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Vol. 84. Núm. 3.
Páginas 825-846 (septiembre 2013)
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Vol. 84. Núm. 3.
Páginas 825-846 (septiembre 2013)
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Lista sistemática y afinidades zoogeográficas de la ictiofauna del Sistema Arrecifal Veracruzano, México
Systematic checklist and zoogeographic affinities of ichthyofauna from Sistema Arrecifal Veracruzano, Mexico
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Luis Fernando Del Moral-Flore1,2, José Luis Tello-Musi2, Héctor Reyes-Bonilla3, Horacio Pérez-España4, José Antonio Martínez-Pérez2, Guillermo Horta-Puga2, Laura Adriana Velazco-Mendoza3, Patricia Alexandra Álvarez del Castillo-Cárdenas3
1 Posgrado en Ciencias Biológicas, Instituto de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México. Apartado postal 70-399, 04510 México, D. F. México
2 Facultad de Estudios Superiores Iztacala, Universidad Nacional Autónoma de México. Av. de los Barrios No. 1 Los Reyes Iztacala, 54090 Tlalnepantla, Estado de México, México
3 Departamento de Biología Marina, Universidad Autónoma de Baja California Sur. Carretera al sur Km 5.5, 23080 La Paz, Baja California Sur, México
4 Instituto de Ciencias Marinas y Pesquerías, Universidad Veracruzana. Calle Hidalgo 617 Col. Río Jamapa, 94290 Boca del Río, Veracruz, México
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Cuadro 1. Lista taxonómica de la ictiofauna registrada en el Sistema Arrecifal Veracruzano
Cuadro 2. Resultados de los análisis no paramétricos para evaluar la riqueza específica total de los peces del Sistema Arrecifal Veracruzano. La columna “campo” contiene los valores obtenidos en campo
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Resumen

Se presenta una lista taxonómica de la composición de la ictiofauna del Sistema Arrecifal Veracruzano. El inventario es resultado de los censos visuales realizados en el sistema arrecifal durante el periodo 2006 – 2011, el cual se complementó con las especies del sistema previamente registradas en la literatura y aquellas que se encuentran depositadas en colecciones de referencia. La lista incluye 387 especies, 206 géneros, 92 familias y 23 órdenes. Tres especies son nuevos registros para el litoral mexicano del golfo de México: Amphelikturus dendriticus, Hypleurochilus bermudensis y Opistognathus macrognathus. Las familias con mayor riqueza específica fueron: Serranidae (37 spp.), Carangidae (23), Haemulidae y Labridae (17), Gobiidae (16) y Pomacentridae (15). Las afinidades zoogeográficas de las especies están mejor representadas por la provincia Caribeña (78.87%), seguida por la provincia Caroliniana de la costa norte, noreste y noroeste del golfo de México (77.68%) y la Antillana (70.83%). Cinco especies son endémicas de los arrecifes del suroeste del golfo de México: Elacatinus jarocho, Halichoeres burekae, Hypoplectrus atlahua, H. castroaguirrei, Tigrigobius redimiculus. Se estimó el número total de especies esperadas en el sistema utilizando los métodos de Chao 1, Chao2, Jacknife 1 y 2 y bootstrap. Se encontró que la lista representa casi el 90% de la riqueza esperada, el mejor elenco sistemático del área hasta ahora.

Palabras clave:
lista de peces
Atlántico mexicano
peces marinos
ictiodiversidad
arrecifes coralinos
Abstract

We present an updated checklist of the systematic composition of fishes from the Veracruz Coral Reef System (VRS). The list is the result of underwater visual censuses done from 2006 to 2011, and it was completed with previously reported species at literature and those deposited in reference collections. The list includes 387 species, 206 genera, 92 families and 23 orders. Three species are new records for the Mexican coast of the Gulf of Mexico: Amphelikturus dendriticus, Hypleurochilus bermudensis and Opistognathus macrognathus. The families with the higher specific richness were: Serranidae (37 spp.), Carangidae (23), Haemulidae and Labridae (17), Gobiidae (16) and Pomacentridae (15). The zoogeographic affinities of the species were better represented by the Caribbean province (78.87%), followed by the Carolinian province of the North coast, Northeast and Northwest of the Gulf of Mexico (77.68%) and Antillean (71.83%). Five species are endemic to the VRS: Elacatinus jarocho, Halichoeres burekae, Hypoplectrus atlahua, H. castroaguirrei and Tigrigobius redimiculus. The total expected number of species was calculated using Chao 1, Chao 2, Jacknife 1 and 2, and bootstrap methods. It was found that our species list represents almost 90% of the expected richness, the best systematic list until now.

Key words:
fish checklist
Mexican Atlantic
marine fish
ichthyodiversity
coral reefs
Texto completo
Introducción

En el Atlántico mexicano existen diversos estudios ictiológicos que tratan acerca de la taxonomía alfa de diferentes tipos de ecosistemas costeros, comprendiendo desde la región de Veracruz hasta la parte caribeña de Quintana Roo (Hildebrand et al., 1964; Chávez, 1966; Reséndez-Medina, 1970, 1981; Castro-Aguirre y Márquez-Espinosa, 1981; Álvarez-Guillén et al., 1986; Gaspar-Dillanes y Espinosa-Pérez, 1989; Reséndez-Medina y Kobelkowsky-Díaz, 1991; Vásquez-Yeomans y González-Vera, 1992; Ayala-Pérez et al., 1993; Lozano-Vilano et al., 1993; Obregón-Barboza et al., 1994; González-Gándara y González-Sansón, 1997; Castro-Aguirre et al., 1999; Schmitter-Soto et al., 2000; González-Gándara y Arias-González, 2001; González-Gándara, 2003a, b). De ellos, la ictiofauna de los sistemas arrecifales es la menos estudiada a pesar de contar con una alta diversidad biológica.

El Sistema Arrecifal Veracruzano (SAV) es uno de los pocos ecosistemas de este tipo, que cuenta con trabajos que buscan conocer la diversidad alfa de los distintos grupos biológicos que le integran (Green, 1977; Lara et al., 1992; Carrera-Parra y Vargas-Hernández, 1996; Gómez, 2007; Hermoso-Salazar y Arvizu-Coyotzi, 2007; Solís-Marín et al., 2007; Velarde-González et al., 2007; Winfield et al., 2010). En el SAV existen algunos primeros esfuerzos por inventariar al grupo íctico, desafortunadamente esta información se encuentra dispersa en distintas publicaciones, algunas que carecen de consenso taxonómico y biogeográfico (v.g., Reséndez-Medina, 1971; Pérez-Hernández, 1989; Nava-Martínez, 2002; Vargas-Hernández et al., 2002; Martínez-Hernández y Camacho-Olivares, 2007). Es por ello, que en el presente trabajo se conforma una lista sistemática anotada de la ictiofauna del SAV, considerando aspectos de su biogeografía.

Materiales y métodos

El SAV se encuentra en la parte centro del estado de Veracruz, sobre la plataforma continental y frente a las costas de los municipios de Veracruz y Alvarado, entre los 19°00'00” y 19°16'00” N, 95°45'00” y 96°12'00” O (DOF, 1992, 2000); se integra por más de 25 arrecifes de tipo plataforma y costeros, con una superficie de 52 238 ha y se encuentra dividido en 2 regiones por la desembocadura del río Jamapa (Fig. 1). Para generar el inventario se realizaron censos visuales mediante buceo libre y con equipo autónomo SCUBA durante el periodo que comprende los años 2006 al 2011. Para aquellos organismos de los cuales se tenía duda sobre su identificación, se tomaron fotografías que posteriormente fueron analizadas y se identificaron con la ayuda de los trabajos de Böhlke y Robins (1960), Böhlke y Chaplin (1968), Randall (1996), Smith-Vaniz (1997), Humann (2002), McEachran y Fechhelm (1998; 2005), Garcia-Júnior et al. (2010) y Bernal y Rocha (2011). Con visitas posteriores a la zona de estudio se confirmaron las identificaciones de las especies. El listado ictiofaunístico se complementó con ayuda de listas y elencos taxonómicos disponibles para la zona de estudio; de manera general se verificó y actualizó el estatus taxonómico de las especies siguiendo a Eschmeyer (2012). El arreglo sistemático de las especies del presente trabajo se basa en el propuesto por Nelson (2006), con excepción de los elasmobranquios, para los cuales seguimos las modificaciones de Castro-Aguirre y Espinosa-Pérez (1996) y Espinosa-Pérez et al. (2004).

Figura 1.

Mapa del área de estudio, Sistema Arrecifal Veracruzano.

(0,1MB).

Las afinidades zoogeográficas de las especies se analizaron de acuerdo con el esquema de regiones y provincias de Briggs (1974, 1995) con modificaciones hechas por Castro-Aguirre et al. (1999), para ello se consideró la distribución actual de las especies y su presencia en las siguientes divisiones de la región del Atlántico occidental: a) provincia Virginiana (PV): desde cabo Cod hasta cabo Hatteras; b) provincia Caroliniana de la costa oriental de EUA (PCO): de cabo Hatterras hasta la costa sureste de Florida; c) provincia Caroliniana de la costa norte, noreste y noroeste del golfo de México (PCM): de la costa suroeste de Florida hasta cabo Rojo, Tuxpan, Veracruz; d) provincia Caribeña (PC): de cabo Rojo, Tuxpan, Veracruz hasta el noreste de Venezuela; e) provincia Antillana (PA): desde las costas norte y este de la península de Yucatán, Antillas Mayores y Menores hasta la región insular de Venezuela y Brasil; f) provincia Brasileña (PB): de la costa norte de Venezuela hasta los 23° sur. Asimismo, se determinaron las especies de peces circumtropicales (CT): especies que se distribuyen a lo largo de los mares tropicales del mundo; especies anfiatlánticas (AT): que se distribuyen ampliamente en el océano Atlántico y se les encuentra en las costas orientales y occidentales de los continentes que le bordean; especies anfiamericanas (AA): se encuentran en ambas costas del continente americano; especies endémicas (END): que sólo se encuentran en los arrecifes del golfo de México o el SAV.

Se llevó a cabo un análisis para estimar la riqueza total esperada de peces en la región de estudio, empleando pruebas no paramétricas, con base en los datos de observaciones de peces obtenidos en diversas campañas de campo y en publicaciones técnicas (ver Cuadro 1). La información fue procesada con los modelos de Chao 1, Chao 2, Jacknife 1 y 2 (máxima verosimilitud), y bootstrap (utilizando 1 000 iteraciones), mediante el programa Primer, ver. 6.0 (véase ecuaciones Magurran, 2004). Estos procedimientos se seleccionaron por su precisión para estimar la riqueza total de ensamblajes biológicos, con base en información incompleta y porque además se fundamentan en registros de presencia-ausencia de especies (Willott, 2001).

Cuadro 1.

Lista taxonómica de la ictiofauna registrada en el Sistema Arrecifal Veracruzano

Especie  Observaciones de campo (2006–2011) y registros en colección  Referencias bibliográficas  Afinidades zoogeográficas 
Clase Chondrichthyes       
Subclase Elasmobranchii       
Subdivisión Selachii       
Orden Orectolobiformes       
Familia Ginglymostomatidae       
Ginglymostoma cirratum (Bonnaterre, 1788)  10  AA 
Orden Lamniformes       
Familia Lamnidae       
Isurus oxyrinchus Rafinesque, 1810    CT 
Orden Carcharhiniformes       
Familia Carcharhinidae       
Carcharhinus acronotus (Poey, 1860)    PCO, PCM, PC, PA, PB 
Carcharhinus brevipinna (Müller y Henle, 1839)    AT 
Carcharhinus falciformis (Müller y Henle, 1839)    CT 
Carcharhinus leucas (Müller y Henle, 1839)  CT 
Carcharhinus limbatus (Müller y Henle, 1839)  CT 
Rhizoprionodon terraenovae (Richardson, 1836)  3, 4  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Sphyrnidae       
Sphyrna lewini (Griffith y Smith, 1834)  3, 4  CT 
Sphyrna tiburo Linnaeus, 1758    2, 9  AA 
Subdivisión Batoidea       
Orden Torpediniformes       
Familia Narcinidae       
Narcine bancroftii (Griffith y Smith, 1834)  2, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Narcine sp.    PCM, PC 
Orden Rhinobatiformes       
Familia Rhinobatidae       
Rhinobatos lentiginosus Garman, 1880    PCO, PCM, PC 
Orden Rajiformes       
Familia Rajidae       
Raja texana Chandler, 1921  3, 4, 13  PCM, PC, PA 
Orden Myliobatiformes       
Familia Urotrygonidae       
Urobatis jamaicensis (Cuvier, 1816)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Familia Dasyatidae       
Dasyatis americana Hildebrand y Schoeder, 1928  X;CNPE-P297  2, 6, 7, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Dasyatis sabina (Lesueur, 1824)    PCM, PCM, PC, PA 
Familia Gymnuridae       
Gymnura micrura (Bloch y Schneider, 1801)  AT 
Familia Myliobatidae       
Aetobatus narinari (Euphrasen, 1790)  2, 3, 6, 9, 10  CT 
Familia Mobulidae       
Manta birostris (Walbaum, 1792)    CT 
Familia Rhinopteridae       
Rhinoptera bonasus (Mitchill, 1815)    PCO, PCM, PC, PA 
Clase Actinopterygii       
Subclase Neopterygii       
Division Teleostei       
Orden Albuliformes       
Familia Albulidae       
Albula vulpes (Linnaeus, 1758)  10  AT 
Orden Elopiformes       
Familia Elopidae       
Elops saurus Linnaeus, 1766  3, 4, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Megalopidae       
Megalops atlanticus Valenciennes, 1847  2, 3, 4, 9, 10  AT 
Orden Anguilliformes       
Familia Anguillidae       
Anguilla rostrata (Lesueur, 1817)    3, 4  PV, PCO, PCM, PC, PA 
Familia Congridae       
Conger triporiceps Kanazawa, 1958    10  PCM, PC, PA 
Familia Muraenidae       
Echidna catenata (Bloch, 1795)  2, 9  AT 
Enchelycore carychroa Böhlke y Böhlke, 1976  10  PCM, PC, PA, PB 
Enchelycore nigricans (Bonnaterre, 1788)  X;CNOE-P318  7, 10  AT 
Gymnothorax funebris Ranzani, 1839  X;CVPE-P313  2, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Gymnothorax miliaris (Kaup, 1856)  2, 6, 9, 10  AT 
Gymnothorax moringa (Cuvier, 1829)  2, 3, 4, 6, 9, 10,  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Gymnothorax nigromarginatus (Girard, 1858)    3, 13,  PCM, PC 
Gymnothorax vicinus (Castelnau, 1855)  2, 9, 10  AT 
Muraena retifera Goode y Bean, 1882  6, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Familia Ophichthidae       
Myrichthys breviceps (Richarson, 1848)  X;MHNUABCS-CI-539  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Myrichthys ocellatus (Lesueur, 1825)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Myrophis punctatus Lütken, 1852    13  PV, PCO, PCM, PC, PA 
Ophichthus gomesii (Castelnau, 1855)    13  PV, PCO, PCM, PC, PB 
Familia Nettastomatidae       
Hoplunnis macrura Ginsburg, 1951    13  PCM, PC, PB 
Orden Clupeiformes       
Familia Engraulidae       
Anchoa hepsetus (Linnaeus, 1758)  PV, PCO, PCM 
Anchoa lyolepis (Evermann y Marsh, 1900)    13  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Clupeidae       
Alosa sapidissima (Wilson, 1811)    PV, PCO, PCM 
Harengula clupeola (Cuvier, 1829)  13  PCM, PC, PA 
Harengula humeralis (Cuvier, 1829)  10  PCO, PC, PA 
Harengula jaguana Poey, 1865  10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Jenkinsia lamprotaenia (Gosse, 1851)  PCM, PC, PA 
Jenkinsia majua Whitehead, 1963    13  PC, PA 
Sardinella aurita Valenciennes, 1847  13  AT 
Orden Siluriformes       
Familia Ariidae       
Sciades felis (Linnaeus, 1766)    PCO, PCM, PC 
Bagre marinus (Mitchill, 1815)    PCM, PC, PA 
Orden Aulopiformes       
Familia Synodontidae       
Saurida brasiliensis Norman, 1935    13  AT 
Saurida normani Longley, 1935    13  PCO, PCM, PC 
Synodus foetens (Linnaeus, 1766)  3, 4, 10  PCM, PC, PA, PB 
Synodus intermedius (Spix y Agassiz, 1829)  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Synodus saurus (Linnaeus, 1758)  6, 10  AT 
Synodus synodus (Linnaeus, 1758)  10  AT 
Trachinocephalus myops (Forster, 1801)  AT 
Orden Ophidiiformes       
Familia Carapidae       
Carapus bermudensis (Jones, 1874)    13  PCO, PC, PA 
Familia Ophidiidae       
Brotula barbata (Bloch y Schneider, 1801)    3, 4, 13  AT 
Lepophidium jeannae Fowler, 1941    13  PCO, PCM 
Lepophidium profundorum (Gill, 1863)    13  PCO, PCM 
Familia Bythitidae       
Ogilbia cayorum Evermann y Kendall, 1898  10  PCM, PC, PA 
Orden Batrachoidiformes       
Familia Batrachoididae       
Porichthys plectrodon Jordan y Gilbert, 1882    13  PV, PCO, PCM, PC, PB 
Orden Lophiiformes       
Familia Antennariidae       
Antennarius multiocellatus (Valenciennes, 1837)  X;CNPE-P317  5, 7, 10  PC, PA, PB 
Antennarius striatus (Shaw, 1794)  CNPE-P927  13  CT 
Histrio histrio (Linnaeus, 1758)  X;CNPE-P2066  10  AT 
Familia Ogcocephalidae       
Halieutichthys aculeatus (Mitchill, 1818)    13  PCM 
Ogcocephalus pantostictus Bradbury, 1980    PCM, PC 
Orden Mugiliformes       
Familia Mugilidae       
Mugil cephalus Linnaeus, 1758  3, 4  CT 
Mugil curema Valenciennes, 1836  10  AT, AA 
Orden Beloniformes       
Familia Belonidae       
Ablennes hians (Valenciennes, 1846)  10  CT 
Strongylura notata (Poey, 1860)    13  PCM, PC, PA 
Strongylura timucu (Walbaum, 1792)    PCM, PC, PA, PB 
Tylosurus crocodilus (Péron y Lesueur, 1821)  X;CNPE-P309  1, 2, 6, 7, 9, 10  CT 
Familia Exocoetidae       
Hirundichthys speculiger (Valenciennes, 1847)  10  CT 
Familia Hemiramphidae       
Hemiramphus brasiliensis (Linnaeus, 1758)  X;  2, 3, 4, 9, 10  AT 
Hyporhamphus unifasciatus (Ranzani, 1841)    PCO, PCM, PC, PA, PB 
Orden Beryciformes       
Familia Holocentridae       
Holocentrus adscensionis (Osbeck, 1765)  X;MHNUABCS-CI-413  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB, AT 
Holocentrus rufus (Walbaum, 1792)  X;MHNUABCS-CI-414  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Myripristis jacobus Cuvier, 1829  2, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Neoniphon marianus (Cuvier, 1829)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Plectrypops retrospinis (Guichenot, 1853)    13  PCM, PC, PA 
Orden Gasterosteiformes       
Familia Aulostomidae       
Aulostomus maculatus Valenciennes, 1841  X;CNPE-P298  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Fistulariidae       
Fistularia tabacaria Linnaeus, 1758  2, 9, 10  AT, PCM, PC, PA, PB 
Familia Syngnathidae       
Amphelikturus dendriticus (Barbour, 1905)    PCO, PCM, PC, PA, PB 
Hippocampus erectus Perry, 1810    PCM, PC, PA 
Hippocampus reidi Ginsburg, 1933    PCM, PC, PA, PB 
Microphis brachyurus lineatus (Kaup, 1856)  7, 10  PCM, PC, PA, PB 
Syngnathus floridae (Jordan y Gilbert, 1882)    13  PCO, PCM, PC, PA 
Syngnathus pelagicus Linnaeus, 1758    PCO, PCM, PC, PC, PB 
Orden Scorpaeniformes       
Familia Scorpaenidae       
Scorpaena agassizii Goode y Bean, 1896    13  PCO, PCM 
Scorpaena calcarata Goode y Bean, 1882    13  Pv, PCO, PCM, PC, PB 
Scorpaena dispar Longley y Hildebrand, 1940    13  PCM, PC, PA, PB 
Scorpaena grandicornis Cuvier, 1829    PCM, PC, PA, PB 
Scorpaena plumieri Bloch, 1789  X;CNPE-P320  1, 2, 3, 4, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Scorpaenodes caribbaeus Meek y Hildebrand, 1928  2, 7, 9, 10  PCM, PC, PA 
Familia Triglidae       
Bellator militaris (Goode y Bean, 1896)    13  PCO, PCM, PC 
Prionotus alatus Goode y Bean, 1883    13  PV, PCO, PCM, PC 
Prionotus ophryas Jordan y Swain, 1885    13  PCO, PCM, PC, PA 
Prionotus stearnsi Jordan y Swain, 1885    13  PCO, PCM, PC 
Orden Perciformes       
Familia Centropomidae       
Centropomus parallelus Poey, 1860  3, 10  PCM, PC, PB 
Centropomus undecimalis (Bloch, 1792)  3, 4, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Serranidae       
Centropristis ocyurus (Jordan y Evermann, 1887)    3, 4  PCO, PCM 
Cephalopholis cruentata (Lacepéde, 1802)  2, 4, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Cephalopholis fulva (Linnaeus, 1758)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Diplectrum bivittatum (Valenciennes, 1828)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Epinephelus adscensionis (Osbeck, 1765)  X;CNPE-P300;ICMYL-P608.05;UWFC25421, MHNUABCS-CI-781  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Epinephelus guttatus (Linnaeus, 1758)  2, 4, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC PA 
Epinephelus itajara (Lichtenstein, 1822)  2, 9, 10  AA, AT 
Epinephelus morio (Valenciennes, 1828)  PCM, PC, PA, PB 
Epinephelus striatus (Bloch, 1792)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Hypoplectrus aberrans Poey, 1868  10  PCM, PC, PA 
Hypoplectrus atlahua Tavera y Acero, 2013  2, 6, 9, 10  END 
Hypoplectrus castroaguirrei Del Moral-Flores, Tello-Musi y Martínez-Pérez, 2011    END 
Hypoplectrus chlorurus (Cuvier, 1828)  10  PCM, PC, PA 
Hypoplectrus guttavarius (Poey, 1852)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Hypoplectrus gummigutta (Poey, 1851)  10  PC, PA 
Hypoplectrus indigo (Poey, 1851)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Hypoplectrus puella (Cuvier, 1828)  5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Hyporthodus flavolimbatus (Poey, 1865)    3, 4  PO, PCM, PC, PA, PB 
Hyporthodus mystacinus (Poey, 1852)    13  AA 
Hyporthodus nigritus (Holbrook, 1855)    3, 4  PCM, PC, PB 
Liopropoma carmabi (Randall, 1963)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Mycteroperca acutirostris (Valenciennes, 1828)  X; CNPE-P307  6, 10, 13  PCM, PC, PB 
Mycteroperca bonaci (Poey, 1860)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Mycteroperca interstitialis (Poey, 1860)  X; MHNUABCS-CI-782  5, 6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Mycteroperca microlepis (Goode y Bean, 1879)  3, 4, 6, 10  PCM, PA, PB 
Mycteroperca phenax Jordan y Swain, 1884  5, 6, 10  PCM, PC, PB 
Mycteroperca tigris (Valenciennes, 1833)  2, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Mycteroperca venenosa (Linnaeus, 1758)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PB 
Paranthias furcifer (Valenciennes, 1828)  5, 6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Rypticus maculatus Holbrook, 1855  5, 10  PCO, PCM 
Rypticus saponaceus (Block y Schneider, 1801)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB, AT 
Rypticus subbifrenatus Gill, 1861    13  PCM, PC, PA, PB 
Serranus annularis (Günther, 1880)  10  PCM, PC, PA 
Serranus atrobranchus (Cuvier, 1829)    13   
Serranus subligarius (Cope, 1870)  PCO, PCM 
Serranus tigrinus (Bloch, 1790)  6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Serranus tortugarum Longley, 1935  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Familia Grammatidae       
Gramma loreto Poey, 1868  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Familia Opistognathidae       
Opistognathus aurifrons (Jordan y Thompson, 1905)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Opistognathus macrognathus Poey, 1860  X; CIFESI-70    PCM, PC, PA 
Opistognathus whitehursti (Longley, 1927)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Priacanthidae       
Heteropriacanthus cruentatus (Lacepéde, 1810)  CT 
Priacanthus arenatus Cuvier, 1829  2, 3, 4, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, AT 
Familia Apogonidae       
Apogon binotatus (Poey, 1867)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Apogon maculatus (Poey, 1860)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Apogon pseudomaculatus Longley, 1932  10  PV, PCO, PMC, PC, PA, PB 
Phaeoptyx conklini (Silvester, 1915)    13  PCM, PC, PA 
Phaeoptyx pigmentaria (Poey, 1860)    13  AT 
Familia Malacanthidae       
Caulolatilus cyanops Poey, 1866    13  PCM, PC, PA 
Malacanthus plumieri (Bloch, 1786)  2, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Pomatomidae       
Pomatomus saltatrix (Linnaeus, 1766)    AT 
Familia Coryphaenidae       
Coryphaena hippurus Linnaeus, 1758    3, 4  CT 
Familia Rachycentridae       
Rachycentron canadum (Linnaeus, 1766)  2, 4, 9, 10  AT 
Familia Echeneidae       
Echeneis naucrates Linnaeus, 1758  2, 9, 10  CT 
Echeneis neucratoides Zuiew, 1786    PCM, PC, PA, PB 
Familia Carangidae       
Alectis ciliaris (Bloch, 1787)  2, 9, 10  CT 
Carangoides bartholomaei (Cuvier, 1833)  X;CNPE-P760  5, 6  PCM, PC, PA, PB 
Carangoides ruber (Bloch, 1793)  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Caranx crysos (Mitchill, 1815)  2, 3, 4, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB, AT 
Caranx hippos (Linnaeus, 1766)  2, 3, 4, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Caranx latus Agassiz, 1831  1, 2, 3, 4, 5, 9, 10  PCM, PC, PA, PB, AT 
Caranx lugubris Poey, 1860    CT 
Chloroscombrus chrysurus (Linnaeus, 1766)  10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Decapterus macarellus (Cuvier, 1833)  5, 6  CT 
Decapterus punctatus (Cuvier, 1829)  X, MHNUABCS-CI-101  5, 6, 10  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB, AT 
Elagatis bipinnulata (Quoy y Gaimard, 1825)  CT 
Hemicaranx amblyrhynchus (Cuvier, 1833)  10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Oligoplites saurus (Bloch y Schneider, 1801)  3, 4  AA 
Selar crumenophthalmus (Bloch, 1793)  4, 10  CT 
Selene setapinnis (Mitchill, 1815)  10  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Selene vomer (Linnaeus, 1758)  10  PCM, PC, PA, PB 
Seriola dumerili (Risso, 1810)  2, 6, 9, 10  CT 
Seriola rivoliana Valenciennes, 1833  5, 6  CT 
Seriola zonata (Mitchill, 1815)  3, 4  PV, PCO, PCM, PC, PB 
Trachinotus carolinus (Linnaeus, 1766)  PCM, PC, PA, PB 
Trachinotus falcatus (Linnaeus, 1758)  1, 3, 4, 7, 10  PCM, PC, PA, PB 
Trachinotus goodei Jordan y Evermann, 1896  X, CNPE-319  1, 4, 10  PCM, PC, PA, PB 
Trachurus lathami Nichols, 1920    13   
Familia Lutjanidae       
Lutjanus analis (Cuvier, 1828)  1, 2, 3, 4, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus apodus (Walbaum, 1792)  1, 2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus buccanella (Cuvier, 1828)  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus campechanus (Poey, 1860)  3, 4, 10  PCO, PCM 
Lutjanus cyanopterus (Cuvier, 1828)  2, 3, 4, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus griseus (Linnaeus, 1758)  X;MHNUABCS-CI-463  1, 2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus jocu (Bloch y Schneider, 1801)  X;CNPE-P296  2, 4, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus mahogoni (Cuvier, 1828)  4, 5, 6, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Lutjanus synagris (Linnaeus, 1758)  X;MHNUABCS-CI-465  1, 3, 4, 5, 6, 2, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Ocyurus chrysurus (Bloch, 1791)  X;MHNUABCS-CI-464  1, 3, 4, 5, 6, 2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Pristipomoides aquilonaris (Goode y Bean, 1896)    13  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Rhomboplites aurorubens (Cuvier, 1829)  3, 4  PCM, PC, PA, PB 
Familia Lobotidae       
Lobotes surinamensis (Bloch, 1790)    PCM, PC, PA, PB 
Familia Gerreidae       
Diapterus auratus Ranzani, 1842    PCO, PCM, PC, PA, PB 
Diapterus rhombeus (Cuvier, 1829)  10  PC, PA, PB 
Eucinostomus argenteus Baird y Girard, 1855    1, 3, 4, 13  PCM, PC, PA, PB 
Eucinostomus gula (Quoy y Gaimard, 1824)    13  PCM, PC, PA, PB 
Eucinostomus melanopterus (Bleeker, 1863)  X;CNPE-P310  7, 10  PCM, PC 
Eucinostomus lefroyi (Goode, 1874)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Eugerres plumieri (Cuvier, 1830)  10  AT 
Gerres cinereus (Walbaum, 1792)  6, 10  AA 
Familia Haemulidae       
Anisotremus surinamensis (Bloch, 1791)  X;CNPE-P294  2, 3, 4, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Anisotremus virginicus (Linnaeus, 1758)  3, 4  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Conodon nobilis (Linnaeus, 1758)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Haemulon album Cuvier, 1830  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Haemulon aurolineatum Cuvier, 1830  X;MHNUABCS-CI-356  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Haemulon bonariense Cuvier, 1830  2, 9, 10  PA, PC 
Haemulon carbonarium Poey, 1860  5, 7, 10  PCM, PC, PA 
Haemulon chrysargyreum Günther, 1859  X;MHNUABCS-CI-353  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Haemulon flavolineatum (Desmarest, 1823)  X;CNPE-P282  1, 2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Haemulon macrostomum Günther, 1859  X;MHNUABCS-CI-354  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Haemulon melanurum (Linnaeus, 1758)  2, 9, 10  PC, PA, PB 
Haemulon parra (Desmarest, 1823)    PCO, PCM, PC, PA 
Haemulon plumieri (Lacepéde, 1801)  1, 3, 4, 6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Haemulon sciurus (Shaw, 1803)  2, 9, 10  PCM, PC, PA 
Haemulon striatum (Linnaeus, 1758)  6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Haemulon vittatum (Poey, 1860)  X; MHNUABCS-CI-1335  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Pomadasys crocro (Cuvier, 1830)  10  PCM, PC, PA 
Familia Sparidae       
Archosargus probatocephalus (Walbaum, 1792)  3, 4, 6, 10  PCM, PC, PB 
Archosargus rhomboidalis (Linnaeus, 1758)    PCM, PC, PB 
Calamus bajonado (Bloch y Schneider, 1801)  6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Calamus calamus (Valenciennes, 1830)  2, 3, 4, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Calamus penna (Valenciennes, 1830)  3, 4  PCM, PC, PA, PB 
Calamus pennatula Guichenot, 1868    PC, PA, PB 
Diplodus caudimacula (Poey, 1860)  X; MHNUABCS-CI-1179  6, 10  PCM, PC, PA 
Diplodus holbrookii (Bean, 1878)  1, 6, 10  PCM, PC 
Lagodon rhomboides (Linnaeus, 1766)  10  PCM, PC, PA 
Familia Polynemidae       
Polydactylus octonemus (Girard, 1858)  X; CNPE-P306  7, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Familia Sciaenidae       
Bairdiella chrysura (Lacépede, 1802)  10  PCO, PCM 
Bairdiella ronchus (Cuvier, 1830)  10  PC, PA, PB 
Cynoscion jamaicensis (Vaillant y Bocourt, 1883)  10  PC, PA, PB 
Equetus lanceolatus (Linnaeus, 1758)  2, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Equetus punctatus (Bloch y Schneider, 1801)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Micropogonias undulatus (Linnaeus, 1766)  10  PCO, PCM 
Odontoscion dentex (Cuvier, 1830)  PCM, PC, PB 
Pareques acuminatus (Bloch y Schneider, 1801)  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Pareques umbrosus (Jordan y Eigenmann, 1889)    PCO, PCM, PC 
Stellifer lanceolatus (Holbrook, 1855)  10  PCO, PCM 
Familia Mullidae       
Mulloidichthys martinicus (Cuvier, 1829)  2, 4, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Pseudupeneus maculatus (Bloch, 1793)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Pempheridae       
Pempheris schomburgkii Müller y Troschel, 1848  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Kyphosidae       
Kyphosus incisor (Cuvier, 1831)  3, 4  AT 
Kyphosus sectatrix (Linnaeus, 1758)  2, 3, 4, 6, 9, 10  PV, PCO, PCM, PC, PA, AT 
Familia Chaetodontidae       
Chaetodon capistratus Linnaeus, 1758  X;MHNUABCS-CI-136  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Chaetodon ocellatus Bloch, 1787  X;CNPE-P286  1, 2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Chaetodon sedentarius Poey, 1860  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Chaetodon striatus Linnaeus, 1758  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Prognathodes aculeatus (Poey, 1860)  10  PCM, PC, PA 
Familia Pomacanthidae       
Centropyge argi Wood y Kanazawa, 1951  2, 6, 9, 10  PC, PA 
Holacanthus bermudensis Goode, 1876  5, 6, 10  PCM, PA 
Holacanthus ciliaris (Linnaeus, 1758)  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Holacanthus tricolor (Bloch, 1795)  2, 6, 9, 10  PCO, PC, PA, PB 
Pomacanthus arcuatus (Linnaeus, 1758)  2, 6, 7, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Pomacanthus paru (Bloch, 1787)  X;CNPE287  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA 
Familia Cirrhitidae       
Amblycirrhitus pinos (Mowbray, 1927)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Pomacentridae       
Abudefduf saxatilis (Linnaeus, 1758)  X;CNPE-P292, MHNUABCS-CI-683  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Abudefduf taurus (Müller y Troschel, 1848)  6, 10  AT 
Chromis cyanea (Poey, 1860)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Chromis insolata (Cuvier, 1830)  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Chromis multilineata (Guichenot, 1853)  X;MHNUABCS-CI-682  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Chromis scotti Emery, 1968  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Microspathodon chrysurus (Cuvier, 1830)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Stegastes adustus (Troschel, 1865)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Stegastes diencaeus (Jordan y Rutter, 1897)  5, 6, 10  PCM, PC, PA 
Stegastes fuscus (Cuvier, 1830)  X;CNPE-P293; UWFC28964  7, 10  PCM, 
Stegastes leucostictus (Müller y Troschel, 1848)  X;CNPE-P291  1, 2, 5, 6, 7, 10  PCM, PC, PA, PB 
Stegastes partitus (Poey, 1868)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Stegastes pictus (Castelnau, 1855)  10  PC, PA, PB 
Stegastes planifrons (Cuvier, 1830)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Stegastes variabilis (Castelnau, 1855)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Labridae       
Bodianus pulchellus (Poey, 1860)X    2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Bodianus rufus (Linnaeus, 1758)  X;CNPE-P303, MHNUABCS-CI-424  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Clepticus parrae (Bloch y Schneider, 1801)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PC 
Halichoeres bathyphilus (Beebe y Tee-Van, 1932)    PCO, PCM, PC, PA 
Halichoeres bivittatus (Bloch, 1791)  X;CNPE-P302  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Halichoeres burekae Weaver y Rocha, 2007  11  END 
Halichoeres cyanocephalus (Bloch, 1791)    6, 13  PCM, PC, PA 
Halichoeres garnoti (Valenciennes, 1839)  6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Halichoeres maculipinna (Müller y Troschel, 1848)  2, 6, 9, 10  PCO, PCM, PA 
Halichoeres pictus (Poey, 1860)  PCM, PC, PA 
Halichoeres poeyi (Steindachner, 1867)  6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Halichoeres radiatus (Linnaeus, 1758)  X;CNPE-P308  2, 3, 4, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Halichoeres socialis Randall y Lobel, 2003  PC 
Lachnolaimus maximus (Walbaum, 1792)  2, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Thalassoma bifasciatum (Bloch, 1791)  X;MHNIABCS-CI-425  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Xyrichtys martinicensis Valenciennes, 1840  7, 10  PCM, PC, PA 
Xyrichthys splendens Castelnau, 1855  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Scaridae       
Cryptotomus roseus Cope, 1871  6, 10  PCM, PC, PA, PB 
Nicholsina usta (Valenciennes, 1840)  PCM, PC, PB 
Scarus coelestinus Valenciennes, 1840  2, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Scarus coeruleus (Edwards, 1771)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Scarus guacamaia Cuvier, 1829  2, 6, 9, 10  PC, PA, PB 
Scarus iseri (Bloch, 1789)  X;CNPE-P304  1, 5, 6, 10  PCM, PC, PA 
Scarus taeniopterus Desmarest, 1831  1, 2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Scarus vetula Bloch y Schneider, 1801  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Sparisoma atomarium (Poey, 1861)      PCM, PC, PA 
Sparisoma aurofrenatum (Valenciennes, 1840)  5, 6, 10  PCM, PC, PA 
Sparisoma chrysopterus (Bloch y Schneider, 1801)  X; MHNUABCS-CI-714  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Sparisoma radians (Valenciennes, 1840)  X;CNPE-P305  2, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Sparisoma rubripinne (Valenciennes, 1840)  X;CNPE-P311  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Sparisoma viride (Bonnaterre, 1788)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Familia Uranoscopidae       
Astroscopus y-graecum (Cuvier, 1829)    PCM, PC 
Familia Tripterygiidae       
Enneanectes altivelis Rosenblatt, 1960  PCM, PC, PA 
Enneanectes jordani (Evermann y Marsh, 1899)  10  PC, PA 
Familia Blennidae       
Hypleurochilus bermudensis Beebe yTee-Van, 1933    PCM, PC, PA 
Lupinoblennius nicholsi (Tavolga, 1954)    13  PCM, PC 
Ophioblennius atlanticus (Valenciennes, 1836)  X;CNPE-P314  2, 7, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Ophioblennius macclurei (Silvester, 1915)  PCM, PC, PA, PB 
Parablennius marmoreus (Poey, 1876)  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Scartella cristata (Linnaeus, 1758)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Labrisomidae       
Labrisomus kalisherae (Jordan, 1904)  10  PCM, PC 
Labrisomus nuchipinnis (Quoy y Gaimard, 1824)  X;CNPE-P316 MHNUABCUS-CI-438  6, 7, 10  PCM, PC, PA, PB 
Malacoctenus gilli (Steindachner, 1867)  10  PCM, PC, PA 
Malacoctenus macropus (Poey, 1868)  PCM, PC, PA 
Malacoctenus triangulatus Springer, 1959  X;CNPE-P315  5, 6, 7, 10  PCM, PC, PA, PB 
Paraclinus fasciatus (Steindachner, 1876)    PCM, PC, PA 
Familia Chaenopsidae       
Acanthemblemaria aspera (Longley, 1927)  PCM, PC, PA 
Emblemariopsis sp.    PCM, PC, PA 
Emblemaria pandionis Evermann y Marsh, 1900  5, 6  PCM, PC, PA 
Familia Gobiesocidae       
Gobiesox strumosus Cope, 1870    13  AA 
Familia Eleotridae       
Eleotris pisonis (Gmelin, 1789)    PCM, PC, PA, PB 
Familia Gobiidae       
Bathygobius soporator (Valenciennes, 1837)  X;CNPE-P290  7, 10  PCM, PC, PA, PB 
Coryphopterus dicrusBohlke y Robins, 1960  6, 10  PCM, PC, PA 
Coryphopterus glaucofraenum Gill, 1863  5, 6, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Coryphopterus hyalinus Bohlke y Robins, 1962  6, 13  PCM, PC, PA 
Coryphopterus personatus (Jordan y Thompson, 1905)  5, 10  PCM, PC, PA 
Coryphopterus punctipectophorus Springer, 1960  5,  PCM 
Elacatinus evelynae (Bohlke y Robins, 1968)    PCM, PC, PA 
Elacatinus jarochoTaylor y Akins, 2007  6, 8  END 
Elacatinus oceanops Jordan, 1904  6, 10  PCM, PC 
Elacatinus prochilos (Böhlke y Robins, 1968)    PCM, PC 
Gnatholepis cauerensis (Bleeker, 1853)  5, 6  PCM, PC, PA, PB 
Gobiosoma grosvenori (Robins, 1964)  10  PCM, PC, PA 
Oxyurichthys stigmalophius (Mead y Böhlke, 1958)    PCM, PC, PA 
Tigrigobius dilepis (Robins y Bohlke, 1964)  10  PC, PA 
Tigrigobius redimiculus (Taylor y Akins 20076, 8  END 
Tigrigobius saucrus (Robins, 1960)    PCM, PC 
Familia Acanthuridae       
Acanthurus tractus Poey, 1860  X;CNPE-P301  2, 5, 6, 7, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Acanthurus chirurgus (Bloch, 1787)  1, 3, 4, 5, 6, 2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB, AA 
Acanthurus coeruleus Bloch y Schneider, 1801  2, 5, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Ephippidae       
Chaetodipterus faber (Broussonet, 1782)  10  PCM, PC, PA 
Familia Sphyraenidae       
Sphyraena barracuda (Edwards, 1771)  X;CNPE-P299  1, 4, 5, 6, 7, 2, 9, 10  PCM, PC, PA, AT 
Sphyraena guachancho Cuvier, 1829  3, 4, 10  PCM, PC, PA, PB 
Sphyraena picudilla Poey, 1860  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Scombridae       
Euthynnus alletteratus (Rafinesque, 1810)  4, 5  AT 
Katsumonus pelamis (Linnaeus, 1758)    13  CT 
Sarda sarda (Bloch, 1793)  2, 9, 10  AT 
Scomberomorus cavalla (Cuvier, 1829)  2, 3, 4, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Scomberomorus maculatus (Mitchill, 1815)  2, 3, 4, 6, 9, 10  Pv, PCO, PCM, PC 
Thunnus atlanticus (Lesson, 1831)  3, 4  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Nomeidae       
Nomeus gronovii (Gmelin, 1789)    13  CT 
Familia Stromateidae       
Peprilus burti Fowler, 1944    13  PV, PCO, PCM, PC 
Orden Pleuronectiformes       
Familia Paralichthyidae       
Citharichthys arenaceus Evermann y Marsh, 1900    PCO, PCM, PC, PA, PB 
Citharichthys spilopterus Günther, 1862  MHNIABCS-CI-265  PCM, PC, PA 
Cyclopsetta chittendeni Bean, 1895    13  PCM, PC, PB 
Cyclopsetta fimbriata (Goode y Bean, 1885)    13  PV, PCM, PC, PA, PB 
Paralichthys albigutta Jordan y Gilbert, 1882    PCO, PCM, PC 
Syacium gunteri Ginsburg, 1933    13   
Syacium micrurum Ranzani, 1842  10  PCM, PC, PA, PB 
Syacium papillosum (Linnaeus, 1758)  10  PCO, PC, PA, PB 
Familia Bothidae       
Bothus lunatus (Linnaeus, 1758)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Bothus ocellatus (Agassiz, 1831)  10  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Achiridae       
Gymnachirus texae (Gunter, 1936)    13  PCO, PCM, PC 
Familia Cynoglossidae       
Symphurus plagiusa (Linnaeus, 1766)    13  PCO, PCM, PC, PA 
Orden Tetraodontiformes       
Familia Balistidae       
Balistes capriscus Gmelin, 1789  2, 3, 4, 9, 10  AT 
Balistes vetula Linnaeus, 1758  10  AT 
Canthidermis sufflamen (Mitchill, 1815)  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Monacanthidae       
Aluterus monoceros (Linnaeus, 1758)    CT 
Aluterus schoepfii (Walbaum, 1792)  2, 6, 9, 10  AT 
Aluterus scriptus (Osbeck, 1765)  2, 3, 4, 5, 6, 9, 10  CT 
Cantherhines macrocerus (Hollard, 1853)  2, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Cantherhines pullus (Ranzani, 1842)  2, 6, 9, 10  PCO, PCM, PC, PA 
Monacanthus ciliatus (Mitchill, 1818)    13  PV, PCO, PCM, PC, PA 
Monacanthus tuckeri Bean 1906  10  PCO, PCM, PC, PA 
Familia Ostraciidae       
Acanthostracion quadricornis (Linnaeus, 1758)  10  PCM, PC, PB 
Lactophrys bicaudalis (Linnaeus, 1758)  2, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Lactophrys trigonus (Linnaeus, 1758)    PCM, PC 
Rhinesomus triqueter (Linnaeus, 1758)  1, 2, 6, 9, 10  PV, PCO, PCM, PC, PA, PB 
Familia Tetraodontidae       
Canthigaster rostrata (Bloch, 1786)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA 
Chilomycterus schoepfi (Walbaum, 1792)    PCM, PC 
Lagocephalus laevigatus (Linnaeus, 1766)  3, 4, 13  AT 
Sphoeroides dorsalis Longley, 1934    13  PCO, PCM, PC, PA 
Sphoeroides spengleri (Bloch, 1785)  2, 5, 6, 9, 10  PCM, PC, PA, PB 
Familia Diodontidae       
Diodon holocanthus Linnaeus, 1758  10  CT 
Diodon hystrix Linnaeus, 1758  2, 5, 6, 9, 10  CT 
Familia Molidae       
Ranzania laevis (Pennant, 1776)    CT 

Clave de las afinidades zoogeográficas: PV (provincia Virginiana); PCO (provincia Caroliniana de la costa Oriental); PCM (provincia Caroliniana de la costa norte, noroeste del golfo de México); PC (provincia Caribeña); PA (provincia Antillana); PB (provincia Brasileña); END (Endémica); CT (Circumtropical); AT (Anfiatlántica); AA (Anfiamericana). Referencias: 1), Abarca-Arenas y Valero-Pachecho (2007); 2), Choucair (1992); 3), Jiménez-Badillo et al. (2006); 4), Jiménez-Badillo y Castro-Gaspar (2007); 5), Martínez-Hernández y Camacho-Olivares (2007); 6), Rangel-Ávalos et al. (2008); 7), Reséndez-Medina (1971); 8), Taylor y Akins (2007); 9), Tunnell et al. (2007a, b); 10), Vargas-Hernández et al. (2002); 11), Weaver y Rocha (2007); 12), Del Moral-Flores et al. (2011); 13), Lara-Domínguez et al. (2011).

Para evaluar la calidad relativa del elenco sistemático obtenido a partir de los datos de campo, se comparó la riqueza total registrada en las 14 unidades de análisis con el valor esperado a partir del cálculo del promedio de los resultados arrojados por los 5 métodos aplicados para estimar la riqueza. Se utilizó una prueba t de Student para comparar los valores individuales de los parámetros estimados, contra una serie de datos esperados que se supone siguen un comportamiento normal (Sokal y Rohlf, 1995). La prueba se aplicó 3 veces: para todos los peces, para elasmobranquios por separado y para teleósteos por separado. Cabe señalar que este tipo de comparaciones que conjuntan valores de diversos estimadores, contra la cifra real o disponible, ofrece una estimación potencialmente más robusta que el usar técnicas individuales, cuando ninguno de los métodos aplicados es intrínseco o prácticamente superior a otro (Johnson y Omland, 2004).

Resultados

El número de especies que componen la ictiofauna del Sistema Arrecifal Veracruzano es de 387 especies pertenecientes a 206 géneros, 92 familias, 23 órdenes y 2 clases (Cuadro 1). El orden Perciformes presentó el mayor número de especies con 252 (65.5%), seguido por Tetraodontiformes con 22 (5.7%) y Anguilliformes con 16 (4.2%). Las familias con mayor riqueza son Serranidae con 37 especies (9.6%), seguida por Carangidae 23 (6.0%), Haemulidae y Labridae cada una con 17 (4.4%), Gobiidae 16 (4.2%) y Pomacentridae 15 (3.9%); las familias restantes presentan una riqueza específica menor (≤14 spp.). Entre las especies que se reportan, 3 son nuevos registros para el litoral mexicano del golfo de México: Amphelikturus dendriticus (Barbour, 1905), Opistognathus macrognathus Poey, 1860, ambas se depositaron en la Colección Ictiológica de la Facultad de Estudios Superiores Iztacala (No. de Catálogo: CIFESI-50, CIFESI-70; Figs. 2, 3), e Hypleurochilus bermudensis Beebe y Tee-Van, 1933 (Fig. 4).

Figura 2.

El pez caballito pipa Acentronura dendrítica (Número de catálogo: CIFESI-50).

(0,04MB).
Figura 3.

El pez bocón, Opistognathus macrognathus (Número de catálogo: CIFESI-70).

(0,06MB).
Figura 4.

El pez borracho de barras, Hypleurochilus bermudensis.

(0,24MB).

La ictiogeografía del SAV muestra mayor afinidad con la provincia Caribeña (78.87%), seguida por la Caroliniana de la costa norte, noreste y noroeste del golfo de México (77.68%) y por la Antillana (70.83%); el resto de las provincias es menos afín: Brasileña (43.75%), Caroliniana de la costa oriental (20.54%) y Virginiana (4.17%). Se determinó que el 7.44% de las especies tienen distribución circumtropical, 10.12% son anfiatlánticas, 2.38% anfiamericanas y 1.29% endémicas; estas últimas son: Elacatinus jarocho, Halichoeres burekae, Hypoplectrus atlahua, H. castroaguirrei y Tigrigobius redimiculus.

Con respecto al número esperado de especies, los análisis no paramétricos muestran que la riqueza esperada de peces en el SAV es superior a la registrada de manera efectiva, tanto para los peces óseos como para los elasmobranquios (Cuadro 2). Puede verse que los datos analizados denotan un 89.3% de la riqueza esperada para la totalidad de la ictiofauna (385 especies de 430.9; t13=8.109, p<0.01), mientras que para peces cartilaginosos el valor es del 72.2% (21 de 29.1 especies; t13=11.076, p>0.001). Finalmente, para peces óseos las cifras porcentuales son notablemente semejantes a las de la riqueza total (364 de 402.9 especies; 90.3% de eficiencia de detección; t13=7.878, p<0.01). No obstante lo anterior y como lo muestran los resultados de las pruebas t de Student, en todos los casos la diferencia entre el valor observado y el esperado fue significativa.

Cuadro 2.

Resultados de los análisis no paramétricos para evaluar la riqueza específica total de los peces del Sistema Arrecifal Veracruzano. La columna “campo” contiene los valores obtenidos en campo

  Riqueza esperada
  Campo  Chao 1  Chao 2  Jacknife 1  Jacknife 2  Bootstrap  Promedio (error típico) 
Todos los peces  385  415.2  415.2  454.6  445.3  424.4  430.9 (8.1) 
Peces óseos  364  388.8  388.8  425.3  412.2  399.6  402.9 (7.1) 
Elasmobranquios  21  29.1  29.1  29.4  33.1  24.9  29.1 (1.3) 
Discusión

El número de especies (387 spp.) registrado en el presente trabajo para el SAV es mayor que el registrado para el mismo sistema por otros autores (v.g., Reséndez-Medina, 1971; González-Navarro, 1974; Pérez-Hernández, 1989; Murrieta y Medina, 1991; Riley y Holt, 1993; Vargas-Hernández et al., 2002; Rangel-Ávalos et al., 2008). En comparación con las listas sistemáticas anteriores y tomando de referencia el número de especies publicado más completo, el cual es de 248 spp., 126 géneros y 61 familias (Vargas-Hernández et al., 2002), la presente compilación aumenta en un 56.04% el número de especies, por lo que se constituye como el listado íctico más completo del SAV. Es posible que el número de especies incremente al efectuar muestreos más rigurosos, asimismo al evaluar con detalle la ictiofauna críptica que en ocasiones ha pasado inadvertida (Ackerman y Bellwood, 2000) y al considerar aquella presente en el borde del talud arrecifal, con profundidad mayor a los 30m, donde es difícil realizar inmersiones autónomas.

El número de especies ícticas presentes en el SAV es mayor a la registrada en otros sistemas arrecifales del golfo de México tales como: arrecife Alacranes en el Caribe con 279 spp. (Hildebrand et al., 1964; González-Gándara y Arias-González, 2001); los arrecifes coralinos del norte de Veracruz con 244 spp. (González-Gándara, 2003a); arrecife Tuxpan 127 spp. (González-Gándara y González-Sansón, 1997); isla Lobos, 130 spp. (Castro-Aguirre y Márquez-Espinosa, 1981); cayo Arenas y arrecife Triángulos Oeste, 116 spp. (Chávez, 1966; Vargas-Hernández y Carrera-Parra, 1998). La diferencia observada puede deberse al tipo, cobertura y diversidad de hábitats presentes en cada sistema arrecifal.

La ictiodiversidad del SAV es comparativamente menor a la registrada en otras áreas del Caribe y zonas aledañas, como el Caribe mexicano (Schmitter-Soto et al., 2000), Cuba (Claro, 1994), las Bahamas (Böhlke y Chaplin, 1968), la Florida (Briggs, 1958; Starck, 1968) y las Bermudas (Smith-Vaniz et al., 1999). Esto se debe en principio a su menor área, en comparación con los otros sistemas, ya que se ha probado que en el Caribe existe una relación entre el área y el número de especies de peces (Sandin et al., 2008); otros de los factores, aparte del tipo de hábitat, que gobiernan la composición en la comunidad íctica son los gradientes latitudinal e hidrológico y con menor influencia, la profundidad (Bouchon-Navarro et al., 2005). Finalmente, el SAV presenta una baja conectividad con los arrecifes del Caribe y gran influencia de ríos, lo que en el caso de las gorgonias parece afectar la riqueza de especies (Jordán-Dahlgren, 2002).

En el SAV se tienen representadas el 25.1% de las especies, 22.7% de los géneros, 38.8% de las familias y el 51.1% de los órdenes de la ictiofauna registrada para todo el golfo de México, incluyendo los cayos de la Florida y el noroeste de Cuba (McEachran y Fechhelm, 1998, 2005; McEachran, 2009).

Las afinidades ictiogeográficas del SAV concuerdan con lo reportado por Reséndez-Medina (1971) y por Villalobos-Figueroa (1971), donde se afirma que tanto los peces como el resto de la fauna del arrecife La Blanquilla (arrecife del SAV) son muy similares a los del Caribe. Este patrón zoogeográfico es similar a lo reportado por Castro-Aguirre y Márquez-Espinoza (1981) para la ictiofauna de isla Lobos, al norte de Veracruz, donde el mayor porcentaje del conjunto pertenece a la provincia Caribeña (81.2%), por lo que puede considerarse a la ictiofauna de los sistemas arrecifales del estado de Veracruz dentro de la provincia Caribeña.

Respecto al número de especies, si bien se encontraron diferencias entre los datos esperados y observados de riqueza específica de peces a partir de los registros del Cuadro 2, éstas fueron relativamente bajas en el caso de los peces óseos y consecuentemente, en relación con la riqueza total, relativamente más grandes para los elasmobranquios. Cabe señalar que es improbable que a partir de censos y observaciones se complete el inventario de una comunidad de peces, ya que el número efectivo de los taxones que pueden ser observados a partir de inmersiones o capturas (fuentes de la mayor parte de los datos), es limitado dado el tiempo de buceo, el área total cubierta en las revisiones de campo, la superficie de las redes, el gasto requerido para los estudios y sobre todo, la presencia de especies crípticas y nocturnas que no son consideradas por los observadores.

Tomando estos aspectos en cuenta, llama la atención que la eficiencia porcentual de detección que se presentó para los peces óseos es del 90.3% (Cuadro 2), es decir, notablemente alta. Dado que las ecuaciones no paramétricas empleadas para estimar la riqueza se basan en la presencia de especies raras (aquellas que aparecen una o 2 veces en las unidades de muestreo; Magurran, 2004), desde el punto de vista numérico, la alta precisión indica que se tiene una muy aceptable información, de hecho 75 de las 389 especies (19.5%) tienen un solo registro. En cambio, para el caso de los elasmobranquios el 42.8% (9 de 21 especies) está en estas condiciones y esa situación explica claramente porqué los estimadores indican que la lista actual debe estar lejos de la cifra real de tiburones y rayas presentes en el SAV. Los resultados apuntan a que sería recomendable un mayor esfuerzo de búsqueda de especies de peces cartilaginosos en el futuro.

En conclusión, se presenta la mayor lista de especies de peces en el SAV, incrementando en más del 50% la lista previa más completa y de acuerdo con los análisis numéricos se tienen registradas más del 90% de las especies de peces óseos potencialmente presentes, aunque para los peces cartilaginosos se tienen solo el 72%. Zoogeográficamente, la comunidad íctica encontrada muestra mayor afinidad a la provincia Caribeña, lo cual coincide con trabajos previos. Finalmente, con este trabajo se presentan 3 nuevos registros para el litoral mexicano del golfo de México y dentro de las especies reportadas, 5 son especies endémicas.

Agradecimientos

Los autores agradecen los apoyos que financiaron parte de la presente investigación: Conabio (proyectos GM005 a GHP, DM002 y GM004 a HPE); Fomix-Conacyt (proyectos 34105 a HRB y 37567 a HPE); a los responsables de las colecciones ictiológicas de referencia (CNP-IBUNAM, MHNUABCS-CI, CP-CMyL); a los revisores anónimos por sus valiosas observaciones que enriquecieron este trabajo. La autora LAVM gozó de una beca de licenciatura mientras trabajaba en su tesis y cuando ayudó a revisar el documento (Conacyt, proyecto 34105). El primer autor agradece al Posgrado en Ciencias Biológicas y al Conacyt por la beca de posgrado otorgada.

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