológico en la erección del pene3; causa la relajación del músculo liso; inhibe la agregación de las plaquetas4; inhibe la adhesión de los leucocitos; interviene en la capacidad tumoricida y bactericida de los macrófagos5; interviene en los procesos de neurotoxicidad y neuroprotección6, e inhibe la proliferación celular7.

Su función en las enfermedades reumáticas, y concretamente en la artritis y la artrosis, ha alcanzado durante los últimos años un gran interés. En este trabajo haremos una revisión sobre los conocimientos actuales del NO y su relación con el cartílago articular humano.

El óxido nítrico

Biosíntesis y bioquímica

El óxido nítrico es un radical libre gaseoso, sintetizado a partir de la oxidación del aminoácido L-arginina por una familia de enzimas llamadas sintetasas del óxido nítrico (NOS) (fig. 1). El NO es un radical gaseoso, es lábil y en presencia de oxígeno rapidamente se metaboliza a nitritos y nitratos. La bioquímica del NO es compleja y puede envolver a varias formas redox relacionadas. Las más importantes reacciones biológicas son las que tiene con el óxigeno, con iones metálicos y con radicales tioles libres. El NO tiene una vida media corta (t1/2 < 15 s), sin embargo cuando el NO reacciona con los radicales libres se producen unos productos más estables (t1/2 > h) y además mantiene sus propiedades biológicas. El NO puede reaccionar también con radicales libres de óxigeno originándose peroxinitrito, que tiene efectos tóxicos sobre las células y tejidos. Finalmente, el NO estimula la ribosilación del ADP y de la enzima gliceroaldehído 3 fosfato-deshidrogenasa (GAPDH) en las plaquetas y otros tipos de células. Esta modificación de GAPDH inhibe la actividad de la enzima y disminuye los depósitos de energía intracelulares. El NO promueve la ADP-ribosilación de la G-actina en los neutrófilos humanos, lo que se asocia con la inhibición de la polimerización de la actina y la formación de sus fibras.

Genes del NO

El NO es sintetizado en las células de los mamíferos por una familia de tres enzimas llamadas sintetasas del óxido nítrico. Esta familia de enzimas ha recibido diversas nomenclaturas (tabla 1). La nomenclatura utilizada inicialmente se basaba en las primeras observaciones según las cuales la síntesis del NO se producía principalmente en células no activadas, aunque se podría inducir su síntesis si se sometían a estímulos inductores. Así, se utilizó la clasificación de inducible (iNOS) localizada principalmente en los macrófagos, y constitutiva (cNOS) localizada en las neuronas (nNOS) y las células endoteliales (eNOS). Sin embargo, ahora sabemos que el grado de expresión genética de las dos formas constitutivas (nNOS y eNOS) puede ser también inducido por diferentes estímulos fisiológicos, y que la forma inducida (iNOS) funciona, asimismo, como una enzima constitutiva en determinadas condiciones fisiológicas en algunas células8. Por este motivo, actualmente no es totalmente aceptada la clasificación de inducible frente a constitutiva, y algunos autores prefieren la clasificación que hace referencia a cada uno de los tejidos en los que originalmente se aislaron los ADNc y las proteínas de las isoformas de la enzima: nNOS (neuronas); iNOS (macrófagos), y eNOS (endotelio)9.

El nNOS fue originalmente purificado y clonado en el tejido neuronal. Sin embargo, hoy sabemos que la nNOS se localiza en otros tejidos, como el músculo esquelético, donde existe una gran expresión de este gen.

El iNOS fue originalmente purificado y clonado en una línea celular macrofágica de ratón inmunoactivada, pero actualmente se ha demostrado su presencia en múltiples tejidos y células (músculo cardíaco, hepatocitos, glía, condrocitos, etc.). La enzima inducible de los macrófagos murinos evidencia sólo un 50% de igualdad en la secuencia con respecto a la enzima neuronal. Como el NOS neuronal el NOS macrófagico tiene lugares de reconocimiento para FAD, FMN y NADPH y posee igualmente un lugar de unión a la calmodulina. El ARNm del NOS macrófagico está ausente en los macrófagos no activados o en el bazo, pero se puede detectar 2-6 h después del tratamiento con endotoxinas.

La eNOS, la última de las tres formas aisladas, fue originalmente purificada y clonada en el endotelio vascular. También se ha demostrado su presencia en el miocardio, las plaquetas y el hipocampo. Este gen codifica una proteína de 1.205 aminoácidos con una masa molecular de 133 kDa. La secuencia de aminoácidos de la eNOS difiere en numerosos residuos de la secuencia determinada para la proteína cerebral bovina purificada, muestra entre un 50-60% de igualdad con la secuencia de las isoformas del macrófago murino y del cerebro de ratas.

Claramente, la misma isoforma puede tener diferentes funciones biológicas cuando se expresa en diferentes tejidos. Por ejemplo, el nNOS ARNm genera dos proteínas estructuralmente diferentes cuando la enzima está localizada en las neuronas o en el músculo esquelético10. Otro ejemplo de regulación específica del tejido es la que tiene lugar con la eNOS en las células endoteliales y en el miocardio11. Por otra parte, la complejidad de la catálisis de NOS, reflejada por la diversidad de cofactores y cosustratos de NOS, confirma también la existencia de importantes diferencias entre los tejidos y sus mecanismos de regulación.

A pesar de estas diferencias, existen también datos relevante desde el punto de vista bioquímico que son comunes a las tres isoformas. En ellas, aproximadamente el 55% de los aminoácidos que forman la secuencia son iguales, en particular aquellas regiones de la proteína que intervienen en la reacción enzimática12.

Regulación de las isoformas de NOS

La actividad de la enzima NOS puede ser manipulada actuando a distintos niveles de la reacción enzimática que ocasiona la síntesis de NO (tabla 1). Las diferentes formas de la enzima tienen un esquema similar de la zona catálica, lo que afecta a la oxidación de los cinco electrones del nitrógeno terminal guanidínico del aminoácido L-arginina para formar NO y L-citrulina. En esta reacción compleja se necesita oxígeno y NADPH como sustratos y numerosos cofactores redox, entre los que se incluyen FAD, FMN, tioles reducidos y tetrahidrobiopterinas (fig. 1).

 

Calcio y calmodulina. En las tres formas de la enzima, la síntesis de NO depende de la capacidad de la enzima para unirse a la proteína reguladora del calcio, llamada calmodulina. Para que eNOS y nNOS se unan a la proteína calmodulina, y en consecuencia que se activen, es necesario un incremento en la concentración de Ca2+ intracelular. Las isoformas eNOS y nNOS se vuelven totalmente activas con concentraciones de Ca2+ mayores o iguales de 500 nM14,15. Por el contrario, la calmodulina asociada a iNOS tiene una gran afinidad por el Ca2+, de esta forma son necesarios valores muy bajos para poder activar la enzima, y las variaciones en las concentraciones no afectan a la unión de la iNOS con la calmodulina ni, por lo tanto, al proceso de activación y desactivación de la enzima12. De esto se deduce que la actividad de la eNOS y la nNOS está en gran parte modulada por los cambios intracitoplasmáticos de Ca2+, mientras que la actividad de la iNOS en células inmunoactivadas no depende de forma tan estricta de las concentraciones de calcio. Esto llevó a pensar que la nNOS y eNOS eran dependientes del calcio y la iNOS era independiente del calcio. Hoy sabemos que esto no es cierto, y que lo que existe en realidad es una diferencia en la concentración del calcio necesario para unirse a la calmodulina5,13.

 

Cofactores de NOS. Todas las isoformas de NOS requieren la presencia de L-arginina, tetrahidrobipoterina, NADPH, FAD y FMN para la plena actividad enzimática y la consiguiente síntesis de NO. Teniendo en cuenta estas necesidades, se han sintetizado una serie de fármacos capaces de inhibir la síntesis del NO. En el caso de la NG-monometil-L-arginina (L-NMMA), N-iminoetil-L-ornitina (L-NIO) y NG-nitro-L-arginina metiléster (L-NAME), la inhibición tiene lugar porque compiten por la enzima con el verdadero sustrato de la reacción (L-arginina). Por otra parte, considerando la necesidad de una flavoproteína dependiente de NADPH, se demostró que los inhibidores de las flavoproteínas, como la difenileneiodonium (DPI), di-2-tieniliodonium (DTI) e iodoniumdifenil (ID), inhiben también las NOS de los macrófagos y del endotelio16.

Efectos moleculares del NO

El efecto biológico del NO varía en función de cuál sea el tipo de enzima que lo sintetiza. En condiciones aeróbicas, el NO se oxida espontáneamente y da lugar a su forma inactiva, estable y definitiva los nitritos y los nitratos. Esta propiedad explica la particularidad ya descrita de los mamíferos, que excretan más nitratos de los que ingieren, especialmente si existe inflamación. La breve vida media del NO (8-10 s) limita su campo de acción en lo referente a efectos autocrinos y paracrinos. La alta afinidad por la hemoglobina aumenta aún más sus límites de acción. Sin embargo, la longevidad y el rango de sus efectos fisiológicos pueden extenderse, debido a la formación de los productos estables biológicamente activos cuando reaccionan con proteínas y otras moléculas (tablas 2 y 3)17,18.

El NO presenta una alta afinidad por los átomos de hierro, pertenecientes o no a un grupo hemo asociado a una proteína19. De esta forma, la unión del NO con el grupo hemo de la enzima guanilato-ciclasa provoca su activación, aumentando los valores intracelulares del GMPc en muchos tipos de células20. La unión del NO con el hierro unido a grupos sulfhidrilo, como en el caso de la aconitasa y de los complejos I y II de la cadena mitocondrial respiratoria, inhibe la fosforilación oxidativa21. En los macrófagos, esto da lugar a un incremento compensador del grado de glucólisis, a pesar de la habilidad del NO para inhibir la GAPDH en algunas células22. La inhibición de la GAPDH se produce por la activación de la enzima ADP-ribosil transferasa, la cual origina su ADP-ribosilación, o por la nitrosilación directa de la GADPH, que produce el NO23.

La enzima ribonucleótido reductasa es otra enzima que contiene hierro y es inhibida por el NO24. La inhibición produce la pérdida de un radical tirosil en el punto activo de la enzima. Al bloquearse esta enzima, el NO altera la síntesis del ADN y la división celular. El peroxinitrito, pero no el NO, nitrosila los residuos de la tirosina en la enzima superóxido dismutasa (SOD), así como en otras proteínas que contienen cobre25. El NO también es capaz de causar alteraciones genómicas. El NO puede inducir cambios en la secuencia del ADN mediante un mecanismo de deaminación de la citosina. También daña el ADN a través de reacciones de nitrosilación que producen la deaminación y causan la rotura de las cadenas del ADN26.

El NO posee importantes propiedades para combinarse ávidamente con el anión superóxido O2­1. Aunque originalmente se creyó que este anión tenía propiedades protectoras, especialmente en respuesta a la isquemia y la reperfusión, las más recientes investigaciones sugieren que esta reacción puede generar también efectos destructivos, particularmente el anión peroxinitrito27. El peroxinitrito puede descomponerse para formar el radical hidroxil-OH. La producción de estos radicales está ligada a la destrucción del tejido durante la inflamación28. Durante la reacción que genera peroxinitritos, el radical libre de un anión de superóxido derivado del oxígeno (O2­) inactiva el NO. Esto coincide con los efectos de la SOD, un bloqueante del superóxido (O2­) que también prolonga los efectos vasorrelajantes del NO. Esta prolongación se ha atribuido a la reacción entre O2­ con el NO. De modo opuesto, el NO puede ser considerado como un bloqueante del anión de superóxido, lo cual sugiere que el NO puede suministrar una barrera química a los radicales libres de citotoxicidad29.

El NO reacciona en presencia de grupos tioles específicos de las proteínas para formar derivados de S-nitrosoproteínas, que tienen propiedades parecidas a las del factor relajante derivado del endote-lio. El plasma humano contiene aproximadamente 7 µ M S-nitrosothioles, de los cuales el 96% son S-nitrosoproteínas, y el 82% de estos últimos son parte de la albúmina-S-nitrosa sérica17,18. En cambio, los valores de plasma del óxido nítrico libre son de aproximadamente 3 nM. Este abundante complejo sirve probablemente como una reserva, con la cual los valores de plasma del óxido nítrico libre ­altamente reactivo y de corta duración­ pueden ser regulados para el mantenimiento del tono vascular.

El óxido nítrico en la articulación

El líquido sinovial procedente de las articulaciones humanas sanas contienen valores muy bajos de NO. Sin embargo, el líquido sinovial procedentes de pacientes con artrosis o artritis reumatoide poseen altas concentraciones de NO30. Los elementos celulares que forman parte de una articulación diartroidal humana son el condrocito del cartílago articular, el sinoviocito tipo fibroblasto, el sinoviocito tipo monocito/macrófago del tejido sinovial y las células del líquido sinovial que son principalmente células procedentes del torrente sanguíneo (células mononucleadas sanguíneas).

Los estudios realizados in vitro han demostrado que de todas las células que se pueden encontrar en una articulación, los condrocitos son las que sintetizan y liberan los valores más altos de NO, y también son los que expresan los valores más altos de ARNm y proteína de iNOS31,32. Los cultivos primarios de los condrocitos articulares humanos liberan valores bajos de NO. Sin embargo, la estimulación con la IL-1 ß provoca un incremento dependiente de la dosis, detectable después de 12 h y que continúa aumentándose durante las siguientes 72 h. La ciclohexamida o la actinomicina D bloquean por completo la formación del NO inducida por la IL-1, lo que significa que depende del ADN y de la síntesis de proteínas. La N-metil arginina, un inhibidor de la NOS, reduce la formación del NO inducido por la IL-1, y en un medio de cultivo como el DMEM sin el aminoácido L-arginina no hay síntesis de NO.

Los sinoviocitos y fibroblastos humanos no producen valores importantes del NO en respuesta a la estimulación con la IL-1 o cualquier otro agente que activase la actividad de la enzima NOS en los condrocitos primarios. Algunos autores han podido estimular la síntesis de NO por los sinoviocitos, pero las cantidades que se liberan son muy inferiores a las que se consiguen cuando se estimulan los condrocitos33,34.

Clonación de la NOS inducible de los condrocitos

El grupo de Salvador Moncada35 y el de Martin Lotz36 aislaron y clonaron el gen que sintetiza la enzima NOS en los condrocitos articulares humanos. Todos los análisis sobre la NOS por los condrocitos articulares humanos dieron como resultados las características de una NOS inducible. La iNOS de los condrocitos humanos es una proteína de 1.153 aminoácidos de longitud, tiene una homología del 78% con el ADNc de la forma clonada de los macrófagos y un 88% con la proteína. Con respecto a la nNOS y la eNOS existe una homología del 50% para el ADNc y del 65% para la proteína. Esta forma de iNOS conserva también los lugares de unión para los cofactores FMN, FAD, FADH y Ca2+/calmodulina. La homología de la iNOS de los condrocitos articulares humanos con el iNOS de los hepatocitos es altísima, prácticamente del 100%37.

El óxido nítrico en el cartílago articular normal

Como se ha mencionado anteriormente, de todos los tejidos que forman parte de una articulación, el cartílago es el tejido que tiene mayor capacidad para sintetizar NO. El cartílago articular normal no produce NO ni contiene expresión alguna de las iNOS, a menos que se estimule con citocinas proinflamatorias, como la IL-1 o el TNF- * 31,38. Los condrocitos superficiales estimulados con IL-1 producen más NO que las células de capas más profundas39. Sin embargo, el tejido sinovial humano tiene una escasa capacidad para sintetizar y liberar NO.

El NO producido en respuesta a la estimulación con citocinas ejerce unos determinados efectos catabólicos que cabría esperar que favoreciesen la degradación del cartílago articular. Entre estos efectos del NO en los condrocitos podemos citar: a) inhibición de la síntesis del colágeno y proteoglicanos40-42; b) activación de metaloproteasas43; c) incremento de la susceptibilidad al daño inducido por otros oxidantes (H2O2)44; d) disminución de la expresión de IL-1 receptor antagonista43; e) inhibición de la proliferación celular7, y f) inducción de apoptosis44. Otras posibles acciones proinflamatorias del NO en la artritis incluyen el aumento de vasodilatación y permeabilidad, la potenciación del TNF y la IL-1 liberada por leucocitos, y la estimulación de la actividad angiogénica por los monocitos/macrófagos.

El efecto de diferentes citocinas sobre la síntesis del NO presenta unas peculiaridades específicas. Todos los factores, incluidos el TNF, IL-1, LIF y LPS, de los que se conoce su capacidad para inducir respuestas catabólicas y proinflamatorias en los condrocitos, estimulan la síntesis del NO. Por el contrario, el TGF ß, que es el factor de crecimiento más potente en los condrocitos y que estimula la formación de la matriz extracelular, no induce valores detectables en la síntesis de NO7,31.

A partir de estos hallazgos, se puede concluir que la síntesis del NO es parte del programa catabólico de los condrocitos.

El NO y las prostaglandinas en el cartílago articular humano

Las prostaglandinas (PG) son unos mediadores inflamatorios sintetizados por la enzima ciclooxigenasa (COX). El tejido sinovial y los condrocitos ar-ticulares humanos, sometidos a los estímulos adecuados, pueden sintetizar PG (PGE2, prostaciclina y PGF2 * ). La IL-1, el TNF- * y el NO son los estímulos capaces de inducir la síntesis de las prostaglandinas, principalmente de la PGE2, en los condrocitos articulares humanos (fig. 2). No se conoce la función desempeñada por las prostaglandinas en la homeóstasis del cartílago y se han apuntado tanto efectos catabólicos como anabólicos. La PGE2 inhibe la proliferación de los condrocitos e inhibe la síntesis de proteoglicanos in vitro7,45.

Se conocen dos isoformas de esta enzima en los organismos eucariotas: una constituida (COX-1) y otra inducible (COX-2)46. Los condrocitos articulares procedentes de donantes humanos sin enfermedad articular y sin estar sometidos a ningún estímulo expresan únicamente COX-147,48. Si las células son estimuladas con citocinas como la IL-1, pueden expresar también COX-2, sin sufrir la COX-1 ningún tipo de modulación 47. Sin embargo, los condrocitos aislados de cartílagos artrósicos contienen la forma inducible sin necesitar estímulos proinflamatorios49.

Como podemos ver, las enzimas que sintetizan el NO y las PG tienen dos isoformas, una inducible (iNOS, COX-2) y otra constitutiva (cNOS, COX-1). La estimulación de las formas inducidas es producida por los mismos estímulos en ambos sistemas50,51. Además, una gran variedad de células (macrófagos, endotelio, condrocitos) pueden sintetizar las dos isoformas de las enzimas y liberar PG y NO51. Trabajos recientes demuestran una estrecha relación entre estos dos mecanismos enzimáticos, pero los resultados que se están obteniendo en cuanto a la conexión entre el NO y la enzima COX son contradictorios y varían dependiendo del tipo y especie celular utilizados. En los condrocitos humanos normales, el NO endógeno y exógeno aumenta la síntesis de PGE2 (posiblemente a través de su reacción con el componente heme, que forma parte de la zona activa de la enzima) y la PGE2 no tiene efecto en la producción de NO7. Sin embargo, en condrocitos de OA el NO disminuye la síntesis de PGE2, y en condrocitos de OA estimulados con citocinas, la inhibición de la síntesis de NO (por una molécula que inhibe el iNOS, la L-NMMA) aumenta la producción de PGE249. Estos efectos sobre la estimulación e inhibición de la síntesis de PG por el NO han sido confirmados por otros autores. Posiblemente la explicación a estos resultados dispares se encuentre en la metodología utilizada. Para aclarar este punto de confusión se ha formado un comité dentro del marco de la OARSI (Sociedad Internacional para la Investigación de la OA) con la finalidad de estandarizar las condiciones de los experimentos en este campo (Dr. Pujol y Dr. Henrotin, comunicación personal).

El óxido nítrico y la artrosis

Debido a sus propiedades eminentemente destructivas del cartílago articular, el NO puede ser un importante mediador de lesión articular crónica en la OA (fig. 3). En esta línea, se ha demostrado que los condrocitos artrósicos expresan iNOS (ARNm y proteína) y producen NO de forma espontánea52. La forma de iNOS aislada del cartílago artrósico resulta particularmente interesante a partir del momento en que sobrepasa el peso molecular de las iNOS caracterizadas previamente (150 kDa frente a 133 kDa) y su expresión no se ve inhibida por otros factores como el TGF ß o la hidrocortisona. El cartílago artrósico expresa iNOS y produce nitritos después de 72 h en cultivo, en ausencia de estímulos como IL-1 o TNF52. Esto indica que los estímulos existentes en la matriz extracelular del cartílago artrósico persisten durante un tiempo y son, por tanto, capaces de inducir la síntesis del NO. Además la cantidad de NO producido por el tejido artrósico esta en relación directa con el grado de lesión del cartílago53.

Otro hallazgo que hace pensar en la influencia del NO en la artrosis es la conexión de ambos elementos con la apoptosis. Por un lado el NO es capaz de inducir apoptosis en los condrocitos y, por otro lado, el cartílago artrósico contiene un porcentaje mayor de células en apoptosis que los cartílagos normales44,54. Si el NO es el responsable de la apoptosis en la artrosis es un punto que todavía no ha sido demostrado.

Finalmente, el papel del NO en la degradación del cartílago artrósico ha quedado claramente demostrado gracias a los estudios realizados en modelos animales de artrosis. En ellos, se ha observado que la inhibición de la síntesis del NO por los tejidos de la articulación retarda la degeneración del cartílago55.

El NO y el tratamiento de la degradación del cartílago

Como el NO liberado por los condrocitos activados tiene un poder dañino para el cartílago, representa un potencial objetivo para la intervención farmacológica en la OA y la AR. Hay evidencia que agentes utilizados actualmente en el tratamiento de las enfermedades reumáticas afecta la actividad del NO. El auronofin reduce la respuesta de la aorta de conejo al NO, mientras que los glucocorticoides y la ciclosporina inhiben la indución de iNOS en varios tejidos. Además el MTX puede inhibir la dihidroflolato reductasa que puede interferir en la síntesis de tetrahidrobiopterina, un cofactor necesario para la actividad de NOS. Las tretaciclinas inhiben la producción de NO por los condrocitos y macrófagos. Este efecto, que es debido al descenso de la expresión de la enzima iNOS, puede contribuir a la condroprotección, actividad de las tetraciclinas en los modelos animales56.

La inhibición de la producción de NO por los antiinflamatorios no esteroides (AINE) también ha sido demostrada57. En macrófagos de ratón, la aspirina inhibe la producción de nitritos por al menos dos mecanismos: 1) efecto sobre la transcripción/traslación, que inhibe la enzima NOS expresión por inmunoblot, y 2) la inhibición directa de la actividad específica de la enzima, principalmente por acetilación de NOS. En condrocitos articulares humanos normales y artrósicos también se ha demostrado que la aspirina, el tenidap, el diclofenaco y el aceclofenaco inhiben la síntesis del NO58,59. Sin embargo la indometacina y la dexametasona no son capaces de modificar su síntesis.

El condroitín sulfato in vitro tiene capacidad de inhibir la apoptosis inducida por el NO en los condrocitos articulares de conejo60; si estos resultados se pueden extrapolar a humanos está siendo probado en nuestro laboratorio. Por otro lado, Martin Lotz ha encontrado in vitro que el ácido hialurónico es capaz de inhibir la apoptosis inducida por NO en condrocitos humanos (comunicación personal).

En conclusión, el NO es un factor que favorece la degradación del cartílago articular. Por este motivo, la inhibición de la síntesis de NO o el bloqueo de sus efectos está siendo una de las armas terapéuticas que actualmente más se está investigando para prevenir la destrucción del cartílago articular y reducir la evolución de la artrosis y la artritis inflamatoria. Si los hallazgos demostrados in vitro tienen algún significado in vivo debe ser demostrado en el futuro.

Bibliografía
[1]
Ignarro L, Buga G, Wood K, Byrns K, Chaudhuri G..
Endotelium-derived relaxing factor produced an released from artery and vein is nitric oxide..
Proc Natl Acad Sci USA, 84 (1987), pp. 9265
[2]
Palmer R, Ferige A, Moncada S..
Nitric Oxide accounts for the biological activity of endothelium-derived relaxing factor..
Nature, 327 (1987), pp. 524
[3]
Rajfer J, Aronson W, Bush P, Dorey F, Ignarro L..
Nitric oxide as a mediator of the corpus cavernosum in response to non adrenergic non colinergic transmision..
N Engl J Med, 326 (1992), pp. 90
[4]
Radomski M, Palmer R, Moncada S..
An L-Arg/nitric oxide pathway in human platelets regulates agregation..
Proc Natl Acad Sci USA, 87 (1990), pp. 5193
[5]
Nathan C, Xie Q..
Nitric Oxide synthases: roles, tolls, and controls..
Cell, 78 (1994), pp. 915
[6]
Lipton S, Choi Y-B, Pan Z et al..
A redox based mechanism for neuroprotective and neurodestructive effects of nitric oxide an related nitroso compounds..
Nature, 364 (1993), pp. 626
[7]
Blanco FJ, Lotz M..
IL-1-induced nitric oxide inhibits chodrocyte proliferation via PGE2..
Exp Cell Res, 218 (1995), pp. 319-325
[8]
Guo F, De Raeve H, Rice T, Stuehr D, Thunnissen F, Erzurum S..
Continuous nitric oxide synthesis by inducible nitric oxide synthase in normal human airway epithelium in vivo..
Proc Natl Acad Sci USA, 92 (1995), pp. 7809
[9]
Moncada S, Higgs A, Furchgott R..
International Union of Pharmacology nomenclature in nitric oxide research..
Pharmacol Rev, 49 (1997), pp. 137
[10]
Silvagno F, Xia H, Bredt D..
Neuronal nitric-oxide synthase-µ an alternatively spliced isoform expressed in differentiated skeletal muscle..
J Biol Chem, 271 (1996), pp. 11204
[11]
Feron O, Belhassen L, Kobzik L, Smith T, Kelly R, Michel T..
Endothelial nitric oxide synthase targeting to caveolae: specific interactions with caveolin isoforms in cardiac myocytes and endothelial cells..
J Biol Chem, 271 (1996), pp. 22810
[12]
Mitchell P, Magna H, Reeves L et al..
Cloning, expression and type II collagenolytic activity of matric metalloproteinase-13 from human osteoarthritic cartilage..
J Clin Invest, 97 (1996), pp. 761-768
[13]
Marletta M..
Nitric Oxide synthase: aspects concerning structure and catalysis..
Cell, 78 (1994), pp. 927
[14]
Schini V, Vanhoutte P..
Inhibitors of calmodulin impair the constitutive but not the inducible nitric oxide synthase activity in the rat aorta..
J Pharmacol Exp Ther, 261 (1992), pp. 553
[15]
Forstermann U, Pollock J, Schmidt H, Heller M, Murad F..
Calmodulin-dependent endothelium-derived relaxing factor/nitric oxide synthase activity is present in the particularte and cytosolic fractions of bovine aortic endothelial cells..
Proc Natl Acad Sci USA, 88 (1991), pp. 1788
[16]
Stuehr D, Fasehum O, Kwon N et al..
Inhibition of macrophage and endothelial cell nitric oxide syntase by diphenyleneiodonium and its analogs..
FASEB J, 5 (1991), pp. 98
[17]
Stamler J, Jaraki O, Osborne J et al..
Nitric Oxide circulates in mammalian plasma primarily as an S-nitroso adduct of serum albumin..
Proc Natl Acad Sci USA, 80 (1992), pp. 4518
[18]
Stamler J..
Redox signaling: nitrosylation and related target interactions of Nitric Oxide..
Cell, 78 (1994), pp. 931
[19]
Lancaster J, Hibbs J..
EPR demonstration of iron-nitrosyl complex formation by cytotoxic activated macrophages..
Proc Natl Acad Sci USA, 87 (1990), pp. 1223
[20]
Ignarro L..
Signal trasduction mechanism involving nitric oxide..
Biochem Pharmacol, 41 (1991), pp. 485
[21]
Drapier J, Hibbs J..
Differentiation of murine macrophages to express non-specific cytotoxicity for tumor results in L-arginini-dependent inhibition of mitochondrial ironsulfur enzymes in the macrophage effector cells..
J Immunol, 140 (1988), pp. 2829
[22]
Dimmeler S, Lottspeich F, Vrune B..
Nitric oxide causes ADP-ribosylation and inhibition of gliceroaldehido-3 fosfato dehidrogenasa..
J Biol Chem, 267 (1992), pp. 16771
[23]
Brune B, Lapetina E..
Activation of a cytosolic ADP-ribosyltransferase by nitric oxidegenerating agents..
J Biol Chem, 264 (1989), pp. 8455
[24]
Leproivre M, Cherais B, Yapo A, Lemaure G, Thelander L, Tenu J..
Alteration of ribonucleotide reductase activity following induction of the nitrite-generating pathway in adenocarcinoma cells..
J Biol Chem, 265 (1990), pp. 14143
[25]
Ischiropoulos H, Zhu L, Chen J et al..
Peroxynitrite-mediated tyrosine nitration catalyzed by superoxide dismutase..
Arch Biochem Biophys, 298 (1992), pp. 431
[26]
Wink D, Kasprzak K, Maragos C et al..
DNA deaminating ability and genotoxicity of nitric oxide and its progenitors..
Science, 254 (1991), pp. 1001
[27]
Beckman J, Beckman T, Chen J, Marshall P, Freeman B..
Apparent hydroxyl radical production by peroxynitrite: implications for endothelial injury from nitric oxide and superoxide..
Proc Natl Acad Sci USA, 87 (1990), pp. 1620
[28]
Zhu L, Gunn C, Ischiropoulos H, Beckman J..
Peroxynitrite formation from macrophage-derived nitric oxide..
Arch Biochem Biophys, 298 (1992), pp. 446
[29]
Rubanyi G, Ho E, Cantor E, Lumma W, Botelho L..
Cytoprotective function of nitric oxide: inactivation of superoxide radicals produced by human leukocytes..
Biochem Biophys Res Commun, 181 (1991), pp. 1392
[30]
Farrell AJ, Blake DR, Palmer RM, Moncada S..
Increased concentrations of nitrite in synovial fluid and serum samples suggest increased nitric oxide synthesis in rheumatic diseases..
Ann Rheum Dis, 51 (1992), pp. 1219-1222
[31]
Rediske J, Koehne C, Zhang B, Lotz M..
The inducible production of nitric oxide articular cell types..
Osteoarthritis Cartilage, 2 (1994), pp. 199-206
[32]
Palmer R, Andrews T, Foxwell N, Moncada S..
Glucocorticoids do not affect the induction of a novel calcium-dependent nitric oxide synthase in rabbit chondrocytes..
Biochem Biophys Res Commun, 188 (1992), pp. 209
[33]
Stefanovi-Racic M, Stadler J, Evans C..
Nitric Oxide and arthritis..
Arthritis Rheum, 36 (1993), pp. 1036-1044
[34]
Stadler J, Stefanovic- Racic M, Biliar T..
Articular chondrocytes synthesize nitric oxide in response to cytokines and lipopolysaccharide..
J Immunol, 147 (1991), pp. 3915
[35]
Charles I, Palmer R, Hickery M et al..
Cloning, characterization, and expression of a cDNA encoding an inducible nitric oxide synthase from the human chondrocyte..
Proc Natl Acad Sci USA, 90 (1993), pp. 11419
[36]
Maier R, Bilbe G, Rediske J, Lotz M..
Inducible nitric oxide synthase from human articular chondrocytes: cDNA cloning and analysis of mRNA expressión..
Bioch Bioph Acta, 1208 (1994), pp. 145
[37]
Geller D, Lowenstein C, Shapiro R et al..
Cloning and characterization of nitric oxide synthase in human hepatocytes..
Proc Natl Acad Sci USA, 90 (18993), pp. 3491
[38]
Parmer RM, Hickery MS, Charles IG, Moncada S, Bayliss MT..
Induction of nitric oxide synthase in human chondrocytes..
Biochem Biophys Res Commun, 193 (1993), pp. 398-405
[39]
Hayashi T, Abe E, Yamate T, Taguchi Y, Jasin H..
Nitric oxide production by superficial and deep articular chodrocytes..
Arthritis Rheum, 40 (1997), pp. 261-269
[40]
Cao M, Westerhausen-Larson A, Niyibizi C, Kavalkovich K, Georgescu H, Rizzo C..
Nitric oxide inhibits the synthesis of type-II collagen without altering Co12A1 mRNA abundance: prolyl hydroxylase as a possible target..
Biochem J, 324 (1997), pp. 305-310
[41]
Stefanovi-Racic M, Morales T, Taskiran D, McIntyre L, Evans C..
The role of nitric oxide in proteloglycan turnover by bovine articular cartilage organ cultures..
J Immunol, 156 (1996), pp. 1213-1220
[42]
Taskiran D, Stefanovic-Racic M, Georgescu H, Evans C..
Nitric oxide mediates supression of cartilage proteoglycan synthesis by IL-1..
Biochem Biophys Res Commun, 200 (1994), pp. 142-148
[43]
Murral G, Jang D, Williams R..
Nitric oxide activates metalloproteases enzymes in articular cartilage..
Biochem Biophys Res Commun, 206 (1995), pp. 15-21
[44]
Blanco FJ, Ochs RL, Schwarz H, Lotz M..
Chondrocyte apoptosis induced by nitric oxide..
Am J Pathol, 146 (1995), pp. 75-85
[45]
O'keefe R, Crabb I, Puzas J, Rosier R..
Influence of prostaglandins on DNA and matrix synthesis in growth plate chondrocytes..
J Bone Mineral Res, 7 (1992), pp. 397
[46]
DeWitt D, Smith W..
Primary structure of prostaglandin G/H synthase from sheep vesicular gland determined from the complementary sequence..
Proc Natl Acad Sci USA, 85 (1988), pp. 1412-1416
[47]
Effect of anti-inflammatory drugs on Cox-1 and Cox-2 activity in human articular chondrocytes. J Rheumatol 1999 (en prensa).
[48]
Geng Y, Blanco FJ, Cornelisson M, Lotz M..
Regulation of cyclooxygenase-2 expression in human articular chondrocytes..
J Immunology, 155 (1995), pp. 796-801
[49]
Amin A, Attur M, Patel R et al..
Superinduction of cyclooxygenase-2 activity in human osteoarthritis-affected cartilage..
J Clin Invest, 99 (1997), pp. 1231-1237
[50]
Lotz M, Blanco FJ, Johanes V et al..
Cytokine regulation of chondrocyte functions..
J Rheumatol, 22(Supl43) (1994), pp. 104-108
[51]
Crofford L, Wilder R, Ristimaki A..
Cyclo-oxygenase-1 and -2 expression in rheumatoid synovial tissues. Effects of interleukin-1B, phorbol ester and corticosteroids..
J Clinical Investigation, 93 (1994), pp. 1095-1101
[52]
Amin AR, Di-Cesare PE, Vyas P et al..
The expression and regulation of nitric oxide synthase in human osteoarthritis-affected chondrocytes: evidence for up-regulated neuronal nitric oxide synthase..
J Exp Med, 182 (1995), pp. 2097-2102
[53]
Hashimoto S, Takashashi K, Amiel D, Coutts R, Lotz M..
Chodrocyte apoptosis and nitric oxide production during experimentally induced osteoarthritis..
[54]
Blanco FJ, Guitian R, Vázquez-Martul E, De Toro F, Galdo F..
Chondrocytes OA die by apoptosis: a possible explanation for ethipatogenesis of OA..
Arthritis Rheum, 38 (1998), pp. 540-545
[55]
Pelletier J, Jovanovic D, Fernandes J, Manning P..
Reduced progression of experimental osteoarthritis in vivo by selective inhibition of inducible nitric oxide synthase..
[56]
A novel mechanism of action of tetracyclines: effects on nitric oxide synthase. Proc Natl Acad Sci USA 1996: 93: 14014-14019.
[57]
Amin A, Vyas P, Attur M et al..
The mode of action of aspirin-like drugs: effect on inducible nitric oxide synthase..
Proc Natl Acad Sci USA, 92 (1995), pp. 7926-7930
[58]
Attur M, Patel R, Di Cesare P, Steiner G, Abramson S, Amin A..
Regulation of nitric oxide production by salicylates and tenidap in human OA-affected cartilage, rat chondrosarcomas and bovine chondrocytes..
Osteoarthritis and Cartilage, 6 (1998), pp. 269-277
[59]
Regulation of nitric oxide production by NSAIDs 1999 (en preparación).
[60]
Reveliere D, Mentz F, Merle-Beral H, Chevalier X..
Mechanisms of cell death of articular rabbit chondocytes induced by nitric oxide and protecting effect of condroitine 4/6 sulfate..
Arthritis Rheum, 41(Supl) (1998), pp. 50
Opciones de artículo
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos