metricas
covid
Buscar en
Gastroenterología y Hepatología
Toda la web
Inicio Gastroenterología y Hepatología Terapia génica de las enfermedades hepáticas
Información de la revista
Vol. 23. Núm. 8.
Páginas 394-402 (octubre 2000)
Compartir
Compartir
Más opciones de artículo
Vol. 23. Núm. 8.
Páginas 394-402 (octubre 2000)
Acceso a texto completo
Terapia génica de las enfermedades hepáticas
Gene therapy in liver diseases
Visitas
10978
B. Sangroa, J. Ruiza, C. Qiana, J. Prietoa
a División de Terapia Génica y Hepatología. Clínica Universitaria. Facultad de Medicina. Universidad de Navarra.
Este artículo ha recibido
Información del artículo
Texto completo
Bibliografía
Estadísticas
Texto completo

Ideas generales sobre la terapia génica

La terapia génica es una nueva forma de tratamiento que da sus primeros pasos a finales del siglo xx y cuya aplicación a las enfermedades hepáticas resulta tan prometedora como atractiva1,2. En general, la terapia génica consiste en la utilización de material genético con intención terapéutica (fig. 1). El desarrollo de técnicas útiles de transferencia génica, junto con los progresos logrados en el conocimiento de los mecanismos moleculares que participan en muchas de las enfermedades hepáticas, ha dado lugar al diseño de nuevas estrategias de tratamiento de las hepatopatías, algunas de las cuales se encuentran ya en las primeras fases de la experimentación clínica.

La variedad en las células diana y en el material genético a transferir configuran las distintas estrategias de la terapia génica. Aunque la transferencia génica a células germinales es posible, su aplicación clínica presenta serios obstáculos prácticos y éticos3, por lo que el término de terapia génica se aplica con carácter general a la modificación genética de las células somáticas. El material genético que se emplea en terapia génica es de naturaleza diversa. Los genes naturales, porciones de ADN que codifican para proteínas naturales con efecto biológico conocido, se emplean en la terapia génica de complementación (genes de proteínas deficitarias o anormales) y de inducción de funciones biológicas nuevas (genes de citocinas, antígenos o genes suicidas). Los genes quiméricos, producidos en el laboratorio, incluyen los anticuerpos de cadena simple (capaces de reconocer específicamente un antígeno, pero que quedan retenidos dentro de la célula), y las proteínas dominantes mutadas (similares a proteínas reguladoras que, sin perder la capacidad de unión al ADN, carecen del efecto regulador y compiten con las proteínas no mutadas). Otros tipos de material genético no requieren síntesis proteica, como los ribozimas, moléculas de ARN con capacidad de destruir específicamente otros ARN diana; las moléculas antisentido, oligonucleótidos que se unen a secuencias específicas de ADN o ARN y bloquean su expresión, y las moléculas señuelo, que secuestran por unión específica las proteínas reguladoras e impiden su efecto biológico.

El propósito de este trabajo es describir los avances conseguidos en la manera de transferir este material genético a los hepatocitos, e ilustrar algunas de las posibles aplicaciones de la terapia génica somática al tratamiento de distintas hepatopatías.

Procedimientos de transferencia génica al hígado

Son dos las formas de transferir material genético a los hepatocitos (fig. 2). La transferencia ex vivo ha sido la primera en utilizarse en pacientes4; consiste en el aislamiento de los hepatocitos procedentes de una pieza de hepatectomía, su cultivo y transducción in vitro, y su posterior reintroducción en el individuo. En la práctica, este procedimiento sólo tendría interés para la corrección de enfermedades monogénicas en las que la función hepática no se viera comprometida, como la hipercolesterolemia familiar. La segunda forma, transferencia in vivo, consiste en la introducción directa del material genético en el paciente, y supone ventajas obvias desde el punto de vista práctico, en primer lugar su sencillez.

En cualquier caso, la transferencia génica dirigida al hígado puede lograrse por medio de dos tipos de vehículos o vectores: los vectores virales y los no virales. Los primeros se construyen sustituyendo porciones del genoma viral que resulten imprescindibles para la replicación del virus por los genes terapéuticos gobernados por promotores adecuados. La lista de virus utilizados en experimentos preclínicos se amplía cada año e incluye retrovirus, adenovirus, virus adenoasociados, lentivirus, herpesvirus, baculovirus, vacciniavirus y otros, aunque los tres primeros concentran hoy día el interés para la aplicación clínica. Los retrovirus han sido los vectores más utilizados para la transferencia ex vivo5,6. Los retrovirus recombinantes poseen la capacidad de integrarse establemente en el genoma humano a condición de que la célula diana se replique de manera activa. Esto ocurre con los hepatocitos tras agresiones diversas, o cuando se hallan en cultivo, por lo que los retrovirus son vectores interesantes para la terapia ex vivo5,7. La integración del genoma del retrovirus defectivo permite lograr una expresión estable y duradera del transgén. De hecho, en animales sometidos a hepatectomía parcial antes de la administración de un vector retroviral mediante infusión hepática asanguínea, se logra una expresión hepática muy duradera del transgén8. Sin embargo, la falta de especificidad hística, la dificultad de producir grandes cantidades del vector, y la dependencia de células diana replicantes dificultan las aplicaciones clínicas de los retrovirus a las enfermedades hepáticas crónicas, aunque no a los tumores. Además, aunque en la experiencia clínica disponible los retrovirus se han demostrado seguros9,10, la potencial oncogenicidad e interferencia con funciones celulares en virtud de la localización al azar del lugar de integración del retrovirus en el genoma de la célula huésped no deja de ser un inconveniente más.

Los lentivirus son un tipo de retrovirus derivados del virus de la inmunodeficiencia humana, con capacidad para transfectar células quiescentes. Los vectores derivados de estos virus son capaces de transducir eficazmente el hígado y conseguir una expresión prolongada del transgén, sin desencadenar una respuesta inmune contra las células transducidas11. El perfeccionamiento de los sistemas de seguridad en la fabricación de estos vectores podría permitir una gran variedad de aplicaciones clínicas6.

Los adenovirus humanos tipos 2 y 5 han sido los vectores más investigados en su utilidad como medios de transferencia génica al hígado por múltiples razones: no son oncogénicos12, no se integran en el genoma de la célula huésped, las enfermedades que producen los virus salvajes se conocen y son benignas13, infectan células quiescentes, se pueden producir en grandes cantidades13,14 y transducen eficazmente el hígado cuando se administran por vía intravenosa15,16, intraarterial (datos personales no publicados) e intrabiliar retrógrada17. Su principal inconveniente reside en la capacidad de generar una respuesta inmune específica, que destruye las células infectadas limitando la duración de la expresión del transgén18,19 e impide la eficacia de la administración sistémica de nuevas dosis18,20.

Sin embargo, estos dos inconvenientes, que limitan su utilidad en el tratamiento de las enfermedades hepáticas crónicas, no suponen un obstáculo para el tratamiento de los tumores hepáticos, como veremos más adelante. Además, la expresión prolongada del transgén puede conseguirse induciendo un estado de inmunosupresión temporal21,22, o bien reduciendo e incluso eliminando la antigenicidad de los vectores mediante la sustracción de las porciones del genoma adenoviral que codifican para otras proteínas23.

Los virus adenoasociados son virus ADN no patógenos, que resultan atractivos como vectores de terapia génica, ya que transducen eficazmente células quiescentes y las células transducidas expresan el transgén de forma estable y duradera24,25. Se han utilizado en modelos animales de hemofilia para transferir el gen del factor IX a los hepatocitos mediante inyección portal, con alta eficacia y persistencia26.

Los vectores no virales son un grupo heterogéneo de vehículos que incluyen liposomas, complejos ADN-proteínas, sistemas balísticos que utilizan partículas metálicas y otros, incluyendo la administración del ADN desnudo de proteínas. En general, la eficacia de la transducción es menor que con los vectores virales, pero a cambio permiten la administración de dosis repetidas al no ser inmunogénicos per se. Un caso particular dentro de los vectores no virales es el de los virosomas, liposomas que incluyen proteínas o péptidos fusogénicos derivados de proteínas virales o bacterianas que alteran la función endolisosómica y permiten una mayor eficacia transfectiva. Liposomas así modificados con la envuelta del virus Sendai son capaces de transducir hepatocitos in vivo con gran efi cacia27,28.

ENFERMEDADES SUSCEPTIBLES DE TRATAMIENTO

Enfermedades metabólicas (tabla I)

Son muchas las enfermedades debidas a errores congénitos del metabolismo que tienen su asiento o su expresión en el hígado y, por tanto, son susceptibles de remedio mediante la transferencia génica hepática. Dos de ellas nos servirán como ejemplo de lo que la terapia génica puede ofrecer a su tratamiento. El déficit de ornitil transcarbamilasa es el más frecuente y grave de los trastornos congénitos del ciclo de la urea, y se hereda de forma recesiva ligada al cromosoma X. El defecto genético, que puede ser muy variado, da lugar a una proteína no funcionante, que ocasiona aciduria orótica, hiperamonioemia y coma. La transferencia del gen correcto restablece la normalidad metabólica en cultivos de hepatocitos29. En modelos animales, la terapia génica de este proceso utilizando vectores adenovirales resultó eficaz y segura30, y ha dado pie a un ensayo clínico en pacientes del que aún no se han publicado resultados.

Por otro lado, la hemofilia es un trastorno de la hemostasia ligado al cromosoma X, debido a mutaciones congénitas o adquiridas que producen una deficiencia o una alteración funcional en los factores VIII y IX de la coagulación. El aporte de factores exógenos controla la clínica de la enfermedad, por lo que la terapia génica de este proceso contempla tanto la corrección del defecto intrínseco como la inducción de la fabricación in vivo de cantidades apreciables de estos factores. Así, la transferencia al hígado o al músculo del gen correspondiente al factor necesario permite la producción de valores clínicamente eficaces de la proteína31. Los vectores retrovirales y adenovirales, sin embargo, carecen hoy por hoy de utilidad clínica en esta situación por la transitoriedad de su expresión. Por el contrario, la infusión intraportal de virus adenoasociados defectivos portadores del gen de factor IX permite una expresión duradera y clínicamente útil en modelos caninos y murinos32,33. Los avances en el desarrollo de la terapia génica de la hemofilia serán trascendentes para otras enfermedades monogenéticas en las que una proteína escasea, como la hipercolesterolemia familiar, pero no para aquellas otras, como el déficit de *-1-antitripsina, en que el problema es la conformación de la proteína anómala.

Otro enfoque, mucho más sofisticado pero también más atractivo, de tratamiento de las enfermedades monogénicas es el de intentar la reparación del defecto genético. La técnica, de reciente desarrollo, sirve para corregir mutaciones puntuales y se basa en la observación de que moléculas híbridas de ADN y ARN son activas en las reacciones de apareamiento homólogo de bases. Muy sintéticamente, se construye una molécula quimérica que es complementaria de la porción del gen que incluye la mutación puntual, con la salvedad de que, en lugar de la base mutada, posee la base correcta. Esta molécula, puesta en contacto con el gen defectuoso, se une a la zona alterada, y los mecanismos naturales de reparación del ADN se encargan de introducir la base corregida. Esta reparación genética dirigida se ha empleado, por ejemplo, para corregir la hiperbilirrubinemia en ratas Gunn, modelo animal del síndrome de Crigler-Najiar tipo 131.

Hepatitis viral

En general, son dos las estrategias de terapia génica de la hepatitis viral: la inmunológica, que trata de potenciar la respuesta inmune del paciente, utilizando células genéticamente modificadas para expresar antígenos virales, citocinas inmunostimuladoras o ambos, y la propiamente antiviral, que trata de hacer a las células resistentes a la infección al interferir en alguna fase del ciclo biológico del virus.

La infección por el virus de la hepatitis B (VHB) se ha utilizado como modelo de inmunización génica prácticamente desde las primeras experiencias con la inyección intramuscular de ADN desnudo34. La inyección de plásmidos que codifican para los antígenos de superficie y del core del VHB induce la aparición de una respuesta inmunitaria humoral y celular (helper y citotóxica), que es multiespecífica y persistente, y se acompaña de secreción de citocinas de tipo Th1 y una intensa respuesta citotóxica35,36, lo que hace que la inmunización genética tenga una clara ventaja teórica sobre la vacuna tradicional. Estas características pueden mejorarse mediante la administración conjunta de los genes del antígeno y otros genes que codifican citocinas o moléculas coestimuladoras37,38. La eficacia observada inicialmente en ratones se ha confirmado en otros modelos animales, como el chimpancé39, e incluso en aquellos que más semejan la infección por el VHB, como la marmota o el pato40-42. Todos estos datos han llevado al inicio de ensayos clínicos en fase I para valorar la seguridad y eficacia de las vacunas genéticas frente al VHB utilizando tanto la inyección de ADN intramuscular como la pistola génica.

Sin embargo, las aplicaciones de la inmunoterapia génica no se limitan a la prevención. En patos infectados crónicamente con el virus VHB del pato, la inyección de plásmidos que expresan el antígeno de superficie reduce sustancialmente la viremia y el contenido en ADN viral del hígado41. Así mismo, en chimpancés con infección crónica por el VHB, la administración repetida de un vector retroviral que expresa el antígeno del core del VHB permite la seroconversión anti-HBe y una disminución de la viremia43.

Respecto a las estrategias propiamente antivirales, se ha logrado eficacia en el bloqueo de la expresión del VHB en cultivos celulares utilizando moléculas antisentido44, ribozimas45 y proteínas negativas transdominantes46. Sin embargo, en modelos de ratones transgénicos47, marmota48 y pato49, el efecto de la administración de moléculas antisentido parece ser transitorio.

Respecto al virus de la hepatitis C (VHC), varios trabajos han descrito la inducción de respuesta inmunológica tras la transferencia de plásmidos que expresan distintos genes del VHC, como el del core, los de las proteínas de la envuelta (E1 y E2) y los de proteínas no estructurales como NS3, tanto solos como junto a genes de citocinas inmunopotenciantes, como la interleucina 1250,51. Por otro lado, estudios con moléculas antisentido y ribozimas han permitido identificar las regiones más adecuadas para lograr la inhibición de la replicación de este virus52-54. Sin embargo, el desarrollo de estas estrategias se ve limitado por la ausencia de unos modelos animales adecuados.

Tumores primarios y secundarios (tabla II)

En general, la terapia génica de las distintas enfermedades neoplásicas se ha abordado con estrategias comunes que incluyen la sustitución de la función perdida de determinados genes supresores de tumores, la sensibilización selectiva del tumor a profármacos inactivos, la inmunopotenciación mediante la secreción local de citocinas, la inhibición de la acción de oncogenes activados o la interferencia con los factores que promueven la angiogénesis tumoral.

En muchos tumores, incluidos el hepatocarcinoma (HCC) y el carcinoma colorrectal, es frecuente hallar una pérdida de la función del gen supresor de tumores p53, generalmente debida a mutaciones puntuales55. Estudios in vitro utilizando liposomas y retrovirus han demostrado cómo la transferencia génica del gen p53 nativo a líneas celulares de HCC con el gen mutado o delecionado produce una inhibición de la proliferación celular56,57 e incrementa la sensibilidad de las células tumorales a los citostáticos57. Por otro lado, la administración repetida por vía intraarterial hepática de adenovirus que expresa p53 inhibe el crecimiento tumoral en modelos murinos de HCC58. Este efecto antitumoral no ha sido corroborado en otros modelos experimentales de HCC tras la inyección portal59, pero sí tras la inyección intratumoral60, lo que pone de relieve la importancia de la vía de administración en el efecto terapéutico61. A partir de estos datos, dos ensayos clínicos han investigado esta estrategia en pacientes con HCC. En uno de ellos, los pacientes recibían por vía intratumoral cantidades variables de un plásmido con el gen de p5362. Aunque el objetivo del estudio era la seguridad, y no la eficacia, se observaron remisiones en algunos de los pacientes, una de ellas completa. Además, se ha sugerido la posibilidad de que se produzca un efecto de vecindad de base inmunológica, por el cual mueren células no transfectadas63. En otro ensayo clínico, del que no se han publicado resultados, los pacientes recibieron un vector adenoviral con el gen de p53 mediante inyección en la arteria hepática64. Sin embargo, es probable que el éxito de esta estrategia se vea limitado por la exigencia de obtener una transducción masiva del tumor, umbral inalcanzable con los vectores de que hoy disponemos, y porque la acción del p53 nativo transferido puede verse suprimida a nivel postranscripcional o por la inducción de mutaciones, como se ha descrito en líneas celulares de cáncer colorrectal65.

Otra opción de abordaje génico del tratamiento del HCC es interferir con la acción de los oncogenes implicados. Así, el bloqueo de la acción N-ras en células de HCC por medio de la transducción con retrovirus portadores de secuencias antisentido se traduce en una inhibición del crecimiento tumoral in vitro y una reducción de la tumorigenicidad en ratones atímicos66. La transducción estable de células de HCC con plásmidos que contienen moléculas antisentido dirigidas contra el mARN del factor de crecimiento de los fibroblastos tipo 2 produce una inhibición de la síntesis de este factor, que se asocia a la pérdida de la tumorigenicidad en ratones atímicos67. Por otro lado, la inhibición de la expresión del factor de crecimiento semejante a la insulina tipo 1 (IGF-1), factor implicado en el mantenimiento del fenotipo transformado de líneas celulares de HCC, restaura la capacidad apoptótica de los hepatocitos transformados68. El principal escollo contra el que chocan dichas estrategias estriba en la dificultad de lograr un acceso restringido y eficaz de los vectores al tumor. Con todo, la interferencia con la acción de oncogenes y factores de crecimiento involucrados en el desarrollo tumoral por medio de moléculas antisentido podría también ser útil en el tratamiento del HCC.

Otra estrategia posible consiste en la activación de profármacos mediada por genes llamados «suicidas». La utilidad de la mayoría de los agentes antineoplásicos se ve limitada por el paralelismo entre eficacia antitumoral y efectos adversos, principalmente sobre precursores hematopoyéticos y mucosa digestiva. El empleo de genes que sensibilicen selectivamente las células tumorales a la acción de fármacos podría ser una solución a este problema. Básicamente, las estrategias de genes suicidas pretenden crear diferencias artificiales entre las células normales y las tumorales en cuanto a la sensibilidad a un fármaco. La mayoría de ellas emplea genes codificantes de enzimas bacterianas o virales que convierten formas inactivas de un fármaco en metabolitos tóxicos capaces de inhibir la síntesis de ácidos nucleicos.

De todos los genes capaces de cumplir esta función, los más estudiados han sido los genes de la timidinquinasa (tk) de los virus del grupo herpes. El virus herpes simple tipo 1 codifica para una tk que fosforila no sólo la timidina, sino también otros muchos análogos de nucleótidos que son un mal sustrato para la tk celular, como el ganciclovir69. Por acción de la tk viral, el ganciclovir se fosforila a la forma trifosfato, que a su vez inhibe la ADN-polimerasa e induce la terminación de la síntesis del ADN, produciendo la muerte celular de las células en división. Una característica peculiar de este sistema es el denominado efecto de vecindad (by-stander effect), por el cual la transducción de sólo una porción de las células tumorales produce un efecto amplificado e, incluso, la erradicación del tumor. A este efecto parecen contribuir tanto la puesta en marcha de una reacción inmunológica70 como la transferencia del ganciclovir activado a través de uniones intercelulares o por fagocitosis de cuerpos apoptóticos71,72. El sistema tk es eficaz en cultivos celulares73 y en modelos animales de HCC, tanto en modelos de tumores subcutáneos como en tumores ortotópicos74 o en neoplasias multinodulares inducidas por tóxicos16. Sin embargo, la acción antitumoral se ve limitada por la aparición de toxicidad hepática grave16,75 cuando la transferencia de hepatocitos sanos es intensa, como ocurre tras la administración sistémica o regional de dosis altas del vector. Ello exige aumentar la selectividad de la estrategia mediante la aplicación intratumoral directa74 o mediante el empleo de promotores específicos del tejido tumoral como el de la *-fetoproteína, que restringen la expresión76-78 o la replicación79 del vector al tejido tumoral. Otro gen suicida ensayado con éxito en modelos experimentales de HCC y metástasis hepáticas del cáncer colorrectal es el de la citosín-deaminasa, enzima de Escherichia coli, que convierte un antifúngico como la flucitosina en 5-fluorouracilo80,81.

Todo un cúmulo de datos sugiere que la incapacidad del sistema inmune para eliminar un tumor depende, en gran parte, de la incapacidad de los antígenos tumorales para lograr estimular una respuesta eficaz82. A este hecho contribuyen la pérdida de la expresión en las células tumorales de moléculas HLA de clase I o moléculas coestimuladoras como B7, la presentación aberrante de los antígenos tumorales o la inhibición del sistema inmune por factores secretados por las propias células malignas. Con el propósito de estimular la respuesta inmune antitumoral, se ha ensayado el tratamiento con diversas citocinas, entre ellas las interleucinas 2 y 12, el interferón-*, o el factor de necrosis tumoral alfa (TNF-*)83-88. Las células de HCC murino transducidas in vitro con vectores retrovirales que expresan TNF-* pierden su tumorigenicidad e inducen inmunidad antitumoral, de forma que la administración intratumoral de estos retrovirus prolonga la supervivencia de los animales tratados88. Estudios de nuestro grupo han mostrado cómo líneas celulares de HCC murino ingenierizadas para expresar IL-12 pierden su tumorigenicidad. De hecho, el tratamiento de animales con vectores retrovirales89 o adenovirales83 que expresan IL-12 induce remisiones tumorales e inmunidad protectora. Igualmente, la inmunización con células tumorales ingenierizadas para expresar B7 produce en ratones la regresión de tumores implantados B7 negativos. Además, la transducción del HCC ya establecido con el gen de B7 produce un efecto antitumoral neto en ratones90.

Por su parte, las células presentadoras de antígenos desempeñan un papel importante en la generación y regulación de la respuesta inmune frente a tumores. Las células dendríticas son eficaces presentadoras de antígenos que pueden manipularse artificialmente para que presenten antígenos tumorales, bien pulsándolas con péptidos o extractos tumorales, o mediante la transducción de genes que codifiquen para antígenos tumorales relevantes, como la *-fetoproteína91, o para citocinas que promuevan su proliferación y activación, como la IL-1292. Las células dendríticas así manipuladas pueden inducir respuestas antitumorales enérgicas.

Por otro lado, el crecimiento de cualquier tumor más allá de un determinado volumen depende de la capacidad para asegurarse la nutrición a partir de vasos neoformados. Por ello, la inhibición de la angiogénesis tumoral es una estrategia de tratamiento antineoplásico que ha experimentado un gran desarrollo en la última década93,94 y que es abordable mediante transferencia génica. El efecto antitumoral puede conseguirse inhibiendo la acción de factores de crecimiento involucrados en el desarrollo de los neovasos tumorales, como el factor de crecimiento del endotelio vascular95, o mediante la producción in situ de proteínas con acción antiangiogénica, como la endostatina o la angiostatina96. Además, la inhibición de la neoangiogénesis podría explicar parte del efecto antitumoral de la interleucina 12 (datos no publicados). No obstante, ninguna de estas estrategias ha sido aún ensayada en modelos de cáncer hepático.

Cirrosis hepática

Una notable porción de las hepatopatías crónicas son diagnosticadas en la fase cirrótica, para la que no existe otro tratamiento capaz de prolongar la supervivencia que el trasplante hepático, y en la que el avance de la enfermedad depende del desarrollo de fibrosis y de una progresiva reducción de la masa hepatocelular eficaz. La administración de factores tróficos hepáticos como el factor de crecimiento hepatocitario (HGF) o el IGF-1 puede contribuir a reducir la fibrosis y mejorar la función hepática en modelos experimentales de cirrosis97,98. De igual forma, la transferencia génica de HGF al músculo de ratas cirróticas utilizando formulaciones liposomales permite una producción sostenida de cantidades apreciables de este factor, que producen una regresión de la fibrosis mediada, al menos en parte, por una regulación a la baja del TGF-ß99.

Trasplante hepático

El desarrollo de una técnica quirúrgica precisa y compleja, así como la disponibilidad de fármacos inmunosupresores más eficaces y seguros, han hecho del trasplante hepático el tratamiento de elección en muchos pacientes con hepatopatías agudas o crónicas graves. Sin embargo, los resultados no pueden considerarse aún ideales, y la escasez de órganos disponibles exige la optimación de los recursos y procedimientos, a lo que la terapia génica puede colaborar de diferentes maneras. La aceptación de un órgano injertado depende de múltiples variables entre las que se encuentran la salud global del donante y el receptor, el estado del órgano en el momento de la extracción, el grado de daño oxidativo e isquémico inducido por el procedimiento y el grado de inmunocompatibilidad entre donante y receptor.

Las potenciales dianas de intervención mediante terapia génica son muchas. Por un lado, se puede actuar sobre el daño por isquemia-reperfusión, bien dificultando la interacción entre leucocito y célula endotelial mediante el bloqueo de moléculas de adhesión, o bien protegiendo a la célula por la generación de grandes cantidades intracelulares de superóxido dismutasa100 o catalasa101 mediante transferencia de los respectivos genes. Por otro lado, se puede interferir con la cascada de acontecimientos que desencadenan y expanden la respuesta inmunológica del huésped contra el injerto. En este sentido, la transferencia génica de TGF-ß1 prolonga la supervivencia de injertos hepáticos en modelos experimentales, probablemente por inhibición de la síntesis de citocinas como TNF-* e IFN-*102. También se puede inducir tolerancia específica mediante la transferencia in vitro de los genes del complejo mayor de histocompatibilidad del donante a células de médula ósea del receptor103,104. Otra forma de atacar el problema es la de intentar inhibir la coestimulación de las células T necesaria para un rechazo eficaz del injerto. Esto puede lograrse mediante proteínas de fusión como CTLA-4lg, que se adhieren a los receptores de la molécula B7 y los bloquean105,106. Utilizando vectores adenovirales y un modelo murino de transplante hepático, la transferencia del cADN de CTLA-4lg al hígado preservado produce una prolongación indefinida de la supervivencia del injerto alogénico, sin aparente daño por isquemia-reperfusión y con tolerancia específica107. Finalmente, se puede hacer del injerto un «santuario» inmunológico a imagen de los santuarios naturales, como el testículo, utilizando el ligando de Fas. Esta molécula contribuye de forma capital a regular la respuesta inmune, de forma que su interacción con el receptor Fas, presente en la membrana de los linfocitos T, hace que éstos entren en apoptosis108. Aunque los resultados en modelos distintos son contradictorios, probablemente en virtud de la conformación de la proteína, la sobreexpresión del ligando de Fas en injertos hepáticos alogénicos prolonga significativamente la supervivencia del injerto en ratas109,110.

Consideraciones finales

En la última década hemos asistido al advenimiento de una nueva arma terapéutica, la terapia génica, que es consecuencia del mayor conocimiento de la biología humana y del progreso tecnológico. El desarrollo preclínico de esta modalidad de tratamiento ha sido rápido e intenso, de forma que más de 3.000 personas en todo el mundo han recibido tratamiento en el marco de ensayos clínicos. Sin embargo, la terapia génica no es aún una forma de tratamiento establecida. En lo que respecta a las enfermedades hepáticas, se han logrado avances muy prometedores en el desarrollo preclínico de algunas estrategias terapéuticas, lo que debe hacernos mantener el esfuerzo investigador en los próximos años.

Bibliografía
[1]
Mulligan RC..
The basic science of gene therapy..
Science, 260 (1993), pp. 926-932
[2]
Verma IM, Somia M..
Gene therapy ­ promises, problems and prospects..
Nature, 389 (1997), pp. 239-242
[3]
Hum Gene Ther 1992; 3: 519-523.
[4]
Raper SE, Grossman M, Rader DJ, Thoene JG, Clark BJ, Kolansky DM et al..
Safety and feasibility of liver-directed ex vivo gene therapy for homozygous familial hypercholesterolemia..
Ann Surg, 223 (1996), pp. 116-126
[5]
Grossman M, Wilson JM..
Retroviruses: delivery vehicle to the liver..
Curr Opin Genet Dev, 3 (1993), pp. 110-114
[6]
Kalpana GV..
Retroviral vectors for liver-directed gene therapy..
Semin Liver Dis, 19 (1999), pp. 27-37
[7]
Holmberg EG, Reuer QR, Geisert EE, Owens JL..
Delivery of plasmid DNA to glial cells using pH-sensitive immunoliposomes..
Biochem Biophys Res Comm, 201 (1994), pp. 888-893
[8]
Ferry N, Duplessis O, Houssin D, Danos O, Heard JM..
Retroviral-mediated gene transfer into hepatocytes in vivo..
Proc Natl Acad Sci USA, 88 (1991), pp. 8377-8381
[9]
Grossman M, Rader DJ, Muller DW, Kolansky DM, Kozarsky K, Clark BJ et al..
A pilot study of ex vivo gene therapy for homozygous familial hypercholesterolaemia..
J Nat Med, 1 (1995), pp. 1148-1154
[10]
Grossman M, Raper SE, Kozarsky K, Stein EA, Engelhardt JF, Muller D et al..
Successful ex vivo gene therapy directed to liver in a patient with familial hypercholesterolaemia..
Nat Genet, 6 (1994), pp. 335-341
[11]
Kafri T, Blomer U, Peterson DA, Gage FH, Verma IM..
Sustained expression of genes delivered directly into liver and muscle by lentiviral vectors..
Nat Genet, 17 (1997), pp. 314-317
[12]
Crystal RG..
In vivo and ex vivo gene therapy strategies to treat tumors using adenovirus gene transfer vectors..
Cancer Chemother Pharmacol, 43(Supl) (1999), pp. 90-99
[13]
Berns KI, Giraud C..
Adenovirus and adeno-associated virus as vectors for gene therapy..
Ann NY Acad Sci, 772 (1995), pp. 95-104
[14]
Kozarsky KF, Wilson JM..
Gene therapy: adenovirus vectors..
Curr Opin Genet Dev, 3 (1993), pp. 499-503
[15]
Topf N, Worgall S, Hackett NR, Crystal RG..
Regional «pro-drug» gene therapy: intravenous administration of an adenoviral vector expressing the E. coli cytosine deaminase gene and systemic administration of 5-fluorocytosine suppresses growth of hepatic metastasis of colon carcinoma..
Gene Ther, 5 (1998), pp. 507-513
[16]
Qian C, Idoate M, Bilbao R, Sangro B, Bruna O, Vázquez J et al..
Gene transfer and therapy with adenoviral vector in rats with diethylnitrosamine-induced hepatocellular carcinoma..
Hum Gene Ther, 8 (1997), pp. 349-358
[17]
Yang Y, Raper SE, Cohn JA, Engelhardt JF, Wilson JM..
An approach for treating the hepatobiliary disease of cystic fibrosis by somatic gene transfer..
Proc Natl Acad Sci USA, 90 (1993), pp. 4601-4605
[18]
Nunes FA, Raper SE..
Liver-directed gene therapy..
Med Clin North Am, 80 (1996), pp. 1201-1213
[19]
DeMatteo RP, Chu G, Ahn M, Chang E, Burke C, Raper SE et al..
Immunologic barriers to hepatic adenoviral gene therapy for transplantation..
Transplantation, 63 (1997), pp. 315-319
[20]
Bramson JL, Hitt M, Gauldie J, Graham FL..
Pre-existing immunity to adenovirus does not prevent tumor regression following intratumoral administration of a vector expressing IL-12 but inhibits virus dissemination..
Gene Ther, 4 (1997), pp. 1069-1076
[21]
Ilan Y, Jona VK, Sengupta K, Davidson A, Horwitz MS, Roy Chowdhury N et al..
Transient immunosuppression with FK506 permits long-term expression of therapeutic genes introduced into the liver using recombinant adenoviruses in the rat..
Hepatology, 26 (1997), pp. 949-956
[22]
Kay MA, Meuse L, Gown AM, Linsley P, Hollenbaugh D, Aruffo A et al..
Transient immunomodulation with anti-CD40 ligand antibody and CTLA4lg enhances persistence and secondary adenovirus-mediated gene transfer into mouse liver..
Proc Natl Acad Sci USA, 94 (1997), pp. 4686-4691
[23]
Zhang WW..
Development and application of adenoviral vectors for gene therapy of cancer..
Cancer Gene Ther, 6 (1999), pp. 113-118
[24]
Bueler H..
Adeno-associated viral vectors for gene transfer and gene therapy..
Biol Chem, 380 (1999), pp. 613-622
[25]
Patijn GA, Kay MA..
Hepatic gene therapy using adeno-associated virus vectors..
Semin Liver Dis, 19 (1999), pp. 61-69
[26]
Koeberl DD, Alexander IE, Halbert CL, Russell DW, Miller AD..
Persistent expression of human clotting factor IX from mouse liver after intravenous injection of adeno-associated virus vectors..
Proc Natl Acad Sci USA, 94 (1997), pp. 1426-1431
[27]
Hirano T, Fujimoto J, Ueki T, Yamamoto H, Takeuchi M, Okamoto E et al..
HVJ-liposome mediated gene transfer into hepatocytes in vivo..
J Hepatol, 29 (1998), pp. 910-914
[28]
Uehara T, Honda K, Hatano E, Terao R, Iimuro Y, Yamamoto N et al..
Gene transfer to the rat biliary tract with the HVJ-cationic liposome method..
J Hepatol, 30 (1999), pp. 836-842
[29]
Morsy MA, Alford EL, Bett A, Graham FL, Caskey CT..
Efficient adenoviral-mediated OTC expression in deficient mouse and human hepatocytes..
J Clin Invest, 92 (1993), pp. 1580-1586
[30]
Kiwaki K, Kanegae Y, Saito I, Komaki S, Nakamura K, Miyazaki JI et al..
Correction of ornithine transcarbamylase deficiency in adult spf(ash) mice and in OTC-deficient human hepatocytes with recombinant adenoviruses bearing the CAG promoter..
Hum Gene Ther, 7 (1996), pp. 821-830
[31]
Kaufman R..
Advances toward gene therapy of hemophilia at the millenium..
Hum Gene Ther, 10 (1999), pp. 2091-2107
[32]
Wang L, Takabe K, Bidlingmaier SM, Ill CR, Verma IM..
Sustained correction of bleeding disorder in hemophilia B mice by gene therapy..
Proc Natl Acad Sci USA, 96 (1999), pp. 3906-3910
[33]
Snyder RO, Miao C, Meuse L, Tubb J, Donahue BA, Lin HF et al..
Correction of hemophilia B in canine and murine models using recombinant adeno-associated viral vectors..
Nat Med, 5 (1999), pp. 64-70
[34]
Wolff JA, Malone W, Williams P, Chong W, Acsadi G, Jani A et al..
Direct gene transfer into mouse muscle in vivo..
Science, 247 (1990), pp. 1465-1468
[35]
Davis HL, Michel ML, Mancini M, Schleef M, Whalen RG..
Direct gene transfer in skeletal muscle: plasmid DNA-based immunization against the hepatitis B virus surface antigen..
Vaccine, 12 (1994), pp. 1503-1509
[36]
Davis HL, Schirmbeck R, Reimann J, Whalen RG..
DNA-mediated immunization in mice induces a potent MHC class I-restricted cytotoxic T lymphocyte response to hepatitis B surface antigen..
Hum Gene Ther, 6 (1995), pp. 1447-1456
[37]
He WS, Chen HS, Chu K, Rivkina M, Robinson WS..
Costimulatory protein B7-1 enhances the cytotoxic T cell response and antibody response to hepatitis B surface antigen..
Proc Natl Acad Sci USA, 93 (1996), pp. 7274-7278
[38]
Chow YH, Chiang BL, Lee YL, Chi WK, Lin WC, Chen YT et al..
Development of Th1 and Th2 populations and the nature of immune responses to hepatitis B virus DNA vaccines can be modulated by codelivery of various cytokine genes..
J Immunol, 160 (1998), pp. 1320-1329
[39]
Davis HL, McCluskie MJ, Germ JL, Purcell RH..
DNA vaccine for hepatitis B: evidence for immunogenicity in chimpanzees and comparison with other vaccines..
Proc Natl Acad Sci USA, 93 (1996), pp. 7213-7218
[40]
Lu M, Hilken G, Kruppenbacher J, Kemper T, Schirmbeck R, Reimann J et al..
Immunization of woodchucks with plasmids expressing woodchuck hepatitis virus (WHV) core antigen and surface antigen suppresses WHV infection..
J Virol, 73 (1999), pp. 281-289
[41]
Rollier C, Sunyach C, Barraud L, Madani N, Jamard C, Trepo C et al..
Protective and therapeutic effect of DNA-based immunization against hepadnavirus large envelope protein..
Gastroenterology, 116 (1999), pp. 658-665
[42]
Prince AM, Whalen R, Brotman B..
Successful nucleic acid based immunization of newborn chimpanzees against hepatitis B virus..
Vaccine, 15 (1997), pp. 916-919
[43]
Sallberg M, Hughes J, Javadian A, Ronlov G, Hultgren C, Townsend K et al..
Genetic immunization of chimpanzees chronically infected with the hepatitis B virus, using a recombinant retroviral vector encoding the hepatitis B virus core antigen..
Hum Gene Ther, 9 (1998), pp. 1719-1729
[44]
Ji W, St CW..
Inhibition of hepatitis B virus by retroviral vectors expressing antisense RNA..
J Viral Hepat, 4 (1997), pp. 167-173
[45]
Ruiz J, Ito Y, Wu CH, Wu GY..
Design and preparation of a multimeric self-cleaving hammerhead ribozyme..
Biotechniques, 22 (1997), pp. 338-345
[46]
Scaglioni P, Melegari M, Takahashi M, Chowdhury JR, Wands J..
Use of dominant negative mutants of the hepadnaviral core protein as antiviral agents..
Hepatology, 24 (1996), pp. 1010-1017
[47]
Moriya K, Matsukura M, Kurokawa K, Koike K..
In vivo inhibition of hepatitis B virus gene expression by antisense phosphorothioate oligonucleotides..
Biochem Biophys Res Commun, 218 (1996), pp. 217-223
[48]
Bartholomew RM, Carmichael EP, Findeis MA, Wu CH, Wu GY..
Targeted delivery of antisense DNA in woodchuck hepatitis virus-infected woodchucks..
J Viral Hepat, 2 (1995), pp. 273-278
[49]
Offensperger WB, Offensperger S, Walter E, Teubner K, Igloi G, Blum HE et al..
In vivo inhibition of duck hepatitis B virus replication and gene expression by phosphorothioate modified antisense oligodeoxynucleotides..
EMBO J, 12 (1993), pp. 1257-1262
[50]
Bruna Romero O, Lasarte JJ, Wilkinson G, Grace K, Clarke B, Borras Cuesta F et al..
Induction of cytotoxic T-cell response against hepatitis C virus structural antigens using a defective recombinant adenovirus..
Hepatology, 25 (1997), pp. 470-477
[51]
Lasarte JJ, Corrales FJ, Casares N, López Díaz de Cerio A, Qian C, Xie X et al..
Different doses of adenoviral vector expressing IL-12 enhance or depress the immune response to a coadministered antigen: the role of nitric oxide..
J Immunol, 162 (1999), pp. 5270-5277
[52]
Alt M, Renz R, Hofschneider PH, Paumgartner G, Caselmann WH..
Specific inhibition of hepatitis C viral gene expression by antisense phosphorothioate oligodeoxynucleotides..
Hepatology, 22 (1995), pp. 707-717
[53]
Hanecak R, Brown Driver V, Fox MC, Azad RF, Furusako S, Nozaki C et al..
Antisense oligonucleotide inhibition of hepatitis C virus gene expression in transformed hepatocytes..
J Virol, 70 (1996), pp. 5203-5212
[54]
Lima WF, Brown Driver V, Fox M, Hanecak R, Bruice TW..
Combinatorial screening and rational optimization for hybridization to folded hepatitis C virus RNA of oligonucleotides with biological antisense activity..
J Biol Chem, 272 (1997), pp. 626-638
[55]
Hayashi H, Sugio K, Matsumata T, Adachi E, Urata K, Tanaka S et al..
The mutation of codon 249 in the p53 gene is not specific in Japanese hepatocellular carcinoma..
Liver, 13 (1993), pp. 279-281
[56]
Qian C, Prieto J..
Growth suppression of human hepatocellular carcinoma (HCC) cells by the introduction of wild-type p53 (wt-p53)..
J Hepatol, 21(Supl1) (1994), pp. 9
[57]
Xu GW, Sun ZT, Forrester K, Wang XW, Coursen J, Harris CC..
Tissue-specific growth suppression and chemosensitivity promotion in human hepatocellular carcinoma cells by retroviral-mediated transfer of the wild-type p53 gene..
Hepatology, 24 (1996), pp. 1264-1268
[58]
Anderson SC, Johnson DE, Harris MP, Engler H, Hancock W, Huang WM et al..
p53 gene therapy in a rat model of hepatocellular carcinoma: intra-arterial delivery of a recombinant adenovirus..
Clin Cancer Res, 4 (1998), pp. 1649-1659
[59]
Bao JJ, Zhang WW, Kuo MT..
Adenoviral delivery of recombinant DNA into transgenic mice bearing hepatocellular carcinomas..
Hum Gene Ther, 7 (1996), pp. 355-365
[60]
Choi JY, Park YM, Byun BH, Kim BS, Hong EG, Shin DY et al..
Adenovirus-mediated p53 tumor suppressor gene therapy against subcutaneous HuH7 hepatoma cell line nodule of nude mice..
J Korean Med Sci, 14 (1999), pp. 271-276
[61]
Nielsen LL, Gurnani M, Syed J, Dell J, Hartman B, Cartwright M et al..
Recombinant E1-deleted adenovirus-mediated gene therapy for cancer: efficacy studies with p53 tumor suppressor gene and liver histology in tumor xenograft models..
Hum Gene Ther, 9 (1998), pp. 681-694
[62]
Habib NA, Mitry RR, Sadri R..
p53 and gene therapy for hepatocellular carcinoma..
Adv Exp Med Biol, 451 (1998), pp. 499-504
[63]
Farzaneh F, Trefzer U, Sterry W, Walden P..
Gene therapy of cancer..
Immunol Today, 19 (1998), pp. 294-296
[64]
Marcel T, Grausz JD..
The TMC Worldwide Gene Therapy Enrollment Report, end 1996..
Hum Gene Ther, 8 (1997), pp. 775-800
[65]
Vinyals A, Peinado MA, González-Garrigues M, Monzó M, Bonfil RD, Fabra A..
Failure of wild-type p53 gene therapy in human cancer cells expressing a mutant p53 protein..
Gene Therapy, 6 (1999), pp. 22-33
[66]
Mercola D, Coben J..
Antisense approaches to cancer gene therapy..
Cancer Gene Ther, 2 (1995), pp. 47-59
[67]
Maret A, Galy B, Arnaud E, Bayard F, Prats H..
Inhibition of fibroblast growth factor 2 expression by antisense RNA induced a loss of the transformed phenotype in a human hepatoma cell line..
Cancer Res, 55 (1995), pp. 5075-5079
[68]
Ellouk Achard S, Djenabi S, De Oliveira GA, Desauty G, Duc HT, Zohair M et al..
Induction of apoptosis in rat hepatocarcinoma cells by expression of IGF-I antisense c-DNA..
J Hepatol, 29 (1998), pp. 807-818
[69]
Kuriyama S, Nakatani T, Masui K, Sakamoto T, Tominaga K, Yoshikawa M et al..
Evaluation of prodrugs ability to induce effective ablation of cells transduced with viral thymidine kinase gene..
Anticancer Res, 16 (1996), pp. 2623-2628
[70]
Kianmanesh AR, Perrin H, Panis Y, Fabre M, Nagy HJ, Houssin D et al..
A «distant» bystander effect of suicide gene therapy: regression of nontransduced tumors together with a distant transduced tumor..
Hum Gene Ther, 8 (1997), pp. 1807-1814
[71]
Kuriyama S, Nakatani T, Masui K, Sakamoto T, Tominaga K, Yoshikawa M et al..
Bystander effect caused by suicide gene expression indicates the feasibility of gene therapy for hepatocellular carcinoma..
Hepatology, 22 (1995), pp. 1838-1846
[72]
Ghoumari AM, Mouawad R, Zerrouqi A, Nizard C, Provost N, Khayat D et al..
Actions of HSVtk and connexin43 gene delivery on gap junctional communication and drug sensitization in hepatocellular carcinoma..
Gene Ther, 5 (1998), pp. 1114-1121
[73]
Qian C, Bilbao R, Bruna O, Prieto J..
Induction of sensitivity to ganciclovir in human hepatocellular carcinoma cells by adenovirus-mediated gene transfer of herpes simplex virus thymidine kinase..
Hepatology, 22 (1995), pp. 118-123
[74]
Sangro B, Bustos M, Barajas M, Herraiz M, Alzuguren P, Gil A et al..
Effective and safe gene therapy of experimental liver cancer by intratumoral injection of a defective adenovirus containing the thymidine kinase gene..
J Hepatol, 30(Supl1) (1999), pp. 159
[75]
Van der Eb MM, Cramer SJ, Vergouwe Y, Schagen FH, Van Krieken JH, Van der Eb AJ et al..
Severe hepatic dysfunction after adenovirus mediated transfer of the herpes simplex virus thymidine kinase gene and ganciclovir administration..
Gene Ther, 5 (1998), pp. 451-458
[76]
Ishikawa H, Nakata K, Mawatari F, Ueki T, Tsuruta S, Ido A et al..
Utilization of variant-type of human alpha-fetoprotein promoter in gene therapy targeting for hepatocellular carcinoma..
Gene Ther, 6 (1999), pp. 465-470
[77]
Kaneko S, Hallenbeck P, Kotani T, Nakabayashi H, McGarrity G, Tamaoki T et al..
Adenovirus-mediated gene therapy of hepatocellular carcinoma using cancer-specific gene expression..
Cancer Res, 55 (1995), pp. 5283-5287
[78]
Kanai F, Shiratori Y, Yoshida Y, Wakimoto H, Hamada H, Kanegae Y et al..
Gene therapy for alpha-fetoprotein-producing human hepatoma cells by adenovirus-mediated transfer of the herpes simplex virus thymidine kinase gene..
Hepatology, 23 (1996), pp. 1359-1368
[79]
Hallenbeck PL, Chang YN, Hay C, Golightly D, Stewart D, Lin J et al..
A novel tumor-specific replication-restricted adenoviral vector for gene therapy of hepatocellular carcinoma..
Hum Gene Ther, 10 (1999), pp. 1721-1733
[80]
Kuriyama S, Kikukawa M, Masui K, Okuda H, Nakatani T, Sakamoto T et al..
Cytosine deaminase/5-fluorocytosine gene therapy can induce efficient anti-tumor effects and protective immunity in immunocompetent mice but not in athymic nude mice..
Int J Cancer, 81 (1999), pp. 592-597
[81]
Kanai F, Lan KH, Shiratori Y, Tanaka T, Ohashi M, Okudaira T et al..
In vivo gene therapy for alpha-fetoprotein-producing hepatocellular carcinoma by adenovirus-mediated transfer of cytosine deaminase gene..
Cancer Res, 57 (1997), pp. 461-465
[82]
Chouaib S, Asselin-Paturel C, Mami-Chouaib F, Caignard A, Blay JY..
The host-tumor immune conflict: from immunosuppression to resistance and destruction..
Immunol Today, 18 (1997), pp. 493-497
[83]
Huang H, Chen SH, Kosai K, Finegold MJ, Woo SL..
Gene therapy for hepatocellular carcinoma: long-term remission of primary and metastatic tumors in mice by interleukin-2 gene therapy in vivo..
Gene Ther, 3 (1996), pp. 980-987
[84]
Bui LA, Butterfield LH, Kim JY, Ribas A, Seu P, Lau R et al..
In vivo therapy of hepatocellular carcinoma with a tumor-specific adenoviral vector expressing interleukin-2..
Hum Gene Ther, 8 (1997), pp. 2173-2182
[85]
Qin XQ, Tao N, Dergay A, Moy P, Fawell S, Davis A et al..
Interferon-beta gene therapy inhibits tumor formation and causes regression of established tumors in immune-deficient mice..
Proc Natl Acad Sci USA, 95 (1998), pp. 14411-14416
[86]
Caruso M, Pham Nguyen K, Kwong YL, Xu B, Kosai KI, Finegold M et al..
Adenovirus-mediated interleukin-12 gene therapy for metastatic colon carcinoma..
Proc Natl Acad Sci USA, 93 (1996), pp. 11302-11306
[87]
Ahmed CM, Sugarman BJ, Johnson DE, Bookstein RE, Saha DP, Nagabhushan TL et al..
In vivo tumor suppression by adenovirus-mediated interferon alpha2b gene delivery..
Hum Gene Ther, 10 (1999), pp. 77-84
[88]
Cao G, Kuriyama S, Du P, Sakamoto T, Kong X, Masui K et al..
Complete regression of established murine hepatocellular carcinoma by in vivo tumor necrosis factor alpha gene transfer..
Gastroenterology, 112 (1997), pp. 501-510
[89]
Sun Y, Qian C, Peng D, Prieto J..
Immunotherapy of hepatocellular carcinoma (HCC) by engineering tumor cells to express B7-1 and/or IL-12..
J Hepatol, 28(Supl1) (1998), pp. 59
[90]
Tatsumi T, Takehara T, Kanto T, Kuzushita N, Ito A, Kasahara A et al..
B7-1 (CD80)-gene transfer combined with interleukin-12 administration elicits protective and therapeutic immunity against mouse hepatocellular carcinoma..
Hepatology, 30 (1999), pp. 422-429
[91]
Vollmer CM Jr, Eilber FC, Butterfield LH, Ribas A, Dissette VB, Koh A et al..
Alpha-fetoprotein-specific genetic immunotherapy for hepatocellular carcinoma..
Cancer Res, 59 (1999), pp. 3064-3067
[92]
Banchereau J, Steinman RM..
Dendritic cells and the control of immunity..
Nature, 392 (1998), pp. 245-252
[93]
Gasparini G..
The rationale and future potential of angiogenesis inhibitors in neoplasia..
Drugs, 58 (1999), pp. 17-38
[94]
Van Hinsbergh VW, Collen A, Koolwijk P..
Angiogenesis and antiangiogenesis: perspectives for the treatment of solid tumors..
Ann Oncol, 10(Supl4) (1999), pp. 60-63
[95]
Kong HL, Hecht D, Song W, Kovesdi I, Hackett NR, Yayon A et al..
Regional suppression of tumor growth by in vivo transfer of a cDNA encoding a secreted form of the extracellular domain of the flt-1 vascular endothelial growth factor receptor..
Hum Gene Ther, 9 (1998), pp. 823-833
[96]
Griscelli F, Li H, Bennaceur-Griscelli A, Soria J, Opolon P, Soria C et al..
Angiostatin gene transfer: inhibition of tumor growth in vivo by blockage of endothelial cell proliferation associated with a mitosis arrest..
Proc Natl Acad Sci USA, 95 (1998), pp. 6367-6372
[97]
Yashuda H, Imai E, Shiota A, Fujise N, Morinaga T, Higashio K..
Antifibrotic effect of a deletion variant of hepatocyte growth factor on liver fibrosis in rats..
[98]
Castilla-Cortázar I, García M, Muguerza B, Quiroga J, Pérez R, Santidrian S et al..
Hepatoprotective effects of insulin-like growth factor I in rats with carbon tetrachloride-induced cirrhosis..
Gastroenterology, 113 (1997), pp. 1682-1691
[99]
Ueki T, Kaneda Y, Tsutsui H, Nakanishi K, Sawa Y, Morishita R et al..
Hepatocyte growth factor gene therapy of liver cirrhosis in rats..
Nat Med, 5 (1999), pp. 226-230
[100]
Woo YJ, Zhang JC, Vijayasarathy C, Zwacka RM, Englehardt JF, Gardner TJ et al..
Recombinant adenovirus-mediated cardiac gene transfer of superoxide dismutase and catalase attenuates postischemic contractile dysfunction..
Circulation, 98 (1998), pp. 1255-1260
[101]
Benhamou PY, Moriscot C, Richard MJ, Beatrix O, Badet L, Pattou F et al..
Adenovirus-mediated catalase gene transfer reduces oxidant stress in human, porcine and rat pancreatic islets..
Diabetologia, 41 (1998), pp. 1093-1100
[102]
Drazan KE, Olthoff KM, Wu L, Shen XD, Gelman A, Shaked A..
Adenovirus-mediated gene transfer in the transplant setting: early events after orthotopic transplantation of liver allografts expressing TGF-beta1..
Transplantation, 62 (1996), pp. 1080-1084
[103]
Sachs DH, Smith CV, Emery DW, LeGuern C, Bodine D, Nienhuis A et al..
Induction of specific tolerance to MHC-disparate allografts through genetic engineering..
Exp Nephrol, 1 (1993), pp. 128-133
[104]
Madsen JC, Yamada K, Allan JS, Choo JK, Erhorn AE, Pins MR et al..
Transplantation tolerance prevents cardiac allograft vasculopathy in major histocompatibility complex class I-disparate miniature swine..
Transplantation, 65 (1998), pp. 304-313
[105]
Chahine AA, Stoeckert C, Lau HT..
Local immunomodulation to promote co-stimulatory blockade..
Clin Transplant, 9 (1995), pp. 215-218
[106]
Steurer W, Nickerson PW, Steele AW, Steiger J, Zheng XX, Strom TB..
Ex vivo coating of islet cell allografts with murine CTLA4/Fc promotes graft tolerance..
J Immunol, 155 (1995), pp. 1165-1174
[107]
Olthoff KM, Judge TA, Gelman AE, Da Shen X, Hancock WW, Turka LA et al..
Adenovirus-mediated gene transfer into cold-preserved liver allografts: survival pattern and unresponsiveness following transduction with CTLA4lg..
Nat Med, 4 (1998), pp. 194-200
[108]
Nagata S, Golstein P..
The Fas death factor..
Science, 267 (1995), pp. 1449-1456
[109]
Fandrich F, Lin X, Zhu X, Kloppel G, Parwaresch R, Kremer B..
CD95L confers immune privilege to liver grafts which are spontaneously accepted..
Transplant Proc, 30 (1998), pp. 1057-1058
[110]
Li XK, Okuyama T, Tamura A, Fujino M, Funeshima N, Kaneda Y et al..
Prolonged survival of recipient rats with Fas-ligand-transfected liver allografts by using HVJ-liposome..
Transplant Proc, 30 (1998), pp. 943
Opciones de artículo
es en pt

¿Es usted profesional sanitario apto para prescribir o dispensar medicamentos?

Are you a health professional able to prescribe or dispense drugs?

Você é um profissional de saúde habilitado a prescrever ou dispensar medicamentos